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Diese Studie umfasste 30 teilweise edentulöse Patienten, die zwischen September 2021 und März 2022 in der Klinik für Zahnprothesen des Universitätszahnmedizinischen Klinischen Zentrums Kosovo eine prosthetische Behandlung in Anspruch nahmen. Die ethische Genehmigung wurde vom institutionellen Überprüfungsausschuss eingeholt (Genehmigung Nr. 378/19), und alle Verfahren folgten den Grundsätzen der Erklärung von Helsinki. Von allen Teilnehmern wurde eine schriftliche informierte Zustimmung eingeholt.
Die Stichprobengröße wurde auf Basis früherer Forschung bestimmt, die darauf hindeutet, dass 11 bis 30 Teilnehmer ausreichen, um signifikante Ergebnisse bei mikrobiellen und parodontalen Parametern bei RPD-Trägernzu erzielen – 21,23. Unter der Annahme eines zweiseitigen gepaarten T-Tests mit einem Alpha-Niveau von 0,05 zeigte die Power-Analyse, dass eine Stichprobengröße von 28 Teilnehmern 80 % Leistung liefern würde, um einen statistisch signifikanten Unterschied dieser Größenordnung zu erkennen. Um mögliche Abbrecher zu berücksichtigen, haben wir 30 Teilnehmer eingeschrieben. Darüber hinaus reichte eine Nachbeobachtungszeit von drei Monaten aus, um bei diesen Patienteneine Zunahme der Bakterienlast zu beobachten.
Geeignete Patienten waren Erstanwender von Prothesengeräten und präsentierten sich sowohl mit angrenzender als auch antagonistischer natürlicher Zahnbesatzung. Ausschlusskriterien umfassten: Sondierungstiefen >4 mm, immungeschwächter Status (z. B. Chemotherapie), Antibiotikaeinnahme in den letzten 90 Tagen, starkes Rauchen (>25 Zigaretten/Tag) und kognitive Beeinträchtigung, die das Verständnis von RPD-Verfahren erschwert.
Alle Teilnehmer erhielten verschlossene RPDs, die mit einem Kobalt-Chrommetall-Gerüst und Acrylharz (Polymethylmethacrylat) gefertigt wurden. Das Design jedes RPD wurde basierend auf der Klassifikation von Edentulismus, der Qualität der Restgrate und biomechanischen Überlegungen angepasst.
Probenentnahmeverfahren
Die Probenentnahme erfolgte ausschließlich an den Stützzähnen von herausnehmbaren Teilprothesen (RPDs) zwischen den Zeitpunkten T0 und T3. Die Teilnehmer wurden zunächst gebeten, gründlich mit Wasser zu gurgeln, um restliche Essensreste zu entfernen. Vor der Probenentnahme wurde der ausgewählte Widerlagerzahn mit Watterollen isoliert, um eine trockene Arbeitsumgebung zu gewährleisten. Zwei sterile Papierspitzen (Nr. 35; 04 konisch) wurden in den Zahnfleisch an den mesialen und distalen Seiten der Mundoberfläche des Zahns eingesetzt und 1 Minute an Ort und Stelle gelassen. Die Papierpunkte wurden dann in ein steriles Mikrorohr mit 1,5 ml Kochsalzlösung übertragen und in ein ausgewiesenes mikrobiologisches Labor transportiert. Die Proben wurden bis zum DNA-Isolierungsprozess bei -20°C gelagert.
Herstellung und Amplifikation von bakterieller DNA:
Der Parodontoscreen-Test (Materialübersicht) wurde verwendet, um T. denticola, T. forsythia und P. gingivalis mittels RT-PCR26 zu identifizieren. Der Test besteht aus: DNA-Präparation; Echtzeit-PCR-Amplifikation mit spezifischen Reagenzien (eine Mischung für universelle bakterielle Amplifikation, eine Mischung für opportunistische bakterielle Amplifikation und eine Mischung für humane genomische DNA-Amplifikation); sowie die Aufzeichnung und Interpretation von Verstärkungsergebnissen.
Die DNA-Extraktion erfolgte mit einem DNA-Extraktionskit (Materialtabelle) und folgte den Richtlinien des Herstellers, um eine optimale DNA-Qualität zu gewährleisten. Der Test verwendet eine Echtzeit-PCR-Qualitativanalyse mit einer paraffinversiegelten PCR-Mischung. Diese Mischung umfasst eine interne Kontrolle zur Überprüfung der Validität des PCR-Tests sowie eine Sample Intake Control (SIC) zur Bewertung der Extraktionsqualität und zur Bestätigung ausreichender DNA für eine genaue Amplifikation.
