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Das Zielprotein-Strukturdateiprotokoll stellt sicher, dass die Zielproteindatei für Analyse und strukturbasiertes Andocken optimiert ist. Die resultierende Strukturdatei im PDB-Format ist frei von fehlenden Resten und Wasserstoffen, fehlenden Atomtypen und unnötigen Komponenten wie Wassermolekülen und kokristallisierten Liganden. Abbildung 1A, B zeigen visuelle Unterschiede (visualisiert durch Mol* Viewer33) in Strukturen vor und nach der Vorbereitung. Wenn noch Restformatierungsprobleme bestehen (wie unerkannte Atomnamen oder unvollständige Reste), gibt CB-Dock2 typischerweise beim Hochladen einen Fehler aus. An diesem Punkt können kleinere manuelle Korrekturen, wie die Umbenennung von HSD in HIS oder das Entfernen nicht standardisierter Rückstände, vor erneutem Andocken vorgenommen werden.
Abbildung 2 zeigt die Ergebnisse des Clusterings durch Principal Component Analysis (PCA) basierend auf molekularem Fingerprinting und Tanimoto-Ähnlichkeit. In der Abbildung ist jeder Cluster durch ein grau schattiertes Oval gruppiert, das ähnlich farbige Punkte enthält, welche die Moleküle in diesen Clustern repräsentieren. Die PCA-Komponenten 1 und 2 auf den Achsen liefern eine zweidimensionale lineare Darstellung der Reduktion aus hochdimensionalen Elementen in Tanimoto-Matrizen. In dieser Studie wird die Tanimoto-Ähnlichkeit während des Cluster-Probenahmeschritts verwendet, um Redundanz zu reduzieren und die chemische Vielfalt der 999 Lipinski-konformen Naturprodukte zu verbessern. Durch die Berechnung paarweiser Tanimoto-Ähnlichkeiten mithilfe molekularer Fingerabdrücke wird der Datensatz in 50 Cluster strukturell verwandter Verbindungen aufgeteilt. Anschließend wird aus jedem Cluster ein einzelnes repräsentatives Molekül ausgewählt, wodurch sichergestellt wird, dass der endgültige Satz von 50 Liganden einen großen chemischen Raum einnimmt und gleichzeitig die rechnerische Redundanz bei Downstream-Andockungen und ADMET-S-Analysen minimiert. Diese Strategie erhöht die Effizienz und Repräsentativität des virtuellen Screenings, insbesondere bei der Arbeit mit großen Naturproduktbibliotheken wie SuperNatural 3.0. (siehe Abbildung 2).
Optimale Posen für jeden Protein-Liganden-Komplex werden simuliert, begleitet von vorhergesagten Affinitäten in Form von Vina-Scores unter den fünf CurPocket-Posen des PLK1-Proteins in CB-Dock2, wobei Van-der-Waals-Kräfte und Wasserstoffbrücken berücksichtigt werden. Eine Beispielsimulation von Ligand 1 in Abbildung 3 zeigt die beste Bindung an die zweite CurPocket-Pose (C2), mit dem niedrigsten Vina-Wert von –7,5 kcal/mol im Vergleich zu den anderen vier Top-Posen. Das molekulare Andocken mit CB-Dock2 erfolgt durch eine Bewertungsfunktion, die auf empirischen Parametern und einem stochastischen globalen Optimierungsalgorithmus basiert. CB-Dock2 wurde rigoros validiert und zeigte eine überlegene Leistung im Vergleich zu anderen hochmodernen Blindandock-Tools, was es zu einer ausgezeichneten Wahl für Andockstudienmacht. Der Server erreicht eine Erfolgsquote von etwa 85 % bei der Binding Pose Prediction (RMSD <2 Å) und übertrifft damit gängige Werkzeuge, darunter die erste CB-Dock-Version, SwissDock, COACH-D und MTiAutoDock34. Diese hohe Genauigkeit ist der innovativen Integration von zwei komplementären Andockschemata durch CB-Dock2 zu verdanken: strukturbasierten und vorlagenbasierten Ansätzen.
