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Eine einfache und effiziente Methode zum Testen immunmodulatorischer Wirkstoffe zur Erzeugung tolerogener dendritischer Zellen aus humanen CD14+ -Monozyten

DOI:

10.3791/68159

April 11th, 2025

In This Article

Summary

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Wir beschreiben ein Verfahren zur Bewertung der Fähigkeit pharmakologischer Wirkstoffe, tolerogene dendritische Zellen aus naiven Monozyten-abgeleiteten dendritischen Zellen in vitro zu generieren und ihre Wirksamkeit durch autologe regulatorische T-Zell-Generierung zu validieren.

Abstract

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Tolerogene dendritische Zellen (tolDCs) sind eine Untergruppe der dendritischen Zellen (DCs), von denen bekannt ist, dass sie naive T-Zellen in Richtung eines regulatorischen T-Zell-Phänotyps (Treg) beeinflussen. TolDCs werden derzeit als Therapien für Autoimmunität und Transplantation untersucht, sowohl als Zelltherapie als auch als Methode zur Induktion von tolDCs aus endogenen DCs. Bisher ist die Anzahl der bekannten Wirkstoffe zur Induktion von tolDCs aus naiven DCs jedoch relativ gering und ihre Wirksamkeit zur Erzeugung von Tregs in vivo war inkonsistent, insbesondere bei Therapien, die tolDCs aus endogenen DCs induzieren. Dies bietet die Möglichkeit, neuartige Verbindungen zu erforschen, um Toleranz zu erzeugen.

Hier beschreiben wir eine Methode, um neuartige immunmodulatorische Verbindungen an Monozyten-abgeleiteten DCs (moDCs) in vitro zu testen und ihre Funktionalität zur Erzeugung autologer Tregs zu validieren. Zunächst erhalten wir PBMCs und isolieren CD14+ -Monozyten und CD3+ T-Zellen mit kommerziell erhältlichen magnetischen Trennkits. Als nächstes differenzieren wir Monozyten in moDCs, behandeln sie 24 h lang mit einem etablierten Immunmodulator wie Rapamycin, Dexamethason, IL-10 oder Vitamin D3 und testen ihre Veränderung in tolerogenen Markern als Validierung des Protokolls. Schließlich co-kultivieren wir die induzierten tolDCs mit autologen T-Zellen in Gegenwart einer anti-CD3/CD28-Stimulation und beobachten Veränderungen in den Treg-Populationen und der T-Zellproliferation. Wir stellen uns vor, dass dieses Protokoll verwendet wird, um die Wirksamkeit neuartiger immunmodulatorischer Wirkstoffe zu bewerten, um bereits differenzierte DCs in Richtung tolDC umzuprogrammieren.

Introduction

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Dendritische Zellen (DCs) sind wichtige Vermittler zwischen angeborener und adaptiver Immunität. DCs, die sich hauptsächlich in Schleimhäuten, Haut und lymphatischem Gewebe befinden, sind die primären antigenpräsentierenden Zellen (APCs)1. DCs nehmen fremde Proteine auf und verarbeiten sie und präsentieren sie auf Haupthistokompatibilitätsproteinen (MHC) für naive T-Zellen. DCs exprimieren spezifisch MHC-Klasse-II-Proteine, wie z. B. das humane Leukozytenantigen-DR (HLA-DR) beim Menschen. Der Aktivierungszustand der DCs nach Antigenexposition ist entscheidend für die nachgeschaltete T-Zell-Antwort

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Protocol

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Alle Proben von humanen mononukleären Blutzellen (PBMC) wurden aus dem Human Immunology Core der University of Pennsylvania von anonymisierten Spendern mit vorheriger Genehmigung des Institutional Review Board (IRB) der University of Pennsylvania mit Zustimmung des Patienten entnommen.

Optional: Während wir bei dieser Methode frisch isolierte PBMCs aus einem akademischen Labor verwendet haben, können PBMCs entweder aus Vollblut oder mit Leukapherese angereicherten Blutprodukten isoliert werden. Wir empfehlen die Verwendung der Dichtegradientenzentrifugationsmethode, da es sich um eine etabl....

