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Dieses Protokoll beschreibt eine computergestützte Methode zur Definition der möglichen Biomarker für durch Paracetamol verursachte Leberschädigung, die Netzwerktoxikologie, Transkriptomik, maschinelles Lernen und molekulares Andocken nutzt (Abbildung 1). Das Protokoll richtet sich an Forscher, die Zugang zu Bioinformatik-Tools, transkriptomischen Datensätzen und Molekulardocking-Software haben.
Vorgehen
Schritt 1: Identifizierung von Paracetamol-Zielen
Holen Sie die SMILS-Darstellung von Paracetamol (APAP) von PubChem ab. Nutzen Sie Online-Plattformen (ChEMBL, SwissTargetPrediction, STITCH, SEA), um potenzielle molekulare Ziele von APAP vorherzusagen. Integrieren und deduplizieren Sie die vorhergesagten Ziele, um eine Liste von 140 APAP-Zielen mit hoher Zuverlässigkeit zu erstellen.
Schritt 2: Identifikation von Hepatotoxizitätszielen
Hepatotoxizitätsbezogene Gene aus der GeneCards-Datenbank abrufen. Kompilieren und deduplizieren Sie die Liste, um einen nicht-redundanten Satz von 657 hepatotoxizitätsbezogenen Genen zu erzeugen. Identifizieren Sie überlappende Gene zwischen APAP-Zielen und hepatotoxizitätsbezogenen Genen mithilfe eines Venn-Diagramms.
Schritt 3: Transkriptomische Datenvorverarbeitung
Laden Sie den GSE74000-Datensatz von GEO herunter. Rohexpressionsdaten mit DESeq2 vorverarbeiten: Gene mit niedriger Expression entfernen, Größenfaktoren normalisieren und Varianz-stabilisierende Transformation (VST) anwenden. Führen Sie eine differentielle Expressionsanalyse mit Limma und DESeq2 durch, mit Schwellen des angepassten p-Werts < 0,05 und |log2FC| > 1.
Schritt 4: Funktionale Anreicherungsanalyse
Laden Sie überlappende Gene in STRING hoch, um Genontologie (GO), KEGG-Signalweg, Gewebeexpression und Krankheitskorrelationsanalysen zu untersuchen. Visualisieren Sie die Ergebnisse der funktionalen Anreicherung mithilfe von Blasendiagrammen und Heatmaps.
Schritt 5: Maschinelles Lernen zur Auswahl von Merkmalegenen
Wenden Sie einen Random Forest-Klassifikator (n_estimators=500, max_depth=10) an, um Merkmalsgene aus den sich überlappenden APAP- und Hepatotoxizitätsgenen zu priorisieren. Bewerten Sie die Modellleistung anhand von Out-of-Bag (OOB)-Fehler- und Feature-Importance Scores. Wählen Sie die Top 20 Merkmalsgene für eine weitere Analyse aus.
Schritt 6: Molekulare Andockung
APAP-Struktur (CID 1983) aus PubChem und Proteinrezeptoren (ESR1: PDB ID 1SJ0, PNP: PDB ID 1V2H) aus PDB abgerufen. Liganden- und Rezeptordateien vorbereiten: in PDB-Format konvertieren, polare Wasserstoffe hinzufügen, Ladungen zuweisen und als PDBQT-Dateien speichern. Definieren Sie das Andockgitter in AutoDock Tools, das die aktive Stelle des Proteins abdeckt. Führe molekulare Andockung mit AutoDock Vina durch, wobei die Erschöpfung auf 8 gesetzt ist, und analysiere Bindungsaffinitäten und Wechselwirkungen. Visualisieren Sie Andockergebnisse mit PyMOL, um Bindungskonformationen und Schlüsselinteraktionen zu analysieren.
Schritt 7: Statistische Analyse
Bestimmen Sie die statistische Signifikans mittels t-Tests und passen p-Werte für Mehrfachvergleiche mit der Benjamini-Hochberg-Methode31 an. Visualisieren Sie statistisch signifikante Assoziationen mithilfe von Heatmaps und Streudiagrammen.
Materialien und Methoden
Identifikation von Paracetamol-Zielen
Um potenzielle molekulare Ziele von APAP zu identifizieren, haben wir zunächst die SMILS-Darstellung aus der PubChem-Datenbank abgerufen. Anschließend nutzten wir mehrere Online-Plattformen, darunter das Chemical European Molecular Biology Laboratory (ChemBL)32, Swiss Target Prediction33, Search Tool for the Interaction of Chemicals and Targets (STITCH)34 und Similarity Ensemble Approach (SEA)35, um mögliche Ziele vorherzusagen. Nach der Integration der Ergebnisse dieser Tools haben wir eine Reihe von High-Confidence-Zielen für APAP ausgewählt. Tabelle 1 definiert die wichtigsten Genkategorien, die in dieser Studie verwendet werden, und erläutert ihre Rolle in der Datenanalyse und biologischen Interpretation. Die konsequente Verwendung dieser Begriffe gewährleistet eine klare Kommunikation unserer Ergebnisse.