Abbildung 4 zeigt eine Heatmap der durchschnittlich vorhergesagten Affinitäten für jede Protein-Liganden-Kombination unter Verwendung der PRODIGY-Webserver-Affinitäten. Höhere Affinitäten, gekennzeichnet durch niedrigere molare Energien (kcal/mol) und grünere Heatmap-Töne, sind günstige Bindungsaffinitäten. Im Gegensatz dazu sind niedrigere Affinitäten, gekennzeichnet durch höhere molare Energien und rötlichere Heatmap-Tönungen, weniger günstig. Aus Sicht der Selektivität ist es ideal, Verbindungen mit günstigen Affinitäten zum Zielprotein (PLK1) im Vergleich zu Homologen (PLK2–3) zu haben. Zum Beispiel ist Ligand 27 ein selektiver PLK1-PBD-Ligand im Vergleich zu Ligand 45, der ähnliche Affinitäten über alle drei Proteine hinweg aufweist. Obwohl die Treffer 3, 5, 6, 7, 27, 28, 34, 35 und 49 eine höhere Affinität für PLK1-PBD als für PLK2/3 zeigen, sind sie chemisch vielfältig im 2D-Fingerabdruckraum (Mittelwert ECFP4 Tanimoto ≈ 0,135, kein Paar ≥ 0,50), was darauf hindeutet, dass eine breitere Spezifität wahrscheinlich eher durch konservierte PBD-Taschengeometrie und gemeinsame 3D-Pharmakophor-/Interaktionsmuster als durch die Gerüst-Identität verursacht wird. Empfehlungen umfassen den Vergleich von Interaktions-Fingerabdrücken und die Kartierung der Pharmakophore zur Identifizierung der strukturellen Determinanten der PLK1-PBD-Erkennung.
Die Ergebnisse der physikochemischen Eigenschaftsbewertung sind in einer Radarkarte dargestellt (Abbildung 5). Zu den bewerteten Eigenschaften gehören atomare Wechselwirkungen, Löslichkeit und Bioverfügbarkeit. Einige Verbindungen zeichnen sich durch ihre wünschenswerteren physikochemischen Eigenschaften mit den akzeptablen Bereichen aus: nHD = 0–7, nHA = 0–12, nStereo < 2, LogP = 0–3, LogD = 1–3, LogS = –4 bis 0,5, Fsp3 > 0,41 und nHet = 1–15. Dieses Radardiagramm bietet eine umfassende, multidimensionale Visualisierung der physikalisch-chemischen Eigenschaften der 50 repräsentativen Liganden, die im computergestützten Screening-Workflow identifiziert wurden. Sie ist darauf ausgelegt, zu bewerten, wie gut jede Verbindung den vordefinierten "arzneimittelähnlichen" Kriterien entspricht, indem sie ihre Eigenschaften gegen festgelegte untere und obere Grenzen abzeichnet. Die Tabelle zeigt zehn wichtige molekulare Deskriptoren, die um die Polarachse angeordnet sind, darunter pKa sauer und pKa basisch. Der schattierte Bereich zwischen dem grünen Polygon (Untergrenze) und dem blauen Polygon (Obergrenze) markierte den idealen oder akzeptablen Bereich für jede Eigenschaft, basierend auf den im Protokoll angegebenen Schwellenwerte. Die oberen und unteren Grenzen von pKa-Säure (2–12) und pKa-Base (3–10)) wurden anhand von Literaturübersichten35, 36 und 37 festgelegt, da es keine einheitliche obere und untere Grenze für pKa in der Arzneimittelentwicklung gibt. Jede farbige Linie repräsentiert einen der 50 Liganden. Die Form, die durch das Verbinden der Datenpunkte eines einzelnen Ligands entsteht, zeigt ihr Profil über die ausgewählten zehn Eigenschaften gleichzeitig. Die überwiegende Mehrheit der 50 Liganden liegt innerhalb oder sehr nahe an der akzeptablen Region, die durch die grünen und blauen Polygone definiert wird. Dies zeigt, dass die ersten Filterschritte, insbesondere die Anwendung von Lipinskis Fünferregel und die Clusterbildung auf Basis der Tanimoto-Ähnlichkeit, äußerst effektiv waren, um den Datensatz mit Molekülen mit günstigen arzneimittelähnlichen Eigenschaften zu bereichern. Die Darstellung des gesamten Bereichs dokumentierter Werte für alle Parameter wird empfohlen.
Abbildung 6A–C zeigt Komponenten von ADME-Daten aus ADMETlab3.0 und SwissADME. Ausgehend von der Absorption und Verteilung stellt das BOILED-Egg-Modell38 in Abbildung 6A von SwissADME die Absorption und Verteilung der Medikamente über Lipophilität und Permeabilität dar, wie durch die gelben und weißen Ellipsen im Diagramm angezeigt. Es umfasst P-gp-Substrate und -Inhibitoren, die jeweils durch blaue bzw. rote Punkte dargestellt werden, wobei die Hemmung von P-gp für höhere Absorptionsraten entscheidend ist. In Abbildung 6B visualisiert die Stoffwechsel-Heatmap die Hemmung und das Substrat von etwa 7 Varianten von CYP-Cytochrom-p450-Enzymen. Das gewünschte Ergebnis für die Liganden ist, als CYP-Nicht-Inhibitoren und Nicht-Substraten (grün) zu dienen, wobei bevorzugte Ergebnisse ein sicheres Arzneimittelsicherheitsprofil mit keinen/niedrigen Wirkstoffwechselwirkungen bestätigen. Abbildung 6C zeigt Ausscheidungsdaten zur Klarierung und Halbwertszeit des Medikaments. Die Ausscheidung kann durch die optimale Plasmaräumung (<5 mL/min/kg) unterschieden werden. Die Halbwertszeit aller Antikrebsmedikamente hängt vom Wirkmechanismus, der Toxizität und dem Zielpunkt des Medikaments ab. Die ideale Halbwertszeit balanciert die Aufrechterhaltung der Arzneimittelkonzentrationen innerhalb eines therapeutischen Zeitfensters, minimiert gleichzeitig die Toxizität und ermöglicht bequeme Dosierungspläne39,40.