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Results

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Wir haben ein Protokoll für humane PBMCs beschrieben, isolieren sowohl CD3+ T-Zellen als auch CD14+ Monozyten mit kommerziell erhältlichen magnetischen Trennkits, differenzieren Monozyten in CD14-, HLA-DR+-, CD141+, CD1c+ moDCs mit GM-CSF und IL-4, behandeln sie für 24 h und co-kultivieren mit autologen T-Zellen mit Anti-CD3/CD28-Stimulation für 72 h. Ein experimentelles Schema ist in Abbildung 1 dargestellt.

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Discussion

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Hier beschreiben wir eine zuverlässige und vielseitige Methode, um die Funktionalität von immunmodulatorischen Wirkstoffen zur Induktion von tolDCs aus moDCs zu bewerten und ihre Funktionalität zur Erzeugung von Tregs aus autogenen T-Zellen ex vivo zu validieren. Dieses Protokoll umfasst mehrere kritische Schritte. Erstens sind Monozyten notorisch empfindliche Zellen und müssen aus frischen, nicht zuvor gefrorenen PBMCs gewonnen werden, um die besten Ergebnisse zu erzielen. Mono.......

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Disclosures

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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Acknowledgements

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Wir danken dem Human Immunology Core (HIC) der University of Pennsylvania für die Bereitstellung frischer humaner PBMCs von Spendern. Das HIC wird teilweise von NIH P30 AI045008 und P30 CA016520 unterstützt.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0,1-10 &Mikro; L Gefilterte PipettierspitzenVWR76322-158Allgemeine Zellkultur
1,5 mL ZentrifugenröhrchenVWR77508-358Allgemeine Zellkultur
10 mL Serologische PipetsVWR414004-267Allgemeine Zellkultur
100-1000 & Mikro; L Gefilterte PipettenspitzenVWR76322-164Allgemeine Zellkultur
15 mL Konisches RöhrchenVWR77508-212Allgemeine Zellkultur
20-200 & Mikro; L Gefilterte PipettenspitzenVWR76322-160Allgemeine Zellkultur
2-MercaptoethanolMP Biomedical194834T-Zellkultur
50 mL Konisches RöhrchenVWR21008-736Allgemeine Zellkultur
60 x 15 mm Schale, Nunclon DeltaThermo Fischer150326Allgemeine Zellkultur
96 Well Konische (V) Bodenplatte, unbehandelte OberflächeThermo Fischer277143Allgemeine Zellkultur
96 Well flache BodenplatteThermo Fischer161093Allgemeine Zellkultur
APC/Cyanin7 Anti-Human-CD272 (BTLA) AntikörperBiolegend344518Durchflusszytometrie
Attune NxT (Roter/Blauer Laser, 7 Kanäle)Thermo FischerA24863Durchflusszytometrie
BSAThermo Fischer15260-037Allgemeine Zelle
Kultur CD14 Monoklonaler Antikörper (61D3), PEThermo Fischer12-0149-42Durchflusszytometrie
CD1c Monoklonaler Antikörper (L161), PE-Cyanin7Thermo Fischer25-0015-42Durchflusszytometrie
CD209 (DC-SIGN) Monoklonaler Antikörper (eB-h209), PerCP-Cyanin5.5Thermo Fischer45-2099-42Durchflusszytometrie
CD25 Monoklonaler Antikörper (CD25-4E3), APCThermo Fischer17-0257-42Durchflusszytometrie
CD274 (PD-L1, B7-H1) Monoklonaler Antikörper (MIH1), PEThermo Fischer12-5983-42Durchflusszytometrie
CD4 Monoklonaler Antikörper (RPA-T4), Alexa Fluor 488Thermo Fischer53-0049-42Durchflusszytometrie
CD40 Monoklonaler Antikörper (5C3), APCThermo Fischer17-0409-42Durchflusszytometrie
CD40 Monoklonaler Antikörper (5C3), APC-eFluor 780Thermo Fischer47-0409-42Durchflusszytometrie
CD69 Monoklonaler Antikörper (FN50), PEThermo FischerMA1-10276Durchflusszytometrie
