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Diese Studie basierte ausschließlich auf der Analyse öffentlich zugänglicher Datensätze und umfasste weder menschliche Teilnehmer, Tierprobanden noch Gewebeproben. Daher war keine Genehmigung des Institutional Review Board (IRB) oder des Animal Care and Use Committee (IACUC) erforderlich.
Datenerhebung und Vorverarbeitung
Humane PPI-Daten und kuratierte RAS-Signalwegproteine wurden aus öffentlich zugänglichen Repositorien abgerufen, darunter Genome Biology functional protein interaction datasets23 und die Comparative Toxicogenomics Database (CTD) (https://ctdbase.org/). Datensätze wurden zu tab-getrennten Textdateien standardisiert, um Einheitlichkeit zu gewährleisten. Die Vorverarbeitung umfasste das Entfernen doppelter Interaktionen, das Entfernen von Selbstschleifen und das Filtern nicht-menschlicher Einträge. Eine vollständige Liste aller Proteine, die in der standardisierten, tab-getrennten Eingabedatei enthalten sind, ist in der ergänzenden Tabelle S1 bereitgestellt.
Netzwerkbau
Das menschliche PPI-Netzwerk wurde als Graph modelliert, in dem Proteine Knoten repräsentieren und ihre Interaktionen Kanten darstellen. Zur Berechnung der kürzesten Pfadentfernungen wurde Dijkstras Algorithmus mit einem benutzerdefinierten Python-Skript implementiert, das in die Boost Graph Library (C++) (http://www.boost.org/) integriert war. Der zentrale Knoten wurde definiert als das Protein mit der kleinsten maximalen kürzesten Wegentfernung zu allen anderen. Das Netzwerk wurde dann in Zonen unterteilt, basierend auf der Entfernung zu diesem zentralen Protein.
Zonenklassifikation und Wegkartierung
Die Proteine wurden entsprechend ihrer Entfernung zum zentralen Protein in hierarchische Zonen (Zone 1, Zone 2 usw.) eingeteilt. Zone 1, die die zentralsten und hoch verbundenen Proteine enthält, wurde für die Analyse ausgewählt. Die Proteine in Zone 1 wurden mit kuratierten Listen der RAS-Signalweg-Proteine abgeglichen. Alle in dieser Studie verwendeten rechnergestützten Verfahren folgen dem zuvor von Fadhal et al.17 beschriebenen Rahmen, wobei sich die vorliegende Arbeit speziell auf die biologische Interpretation von RAS-assoziierten Proteinen innerhalb der ersten hierarchischen Netzwerkzone konzentriert.
Funktionale Anreicherungsanalyse
Die funktionale Anreicherungsanalyse wurde unter Verwendung von CTD-Annotationen zusammen mit kuratierten Pathway-Datenbanken durchgeführt, wobei die statistische Signifikansgröße durch einen korrigierten P-Wert-Cutoff von 0,01 definiert wurde.
Bewertung von Onkogenen und Tumorsuppressoren
Zentrale Proteine, die sich mit dem RAS-Signalweg überlappen, wurden weiter hinsichtlich ihrer onkogenen oder tumorsuppressorischen Rollen untersucht. Die Daten wurden aus groß angelegten Projekten zur Krebsgenomsequenzierung extrahiert und gegen krebsbezogene Datenbanken validiert. Proteine wurden basierend auf veröffentlichten Evidenzenin Onkogene, Tumorsuppressoren, apoptosebezogene Proteine oder therapeutische Ziele klassifiziert.
Reproduzierbarkeit und Validierung
Alle computergestützten Analysen wurden dreifach mit unabhängigen PPI-Datensätzen wiederholt. Diese Verfahren, einschließlich aller Protokollschritte und Implementierungsdetails, wurden nach der in unserer zuvor veröffentlichten Arbeitbeschriebenen Methodik 17 durchgeführt. Die Ergebnisse waren über unabhängige Durchläufe hinweg konsistent und bestätigten die Robustheit und Reproduzierbarkeit des Protokolls. Um die Reproduzierbarkeit sicherzustellen, wurde jeder Schritt des Workflows überprüft und detailliert beschrieben, um zu verdeutlichen, wie die Analyse durchgeführt wird. Der vollständige Workflow, einschließlich Quellcode und Datensätze, wird im Supplementary Data S4 bereitgestellt. Alle Analysen können auf einer Standard-Arbeitsstation ohne spezielle Hardware reproduziert werden.
Workflow-Schaltplan
Ein Gesamtschema des Studiendesigns wird bereitgestellt (Abbildung 1). Dieses Diagramm fasst jeden Schritt des Protokolls zusammen: 1) Datenerhebung und Vorverarbeitung, 2) Netzwerkaufbau, 3) Zonenklassifikation und -kartierung, 4) Analyse funktioneller Anreicherung, 5) Bewertung von Onkogen-/Tumorsuppressoren und 6) Visualisierung der Ergebnisse.