Die Kombination zweier Arten von Toxizitätsbewertungen wird dargestellt. In Abbildung 7A ist die Anzahl der von ADMETlab3.0 identifizierten Toxophore für jeden Liganden dargestellt. Es gibt keine eindeutige Schwelle oder Informationen zu den akzeptablen Werten von Toxophoren. In Abbildung 7B liefert die Anwendung von Toxtree Informationen zur Toxizitätsklasse (I-III) sowie zu Verstößen gegen die Cramers-Regel und zur Einhaltung der Cramer-Regel. Das Probeergebnis für Ligand 1 zeigt die Toxizitätsergebnisse und seinen SMILES-Code in der oberen Leiste, mit der Struktur im unteren linken Fenster. Die Klassentoxizitätsidentifikation im rechten oberen Fenster zeigt eine hohe Toxizität (Klasse III) basierend auf den Cramers Regeln für Ligand 1 an, statt anderer Möglichkeiten wie Klasse II (mittlere Toxizität) oder Klasse I (geringe Toxizität). Das untere rechte Fenster zeigt die schriftliche Begründung der Klassenidentifikation basierend auf Cramers Entscheidungsbaum der Regel.
ORCA-QM-Berechnungen der Schwingungsfrequenz für optimierte Strukturen berechnen Orbitalenergiewerte zur Bestimmung der Bandlücke. Abbildung 8 zeigt die Bandlücke (eV) jedes Liganden, abgeleitet aus der Differenz zwischen HOMO und LUMO. Der Schwellenwert wird im schattierten Bereich zwischen 3,6 eV und 5,0 eV dargestellt, wobei jeder Punkt im schattierten Bereich die Energieniveaus erfüllt, die mit einer wünschenswerteren Stabilität und Reaktivität verbunden sind. Ein Überblick über den gesamten rechnergestützten Arbeitsablauf ist in Abbildung 9 zusammengefasst, die die sequentiellen Phasen von der Zielproteinpräparation und dem Screening der Naturproduktdatenbank bis zur ADMET-S-Bewertung darstellt, die darauf ausgelegt ist, selektive PLK1-PBD-Inhibitoren zu identifizieren und gleichzeitig arzneimittelähnliche Eigenschaften und chemische Stabilität sicherzustellen. Diese visuelle Roadmap unterstreicht die Modularität, Zugänglichkeit und Eignung des Protokolls für die Umsetzung von Bildungseinrichtungen.
Tabelle 1 operationalisiert das Protokoll, indem es von einer linearen Abfolge von Anweisungen in eine robuste, fehlerbewusste Pipeline umwandelt, die für den Einsatz im Unterricht und in der unabhängigen Forschung geeignet ist. Es adressiert explizit die Reproduzierbarkeit, eine bekannte Herausforderung in der computergestützten Arzneimittelforschung, indem Validierungskriterien an wichtigen Übergangspunkten eingebettet werden. Zum Beispiel verhindert die Bestätigung, dass Hitidinreste nach der CHARMM-GUI-Verarbeitung einheitlich als "HIS" gekennzeichnet sind, stille Ausfälle im nachgelagerten Andocken, während die Validierung der Integrität von SMILES vor dem Clustering kaskadende Fehler in der ADMET-Vorhersage vermeidet. Die Tabelle hebt außerdem das pädagogische Design hervor, wobei jeder Fehlerbehebungstipp mit minimalem Rechenhintergrund umsetzbar ist (zum Beispiel ".complex.pdb in einem Texteditor öffnen, um Ketten-IDs zu überprüfen"), was mit dem Ziel des Manuskripts übereinstimmt, Barrierefreiheit für Gehörlose, Bachelor-/Master- und Oberschüler zu gewährleisten. Darüber hinaus hilft die Tabelle, indem Schritte markiert werden, bei denen Ergebnisse die Ergebnisse überproportional beeinflussen, wie etwa die Selektivitätsbewertung mittels vergleichender PRODIGY-Bewertung, den Nutzern, Aufmerksamkeit und Ressourcen zu priorisieren.