Identifikation von Hepatotoxizitätszielen
Potenzielle hepatotoxizitätsassoziierte Gene wurden aus der GeneCards-Datenbank abgerufen. Alle identifizierten Gene wurden zusammengestellt, Duplikate entfernt und eine nicht-redundante Liste für nachgelagerte Analysen erstellt. Der GSE74000-Datensatz wurde am 15. März 2024 aus dem GEO-Repository heruntergeladen. Rohexpressionsdaten wurden mit dem Limma-Paket (Quantilnormalisierung) verarbeitet und normalisiert. Die differentielle Ausdrucksanalyse wurde mit linearer Modellierung mit empirischer Bayes-Schrumpfung durchgeführt. Gene, die den bereinigten p-Wert < 0,05 (Benjamini-Hochberg FDR) und |log₂FC| > 1 galten als signifikant. Die Visualisierung der DEGs erfolgte mithilfe von Vulkandiagrammen und Heatmaps, die mit ggplot2 generiert wurden.
Datenvorverarbeitung
Rohzähldaten wurden mit DESeq2 vorverarbeitet. Gene mit niedriger Expression wurden mit einem Nachweisschwellenwert von CPM >1 in mindestens 70 % der Proben entfernt. Die Bibliotheksgrößennormalisierung wurde unter Verwendung der DESeq2-Größenfaktoren durchgeführt, wie in Gleichung (1) definiert:
(1)
Wobei der mediane Größenfaktor mit sj bezeichnet wird. Zur Stabilisierung von Mittelwert-Varianz-Beziehungen wurde in Gleichung (2) eine varianzstabilisierende Transformation (VST) verwendet:
(2)
DEGs wurden mittels des Wald-Tests mit Benjamini-Hochberg-Korrektur identifiziert, wobei Gene als signifikant betrachtet wurden, wenn sie in Gleichung (3) verwendet werden:
(3)
Die von DESeq2 abgeleitete DEG-Menge wurde als Gleichung (4) definiert:
(4)
Diese Menge (X) wurde in der Konsensstrategie zusammen mit Limma Trend (Y) und Limma Voom (Z) verwendet.
Aufbau von PPI-Netzwerken
Venn-Diagramme wurden verwendet, um gemeinsame Gene zwischen APAP- und Hepatotoxizitätszielen zu identifizieren. Die sich überlappenden Gene wurden dann in die Search Tool for the Retrieval of Interacting Genes/Proteins (STRING)-Datenbank hochgeladen, um PPI-Netzwerke zu konstruieren.
Multidimensionale funktionale Anreicherungsanalyse
Zunächst führten wir Gene Ontology (GO), Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG), Gewebeexpression und krankheitsbezogene funktionelle Analysen der überlappenden Gene für APAP und Hepatotoxizität über die STRING-Website durch. Anschließend führten wir GO-, KEGG- und Gene Set Enrichment Analysis (GSEA) (REACTOME) Anreicherungsanalysen der Differentialgene auf Hepatotoxizität mit Sendo Academic Tools durch.
Zufallswaldanalyse
Wir haben maschinelles Lernen angewendet, um die Top 20 Feature-Gene aus den sich überlappenden APAP- und Hepatotoxizitätsgenen in den APAP-induzierten Hepatotoxizitätstranskriptomdaten zu identifizieren. Ein Random Forest-Klassifikator wurde implementiert, mit 500 Bäumen (n_estimators=500), maximaler Baumtiefe von 10 (max_depth=10), mindestens 2 Stichproben erforderlich, um einen Knoten zu spalten (min_samples_split=2), und dem Gini-Verunreinigungskriterium (Kriterium='Gini')36. Die Leistung des Modells wurde anhand des Out-of-Bag-(OOB)-Fehlers bewertet, wobei ein Wert nahe 0 eine höhere prädiktive Genauigkeit anzeigt. Feature-Importance Scores wurden berechnet und auf Basis der Random Forest-Analyse visualisiert, um den Beitrag jedes Gens zu bewerten, wie in Gleichung (5).
(5)
N war die Gesamtzahl der Stichproben, yi war die 1(·) war eine Indikatorfunktion, 1, wenn die Bedingung stimmte, und sonst 0;
war das vorhergesagte Label von Probe III, das nur Bäume verwendete, bei denen III nicht im Training enthalten war.
Differenzielle Expression charakterisierter Gene
Die Expressionsunterschiede von Merkmalsgenen in den transkriptomischen Daten wurden mithilfe von Geigendiagrammen visualisiert. Biomarker mit statistisch signifikanten Unterschieden wurden als potenzielle neuartige Biomarker für APAP-induzierte Hepatotoxizität für weitere Untersuchungen identifiziert.
Molekulare Andockung
Kleine Molekülverbindungen (CID 1983) wurden aus der PubChem-Datenbank abgerufen, und die Proteinrezeptoren ESR1 und PNP (PDB-IDs 1SJ0 und 1V2H) wurden aus der Protein Data Bank heruntergeladen. Ligandenstrukturen wurden mit OpenBabel in das PDB-Format umgewandelt und in AutoDock Tools vorverarbeitet, indem polare Wasserstoffe hinzugefügt, Gasteiger-Ladungen zugewiesen, rotierbare Bindungen definiert und im PDBQT-Format gespeichert wurden. Proteinrezeptoren wurden mit PyMOL hergestellt, indem Wassermoleküle und kokristallisierte Liganden entfernt wurden, gefolgt von der Zugabe polarer Wasserstoffe und der Zuweisung von Kollman-Ladungen mit AutoDock Tools und als PDBQT-Dateien gespeichert wurden.