Die PCR-Amplifikation erfolgte mit speziellen Streifen und Kappen, mit Reagenzien wie Taq-Polymerase-Lösung, Mastermischung unter Paraffinschicht, DNA-Probe und Mineralöl. Das PCR-Programm ist wie folgt: (i) Anfängliche Denaturierung bei 80 °C für 30 Sekunden, (ii) Denaturierung bei 94 °C für 1 Minute 30 S, (iii) 5 Zyklen mit 30 Sekunden bei 94 °C (Denaturierung), 15 Zyklen bei 64 °C (Primerbindung und Verlängerung, Nachweis von Fluoreszenz), (iv) 45 Zyklen mit 10 Sekunden bei 94 °C (Denaturierung), 15 s bei 64 °C (Primerbindung und Verlängerung, Nachweis von Fluoreszenz), (v) 5 s bei 94 °C (endgültige Denaturierung).
Die Fluoreszenzdetektion erfolgte auf den Fang- und Hex-Detektionskanälen, mit Ausnahme von Röhre Nr5, die den Marker enthielt (wo die Fluoreszenz auf den Flam- und Rox-Kanälen festgestellt wurde). Der Verstärkungsprozess wurde mit Echtzeit-Wärmezyklen durchgeführt (Materialtabelle). Die Software RealTime für das Instrument (Version 7.9) wurde für die automatische Registrierung, Interpretation und quantitative Analyse der PCR-Amplifikationsdaten verwendet, was eine präzise Schätzung der Pathogenlasten ermöglichte.
Mikrobielle Ladungen wurden als "Lg (Genomäquivalente/Probe)" dargestellt. Die Ergebnisse wurden im Parodontoscreen-Testbericht für jeden Patienten in drei Bereichen präsentiert, basierend auf den Bakterienbelastungsniveaus: P. gingivalis (normal <5,0; moderat ≥5,0; schwer >6,0); T. forsythia (normal <5,0; mäßig ≥5,0; schwer >5,5); und T. denticola (normal <3,5; moderat ≥3,5; schwer >5,0).
Klinische Untersuchung
Die klinische Untersuchung umfasste eine detaillierte Untersuchung des parodontalen Zustands der Widerlager- und Nicht-Widerstandszähne bei T0 und T3. Der Plaqueindex (PI) wurde mit einer Zahnsonde nach den Silness-Loe-Kriterien (0-3)27 bewertet. Der Zahnfleischzustand wurde an sechs Stellen der Zahnoberfläche mittels Gingivalindex (GI) nach folgenden Kriterien bewertet: 0, keine Entzündung; 1, leichte Entzündung; 2. Entzündung mit Zahnfleischblutungen während des Sonden; 3, schwere Entzündung mit möglicher spontaner Zahnfleischblutung28.
Die Sondtiefe (PD) wurde mit der Williams-Sonde vom Zahnfleischrand bis zum Ende der klinischen Taschentiefe29 gemessen. Die Zahnbeweglichkeit (TM) wurde durch bimanuelle Palpation in horizontaler und vertikaler Richtung gemäß Millers Kriterien30 bestimmt.
Alle Studienteilnehmer erhielten vor der klinischen Untersuchung eine angemessene nicht-chirurgische Parodontalbehandlung, einschließlich der Entfernung von Zahnbelag und Zahnstein mittels Ultraschallkalk. Die Probanden wurden außerdem in Mundhygiene-Verfahren wie Zähneputzen und Reinigung von Prothesen unterrichtet sowie erhielten Ratschläge zum Entfernen der Prothese nachts.
Statistische Analyse
Die Daten wurden mit Microsoft Excel und IBM SPSS Statistics for Windows ausgewertet. Deskriptive Statistiken (Mittelwert, Standardabweichung und Bereich) wurden für Alter, mikrobielle Lasten und parodontale Indizes berechnet, einschließlich PI, GI, PD und TM. Veränderungen der klinischen und mikrobiologischen Parameter zwischen vor (T0) und 3 Monaten nach der Einführung (T3) wurden mit dem Wilcoxon-Signed-Rank-Test für gepaarte nichtparametrische Daten bewertet. Der exakte Fisher-Test (Monte-Carlo-Simulation, zweiseitig) wurde verwendet, um kategoriale Daten zur Klassifikation der mikrobiellen Last auszuwerten. Spearmans Rangkorrelationskoeffizient (ρ) wurde verwendet, um Zusammenhänge zwischen mikrobiellen Lasten und parodontalen Parametern zu bewerten. Ein p-Wert < 0,05 wurde für alle Analysen als statistisch signifikant angesehen.