Eine zentrale Stärke dieses integrierten Workflows ist seine Fähigkeit, Diskrepanzen zwischen komplementären rechnerischen Vorhersagen aufzudecken und so Randfälle aufzudecken, die die Grenzen jeder einzelnen Methode unterstreichen. Zum Beispiel zeigte Ligand 5 für PLK1-PBD einen starken CB-Dock2 Vina-Wert (−7,9 kcal/mol) und eine günstige PRODIGY-Affinität (ΔG = −9 kcal/mol, Abbildung 4), konnte jedoch mehrere ADMET-Filter nicht bestehen. Sie entsprach nicht dem BOILED-Egg-Absorptions-Verteilungsmodell, zeigte einen weniger wünschenswerten Plasma-Clearance-Wert (9,3 mL/min/kg, Abbildung 6), was auf eine schnelle Eliminierung hindeutet, und wurde von Toxtree mit fünf Toxophoren als Cramer Klasse III (hohe Toxizität) klassifiziert (Abbildung 7A). Umgekehrt zeigte Ligand 33 eine moderate, PRODIGY-vorhergesagte PLK1-Affinität (−5,4 kcal/mol), erfüllte jedoch alle ADMET-Kriterien, mit niedriger Toxizität (Klasse I), optimalem LogP (0,7) sowie günstiger Absorptionsverteilung und Plasma-Clearance. Trotz seiner schwächeren Affinität ist Ligand 33 ein eher medikamentenähnlicher Kandidat. Dieser Kontrast veranschaulicht ein grundlegendes Prinzip in der Frühphasen-Arzneimittelentwicklung: Eine hohe Bindungsaffinität allein reicht ohne günstige Pharmakokinetik und Sicherheit nicht aus. Gleichzeitig können Verbindungen wie Ligand 5, obwohl sie eine schlechte ADMET-Leistung besitzen, dennoch wertvolle Gerüstideen für zukünftige Optimierungen liefern, um Sicherheit oder metabolische Stabilität zu verbessern, ohne die Wirksamkeit zu beeinträchtigen.
Obwohl frühe Filter in diesem Workflow zur Triage und Priorisierung gedacht sind und nicht zur dauerhaften Ausgrenzung, führt eine weitere Straffung der 50 Kandidaten dazu, dass einige als "Top Hits" bezeichnet werden, indem wünschenswerte Grenzen aus ADMET-Tools und der Literatur angewendet werden. Von den 50 geprüften Liganden, die in 114 ADMET-bezogenen und elektronischen Deskriptoren bewertet wurden, erfüllten 13 mindestens 95 der gewünschten Eigenschaftskriterien. Unter diesen zeigten sechs Verbindungen (10, 13, 14, 32, 43 und 47) sowohl günstige ADMET-S-Profile als auch höhere Bindungsaffinitäten für PLK1-PBD als für PLK2/3 und werden daher als die besten Inhibitorkandidaten eingestuft (Abbildung 10). Die vergleichenden strukturell-funktionalen und quantitativen Ähnlichkeitsanalysen zeigten, dass die identifizierten Treffer wichtige pharmakohorische Merkmale mit bekannten PLK1-PBD-Inhibitoren teilen, was auf eine mögliche Konvergenz im Bindungsverhalten hindeutet. Alle Treffer enthielten aromatische oder heteroaromatische Gerüste, die die hydrophoben Ringsysteme von TQ, Poloxin und Allopole-A widerspiegeln und so π–π und hydrophobe Interaktionen innerhalb der PBD-Tasche ermöglichen. Funktionelle Überlappungen zeigten sich durch konservierte Wasserstoffbrücken-Motive (Carboxyl-, Amid- und Carbonylgruppen), die analog zu jenen vermittelten, die wichtige polare Kontakte in den Referenzinhibitoren vermitteln. Flexible aliphatische und zyklische Linker, die in mehreren Treffern auftreten, spiegeln die konformationelle Anpassungsfähigkeit von Poloxin-Analogen wider und erleichtern so die Ausrichtung auf essentielle Bindungsreste. Quantitativ bestätigten Tanimoto-Ähnlichkeitswerte (0,36–0,54) eine moderate strukturelle Ähnlichkeit zwischen den Treffern und bekannten Inhibitoren, wobei die Treffer 10, 13 und 14 Poloxin am ähnlichsten, Treffer 32 zu TQ und Treffer 43 und 47 zu Allopel-A waren. Zusammen heben diese Ergebnisse eine klare strukturelle und funktionale Überschneidung hervor, was darauf hindeutet, dass die Treffer wahrscheinlich die Bindungstopologie und Interaktionsmuster validierter PLK1-PBD-Inhibitoren nachahmen, während genügend Neuheit für weitere Optimierung erhalten bleibt (Abbildung 10).