Beim molekularen Andocken wurde die AutoDock-Software verwendet, um das Andockgitter zu definieren, das die aktive Stelle von Protein37 abdeckt. Das Gitterfeld war an den Koordinaten zentriert (x = XX·XX, y = YY· YY,z = ZZ· ZZ) mit Abmessungen von 40 × 40 × 40 Å und einem Gitterabstand von 0,375 Å, was eine vollständige Abdeckung der Bindungstasche gewährleistet. AutoDock Vina wurde eingesetzt, um Liganden-Protein-Bindungsmodi und Bindungsaffinitäten zu berechnen, wobei der Exhaustivitätsparameter auf 8 gesetzt wurde und die obersten neun Bindungsposen für jeden Liganden generiert wurden.
Die Validierung des Andockprotokolls erfolgte durch erneutes Andocken des kokristallisierten Liganden in die aktive Stelle, was einen RMSD-Wert von < 2,0 Å ergab und die Zuverlässigkeit des Andockverfahrens bestätigte. Die Andockergebnisse wurden mit PyMOL visualisiert, um Bindungskonformationen und Schlüsselwechselwirkungen, einschließlich Wasserstoffbrückenbindungen, zu analysieren.
Andocksimulationen sagten voraus, dass Verbindung X in die Bindungsstelle von Protein Y passt und potenzielle Wasserstoffbrücken und hydrophobe Kontakte bildet, mit einer prognostizierten Bindungsenergie von -8,5 kcal/mol.
Fehlerbehebung und mögliche Modifikationen
Um die Robustheit und Reproduzierbarkeit des vorgeschlagenen Arbeitsablaufs zu verbessern, sollten mehrere Fehlerbehebungsüberlegungen und mögliche Änderungen berücksichtigt werden. Wenn eine unerwartet geringe Anzahl differenziell exprimierter Gene (DEGs) identifiziert wird, wird den Nutzern geraten, das Normalisierungsverfahren zu überprüfen, eine genaue Gruppenkennzeichnung zu überprüfen und die |log2-fache Änderung anzupassen| Schwellenwert, während eine angemessene Fehlentdeckungsrate (FDR) Kontrolle aufrechterhalten wird. Umgekehrt kann bei einer übermäßigen Anzahl von DEGs strengere FDR-Cutoffs oder das Filtern von Low-Varianz-Genen vor der differentiellen Expressionsanalyse die Spezifität verbessern.
Batch-Effekte können Clusteringmuster in explorativen Analysen wie der Hauptkomponentenanalyse (PCA) beeinflussen. Wenn die Proben überwiegend nach Batch und nicht nach biologischen Bedingungen clustern, sollten Batch-Korrekturmethoden (z. B. empirische Bayes-Ansätze wie ComBat) angewendet und die Metadaten der Proben sorgfältig auf Konsistenz überprüft werden.
Bei der Random Forest-basierten Merkmalsauswahl können hohe Out-of-Bag (OOB)-Fehlerraten oder instabile Merkmalsrankings auf eine suboptimale Modellkonfiguration hinweisen. In solchen Fällen kann eine Erhöhung der Anzahl der Bäume, das Abstimmen des MTRY-Parameters oder die Durchführung wiederholter Modellläufe mit Konsens-Merkmalsauswahl die Modellstabilität und die prädiktive Zuverlässigkeit verbessern. Zusätzlich können Kreuzvalidierungsstrategien eingesetzt werden, um die Modellrobustheit weiter zu bewerten.
Um die Zuverlässigkeit zu erhöhen, können Nutzer die Analyse optional mit alternativen DEG-Schwellenwerten oder Parametereinstellungen für maschinelles Lernen wiederholen und die Konsistenz identifizierter Merkmalsgene vergleichen. Solche Sensitivitätsanalysen helfen sicherzustellen, dass die wichtigsten Erkenntnisse nicht durch spezifische Parameterwahl bestimmt werden, und unterstützen die Reproduzierbarkeit des Workflows über ähnliche transkriptomische Datensätze hinweg.
Statistische Analysen
Die statistische Signifikanz wurde mittels eines t-Tests bestimmt, wobei p-Werte zum Vergleich angegeben wurden. Statistische Korrelationen zwischen Genexpressionsniveaus und hepatotoxizitätsbezogenen Phänotypen wurden mit Pearson- und Spearman-Korrelationskoeffizienten bewertet, abhängig von der Datennormalität. P-Werte wurden für Mehrfachvergleiche mit der Benjamini-Hochberg-Methode angepasst. Signifikante Assoziationen wurden mit Heatmaps und Streudiagrammen visualisiert, was eine robuste Bewertung der transkriptomischen Beziehungen ermöglichte.