CD86 Monoklonaler Antikörper (BU63), FITCThermo FischerMHCD8601Durchflusszytometrie
CD8a Monoklonaler Antikörper (RPA-T8), PE-Cyanin7Thermo Fischer25-0088-42Durchflusszytometrie
Konischer Boden (V-Well) 96-Well-PlatteThermo Fischer2605
Kryofläschchen für Durchflusszytometrie, 2 mLThermo Fischer430488T-Zellkultur
Dimethylsulfoxid (DMSO), SequenzierqualitätThermo Fischer20688Allgemeine Zellkultur
DPBSThermo Fischer14200166Allgemeine Zellkultur
EasySep Humanes Monozyten-IsolationskitStammzelltechnologien19359Zelltrennung
EasySep Humanes T-Zell-IsolationskitStammzelltechnologien17951Zelltrennung
EasySep MagnetStem Cell Technologies18000Zelltrennung
EDTAThermo FischerAIM9260GAllgemeine Zellkultur
Falcon Polystyrolröhrchen mit rundem Boden, 5 mlStammzelltechnologien38025Zelltrennung
Fc-Rezeptor-Bindungsinhibitor Polyklonaler AntikörperThermo Fischer14-9161-73Durchflusszytometrie
Fötales RinderserumThermo FischerA5670701Allgemeine Zellkultur
Fixierbarer Viabilitätsfarbstoff eFluor 780Thermo Fischer65-0865-18Durchflusszytometrie
Foxp3 / Transkriptionsfaktor-Färbepuffer-SetThermo Fischer00-5523-00Durchflusszytometrie
FOXP3 Monoklonaler Antikörper (PCH101), PE-Cyanin5.5Thermo Fischer35-4776-42Durchflusszytometrie
HBSSThermo Fischer14170-112Allgemeine
Zellkultur Hitze inaktiviertes fötales RinderserumThermo FischerA5670801Allgemeine Zellkultur
HEPES (1 M)Thermo Fischer15630106moDC Zelle Kultur
HLA-DR Monoklonaler Antikörper (L243), Alexa Fluor 488Thermo FischerA51009Durchflusszytometrie
Humaner CD3/CD28/CD2 T-Zell-AktivatorStemCell Technologies10970T-Zellkultur
Humanes GM-CSF Rekombinantes ProteinThermo Fischer300-03moDC Zellkultur
Humanes IL-10 ELISA-Kit, HochempfindlichkeitThermo FischerBMS215-2HSElisa
Humanes IL-4, tierversuchsfreies rekombinantes ProteinThermo FischerAF-200-04moDC Zellkultur
Humanes PBMC (frisch isoliert)UPenn HICN/AZellen
Humanes TNF alpha ELISA KitThermo FischerBMS223-4ELISA-Lichtmikroskop
(DMi1)Lucia391240Allgemeine Zellkultur
Lipopolysaccharid (LPS)Invivogentlrl-eblpsmoDC Zellkultur
LIVE/DEAD Fixierbares Nah-IR-Färbekit für tote ZellenThermo FischerL34975Durchflusszytometrie
MEM Lösung für nicht-essentielle Aminosäuren (100x)Thermo Fischer11140050T-Zellkultur
Penicillin-Streptomycin (100x)Thermo Fischer15140122Allgemeine Zellkultur-Pipettensteuerung
VWR77575-370Allgemeine Zellkultur
Rapamycin, 98+%Thermo FischerJ62473. MFmoDC Zellkultur
RPMI 1640 mit GlutamaxThermo Fischer61870-036Allgemeiner
Zellkultur-TrennpufferStammzelltechnologien20144Zelltrennung
T-Zell-Stimulationscocktail (500x)Thermo Fischer00-4970-93T-Zellkultur
UltraComp eBead Plus KompensationsperlenThermo Fischer01-3333-41Flow Zytometrie
Variables PipettensetFischer Scientific05-403-152Allgemeine Zellkultur

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Banchereau, J., et al. Immunobiology of dendritic cells. Annu Rev Immunol. 18 (1), 767-811 (2000).
  2. Blander, J. M., Medzhitov, R. Toll-dependent selection of microbial antigens for presentation by dendritic cells. Nature. 440 (7085), 808-812 (2006).
  3. Anderson....

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Tolerogenic Dendritic CellsMonocyte Derived Dendritic CellsImmunomodulatory AgentsRegulatory T CellsCD14 Positive MonocytesFlow CytometryMagnetic Cell SeparationT Cell ProliferationImmunomodulator TreatmentFoxp3 Treg Induction

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