Um die Robustheit des rechnergestützten Arbeitsablaufs zu bewerten, wurden bekannte PLK1-PBD-Inhibitoren (Poloxinpan14 und Allopole-A15) als positive Kontrollgruppen analysiert, wobei Metformin und Imeglimin (zwei strukturell nicht verwandte Antidiabetika ohne berichtete PLK1-PBD-Aktivität) als Negativkontrollen über ADMET-S, Andockungs- und Bindungsaffinitätsanalysen fungierten. Die positiven Kontrollgruppen zeigten Bindungsaffinitäten von –5,8 bzw. –5,6 kcal/mol, während die negativen Kontrollen schwächere Affinitäten von –5,1 kcal/mol (Metformin) und –4,8 kcal/mol (Imeglimin) zeigten, was mit ihrer fehlenden PBD-Bindungsaktivität übereinstimmt. Interessanterweise zeigte die ADMET-S-Bewertung, dass die negativen Kontrollen mehr wünschenswerte Deskriptoren (88 von 114 Eigenschaften) erfüllten als die positiven Kontrollen (80 von 114), wodurch die Fähigkeit des Workflows validiert wurde, pharmakokinetische Vorteilhaftigkeit vom zielspezifischen Bindungspotenzial zu unterscheiden. Diese Bindungen unterstreichen die Bedeutung einer ausgewogenen Perspektive: Verbindungen sollten nicht vorzeitig allein aufgrund suboptimaler ADMET-Vorhersagen verworfen werden, wenn sie eine starke Zielaffinität zeigen, da solche Gerüste dennoch wertvolle Ausgangspunkte für die Optimierung bieten können. Umgekehrt können Moleküle mit ausgezeichneten pharmakokinetischen Eigenschaften, aber schwacher Bindung als risikoarme Vorlagen für die Analogentwicklung dienen. Weitere biochemische und zelluläre Validierung ist erforderlich, um diese rechnerischen Beobachtungen zu bestätigen und die Priorisierungskriterien zu verfeinern.

Abbildung 1: Strukturelle Vergleiche zwischen einer unvorbereiteten und einer von CHARMM-GUI vorbereiteten 4HCO-Struktur. (A) 4HCO-Struktur direkt aus dem PDB hochgeladen und die fehlenden Rückstände hervorhebt. (B) 4HCO-Struktur nach CHARMM-GUI-Vorbereitungsprotokoll. 4HCO (PLK1-PBD gebunden an TQ) wurde ausgewählt, weil es zu den wenigen PLK1-PBD-Kristallen mit organischem Liganden gehört, was es direkt auf diese strukturbasierte Entdeckung von Kleinmolekülinhibitoren anwendbar macht. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 2: Hauptkomponentenanalyse (PCA) von 999 Lipinski-konformen Naturprodukten nach K-Means-Clustering basierend auf molekularer Fingerabdrückung und Tanimoto-Ähnlichkeit. Jeder Punkt stellt eine Verbindung dar, die nach seinem zugewiesenen Cluster (1–50) gefärbt ist, wobei die Cluster durch graue Ellipsen gruppiert sind, um die chemische Ähnlichkeit zu betonen. Die enge Clusterbildung innerhalb der Cluster und die Trennung zwischen den Clustern deuten darauf hin, dass Tanimoto-basierte Clustering die strukturelle Redundanz erfolgreich reduzierte und gleichzeitig die chemische Vielfalt im gesamten Datensatz bewahrte. Diese Vielfalt stellt sicher, dass die 50 repräsentativen Liganden, die für das Downstream-Andocken ausgewählt werden, einen breiten Bereich chemischen Raums abdecken, was die Robustheit und Generalisierbarkeit der virtuellen Screening-Ergebnisse erhöht. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 3: CB-Dock2-Blinddocking identifiziert eine Hochaffinitätsbindungspose von Ligand 1 innerhalb der PLK1-Polobox-Domäne (PBD). Die dargestellte CurPocket-C2-Konformation (Vina-Wert = −7,5 kcal/mol) stellt die optimale Position unter fünf vorhergesagten Bindungsstellen dar, gekennzeichnet durch günstige Van-der-Waals-Kontakte und Wasserstoffbrücken mit wichtigen PBD-Resten (Trp414, His538 und Lys540). Dieses Ergebnis bestätigt den Einsatz strukturbasierter blinder Andockung, um biologisch relevante Bindungstaschen ohne einen kokristallisierten Liganden zu lokalisieren, und zeigt, wie der Workflow Posen mit der stärksten vorhergesagten Bindungsenergie für die nachgelagerte Selektivitätsanalyse priorisiert. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4: Heatmap des PRODIGY-Webservers vorhersagt Affinitäten durch Protein-Ligand-Kombinationen. Die Heatmap adressiert direkt die Überlappung zwischen Liganden, wenn sie an PLK1, PLK2 und PLK3 gebunden sind. Während einige Liganden (einschließlich Ligand 45) vergleichbare Bindungsaffinitäten über alle drei PLK-Isoformen hindeuten, was auf eine geringe Selektivität hindeutet, zeigen andere (insbesondere Liganden 3, 5, 6, 7, 27, 28, 34, 35 und 49) eine starke PLK1-Präferenz (ΔΔG ≥ 3,0 kcal/mol vs. PLK2/PLK3), was mit dem Ziel der PBD-selektiven Hemmung übereinstimmt. Quantitativ zeigen 20 der 50 Liganden eine fast zweifache Selektivität für PLK1 gegenüber sowohl PLK2 als auch PLK3, basierend auf PRODIGY-vorhergesagten ΔG-Werten. Diese differenzielle Bindung wird auf subtile Variationen in den PBD-Bindungstaschen zurückgeführt, die vom Blind-Docking-Protokoll erfasst werden. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 5: Darstellung physikochemischer Eigenschaften kombiniert aus ADMETlab3.0 und SwissADME. Die Parameter sind nHD = Anzahl der Wasserstoffspender, nHA = Anzahl der Wasserstoffakzeptoren, basisches pKa, saures pKa, nStereo = Anzahl der Stereozentren, LogP = n-Octanol/Wasser-Verteilungskoeffizient, LogD = n-Octanol/Wasser-Verteilungskoeffizient bei pH = 7,4, LogS = wässriger Löslichkeitswert, Fsp3 = die Anzahl der sp3-hybridisierten Kohlenstoffe/Gesamtkohlenstoffanzahl und nHet = Anzahl der Heteroatome. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 6: Eine Kombination von ADME-Ergebnissen von ADMETlab3.0 und SwissADME. (A) BOILED-Egg-Diagramm von Wildman-Crippin LogP (WLOGP) vs. Topological Polar Surface Area (TPSA) von SwissADME repräsentiert die Permeabilität der Absorption and Distribution Blood-Brain Barrier (BBB) im gelben (Eigelb-)Bereich, die Absorption durch den Magen-Darm-Trakt (HIA) in der weißen Ellipse, P-Glykoprotein-Substrate und Nicht-Substrate in blauen bzw. roten Punkten. Moleküle, die außerhalb der "Eizelle" liegen, gelten als schlecht aufgenommen und verteilt. (B) Heatmap des Stoffwechsels mit verschiedenen Cytochrom-P450 (CYPs)-Identifikatoren, die die Stabilität des menschlichen Leberstoffwechsels (HLM) betreffen, wobei Rot als Inhibitor/Substrate dient und Grün als Nicht-Inhibitoren/Nicht-Substrate, sodass Grün als Wünschenswert übrig bleibt. (C) Die Ausscheidung betrifft die Parameter, die Plasma-Clearance und die Halbwertszeit. Die gestrichelte rote Linie zeigt die gewünschte Plasma-Clearance an (<5 mL/min/kg), während 5-15 mL/min/kg bzw. >15 mL/min/kg eine moderate bzw. hohe Clearance angeben. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 7: Integriertes Toxizitätsprofiling zeigt kritische Sicherheitsrisiken bei gescreenten Liganden auf. (A) Verteilung der Toxophorzählungen auf die 50 repräsentativen Naturprodukte, wie von ADMETlab3.0 vorhergesagt. (B) Probe der Toxizitätswerte für Ligand 1, die die Klasse-III-Toxizität in Rot markiert und mit einer ausführlichen Erklärung verwandter Cramer's Rules im untenstehenden Textfeld aufgeführt sind. Dieser Doppelbewertungsansatz (Toxophore + Cramer-Klasse) ermöglicht eine frühzeitige Triage von Hochrisikoverbindungen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 8: HOMO–LUMO-Bandlückenenergien (in eV) für die 50 repräsentativen, von natürlichen Produkten abgeleiteten Liganden, berechnet mit ORCA auf der theoretischen Ebene B3LYP/def2-TZVP. Der abgeschiedene Bereich (3,6 bis 5,0 eV) bezeichnet das optimale Stabilitätsfenster: Bandlücken unter 3,6 eV deuten auf eine hohe chemische Reaktivität oder potenzielle Photodegradation hin, während Werte über 5,0 eV auf eine schlechte elektronische Polarisierbarkeit und eine verminderte Anpassungsfähigkeit der Bindung hinweisen können. Liganden innerhalb dieses Bereichs zeigen ein günstiges Gleichgewicht zwischen kinetischer Stabilität und molekularer Reaktion, was ihre Priorisierung als potenzielle PLK1-PBD-Inhibitorkandidaten unterstützt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 9: Flussdiagramm des bilingualen Workflows zur computergestützten Wirkstoffforschung. Die Pipeline beginnt mit der Vorbereitung von PLK1-PLK3-PBD-Strukturen, gefolgt von krankheitsfokussiertem Screening der SuperNatural 3.0-Datenbank und der Filterung mittels Lipinskis Fünferregel (Molekulargewicht ≤ 500 Da, Wasserstoffbrückenspender ≤ 5, Akzeptoren ≤ 10, LogP ≤ 5). Repräsentative Verbindungen werden nach dem Clustering ausgewählt und anschließend durch Protein-Liganden-Andocken, Bindungsaffinitätsvorhersage und umfassende ADMET-S-Profilierung bewertet, einschließlich Absorption, Verteilung, Stoffwechsel, Ausscheidung, Toxizität und Quantenstabilitätsbewertung. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 10: Vergleichende strukturell-funktionelle Überschneidung zwischen Top-Kandidaten-Liganden und bekannten PLK1-PBD-Inhibitoren. Die Abbildung hebt die sechs wichtigsten Kandidatenverbindungen (10, 13, 14, 32, 43 und 47) hervor, die aus den kombinierten Analysen des virtuellen Screenings, Clusterings, Bindungsaffinität und ADMET-S-Profilings identifiziert wurden. Diese Liganden erfüllten mindestens 95 von 114 wünschenswerten physikochemischen und pharmakokinetischen Deskriptoren und zeigten höhere Bindungsaffinitäten für PLK1-PBD im Vergleich zu PLK2/3. Um potenzielle strukturelle und funktionelle Konvergenz zu bewerten, wurde jeder Ligand mit bekannten PLK1-PBD-Inhibitoren TQ, Poloxin und Allopole-A verglichen, basierend auf gemeinsamen Kern-Pharmakophoren-Motiven und paarweise Tanimoto-Ähnlichkeitskoeffizienten (ECFP4-Fingerabdrücke). Moderate Ähnlichkeitswerte (0,36–0,54) und häufige funktionelle Gruppen wie aromatische oder heteroaromatische Ringe, Wasserstoffbrücken-Donor/Akzeptorpaare und hydrophobe Linker deuten auf eine teilweise Überlappung der Bindungsmerkmale hin. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.
| Workflow-Phase | Zwischenkontrollpunkt (wie man den Erfolg bestätigt) | Kritischer Schritt (warum er über Erfolg/Misserfolg entscheidet) | Häufige Probleme und Leitlinien zur Fehlerbehebung |
| 1. Zielproteinzubereitung | • PDB-Datei wird fehlerfrei in der Mol*-Ansicht geladen. • Keine fehlenden Rückstände in der Bindungstasche (Sichtkontrolle). • Histidinreste, die als "HIS" gekennzeichnet sind (nicht HSD/HSE) | Ungenaue Proteinstrukturen → falsche Bindungstaschen → irreführende Andockposen. CHARMM-GUI gewährleistet korrekte Protonierung, Wasserstoffplatzierung und Entfernung von Wasser/Liganden. | Problem: CB-Dock2 lehnt die PDB-Datei ab. Behebung: Entfernen Sie nicht standardmäßige Rückstände, stellen Sie sicher, dass nur die Proteinkette vorhanden ist, und standardisieren Sie Atom-/Residuennamen mit einem Texteditor. |
| 2. Filterung natürlicher Produkte (Lipinskis Regel der 5) | • "all.csv" enthält nur gültige SMILES (nicht-leer, chemisch parseierbar). • Erwartete Zählübereinstimmungen (z. B. 999/1.193). | Ungültige SMILES stürzen RDKit, Docking-Server und ADMET-Tools ab. Das Filtern muss die chemische Validität bewahren. | Problem: Das Skript schlägt während des Clusterings fehl. Lösung: Fügen Sie die Validierung von SMILES mit Chem.MolFromSmiles(smiles, sanitize=True) in Python hinzu; Protokollieren und entfernen Sie ungültige Einträge, bevor Sie fortfahren. |
| 3. Cluster-Stichprobe | • 50 einzigartige SMILES in "rep_struct.txt". • PCA-Diagramm (Abb. 2) zeigt eine klare Clustertrennung. | Schlechte Clustering → redundante oder nicht vielfältige Vertreter → ineffiziente Screening. | Problem: Alle Moleküle gruppieren sich zu einer Gruppe. Korrektur: Fingerabdrucktyp (z. B. Morgan/ECFP4), Tanimoto-Schwelle und die Standardisierung von SMILES überprüfen. Erwägen Sie, die Clusterzahl zu erhöhen, wenn die Diversität gering ist. |
| 4. Protein-Liganden-Andocken (CB-Dock2) | • Jeder Ligand liefert ≥1 ".complex.pdb"-Datei zurück. • Vina-Werte sind negativ (z. B. ≤ −5 kcal/mol). • Der Ligand befindet sich in CurPocket (nicht an der Oberfläche). | Andocken definiert Bindungspose und Affinität. Falsche Pose → falsche PRODIGY-Vorhersagen. | Problem: Job scheitert oder Ligand nicht angedockt. Lösung: Liganden in CB-Dock2 mit SMILES neu zeichnen; Stellen Sie sicher, dass keine Sonderzeichen im Dateinamen verwendet werden; Überprüfen Sie die E-Mail für den Status der Stelle. Falls persistent, probiere SwissDock als Backup. |
| 5. Bindungsaffinität (PRODIGY) | • PRODIGY liefert ΔG-Werte für alle Komplexe. • Affinitäten korrelieren mit CB-Dock (Vina)-Werten (Trendkonsistenz). | Die Selektivitätsbewertung hängt von der genauen ΔG für PLK1 im Vergleich zu PLK2/PLK3 ab. Falsch zugewiesene Ketten-/Liganden-IDs → falsche Vorhersagen. | Problem: Fehler "Kette nicht gefunden". Korrektur: Öffnen Sie .complex.pdb in einem Texteditor; bestätigen Sie die Proteinketten-ID (z. B. "P") und den Namen der Ligandenreste (z. B. "UNL"); Eingabe korrekt in PRODIGY ein. |
| 6. ADMET-S-Bewertung | • Alle 50 SMILES liefern Ergebnisse in SwissADME, ADMETlab3.0 und ToxTree zurück. • Keine "N/A"- oder "Error"-Zeilen in den ausgegebenen CSVs. | Inkonsistente ADMET-Daten → fehlerhafte Kandidatenrangliste. Plattformen können auf Gerüsten exotischer Naturprodukte scheitern. | Problem: ADMETlab3.0 lehnt SMILES ab. Lösung: Kanonisiere SMILES mit RDKit (MolToSmiles(MolFromSmiles(...))). Für ToxTree geben Sie jeweils ein Molekül ein und überprüfen Sie die Strukturwiedergabe. |
| 7. Quantenstabilität (ORCA) | • Jeder ORCA-Job wird ohne "SCF nicht konvergiert" oder "Geometriefehler" abgeschlossen. • HOMO/LUMO-Werte, die in der Ausgabedatei (.out) vorhanden sind. | Die Bandlücke bestimmt die chemische Stabilität/Reaktivität. Fehlgeschlagene Jobs = fehlende Daten für den Schlüsselfilter. | Problem: ORCA-Job stürzt ab. Korrektur: Geometrie in Avogadro neu optimieren; Stellen Sie sicher, dass keine doppelten Atome entstehen; %maxcore erhöhen oder auf die DEF2-SVP-Basis für große Moleküle umsteigen. |
| 8. Integrierte ADMET-S-Filterung | • Die endgültige Liste der Liganden erfüllt alle Kriterien (z. B. LogP 0–3, Bandlücke 3,6–5 eV, Cramer-Klasse I/II). • ≥1 Ligand zeigt PLK1-Selektivität (ΔΔG ≥ 2 kcal/mol vs. PLK2/3). | Zu strenge oder inkonsistente Schwellenwerte schließen gültige Leads aus; Zu lockere Schwellenwerte fördern toxische/instabile Verbindungen. | Problem: Keine Liganden passieren alle Filter. Lösung: Lockere jeweils ein Kriterium (z. B. erlaube LogP ≤ 4 oder 3 Toxiophoren) und dokumentiere Abwägungen. Vergleichen Sie mit bekannten Medikamenten zum Benchmarking. |
Tabelle 1: Kritische Qualitätskontrollpunkte, entscheidende Entscheidungspunkte und Fehlerbehebungsstrategien im achtstufigen zweisprachigen Rechenabfluss zur Identifizierung selektiver PLK1-PBD-Inhibitoren. Jede Zeile entspricht einer wichtigen Protokollphase von der Proteinvorbereitung bis zur integrierten ADMET-S-Filterung und spezifiziert (i) wie ein erfolgreicher Abschluss überprüft wird (Zwischenkontrollpunkt), (ii) warum der Schritt entscheidend für den Gesamterfolg oder Misserfolg ist (kritische Schritt-Begründung) und (iii) praktische Lösungen für häufige technische Fehler (Fehlerbehebungsanleitung). Diese Tabelle dient sowohl als Validierungsfahrplan als auch als Lehrhilfe für Studierende und Forschende, die das Protokoll in akademischen oder ressourcenbegrenzten Umgebungen implementieren.
Ergänzende Datei 1: Python-Skripte. Enthält das Python-Skript für die Anwendung der Lipinski-Regel; das Python-Skript, das für die Clustering-Analyse verwendet wird; das Python-Skript für physikochemische Eigenschaftsberechnungen; das R-Skript für die Stoffwechselanalyse; das Python-Skript für die Ausscheidungsanalyse; das Python-Skript zur Toxizitätsvorhersage; das Python-Skript zur Stabilitätsbewertung; und die SMILES-Strings der 50 analysierten Verbindungen. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.