Mechanische Verarbeitung von SVF-angereicherten Mikrofetten zur Rekonstruktion traumatischer Weichteildefekte

Summary

Dieses Protokoll beschreibt eine reproduzierbare Methode zur Herstellung mechanisch verarbeiteter, SVF-angereicherter Mikrofette aus autologem Fettgewebe und zur Injektion in höhlenartige traumatische Weichteildefekte für klinische Rekonstruktion.

Abstract

Traumatische Weichteildefekte stellen erhebliche Herausforderungen für die Rekonstruktion dar, bedingt durch Gewebeverlust, beeinträchtigte Gefäßerkrankungen und Schwierigkeiten, eine dauerhafte Abdeckung zu erreichen. Fettgewebe bietet eine praktische autologe Gewebequelle, und mechanisch verarbeitete stromale Gefäßfraktion (SVF)-angereichertes Mikrofett kann intraoperativ ohne enzymatische Verdauung hergestellt werden.
Diese Studie präsentiert ein standardisiertes klinisches Protokoll zur Entnahme autologen Fettgewebes und dessen Verarbeitung zu SVF-angereicherten Mikrofetten zur Injektion in kariesartige traumatische Weichteildefekte. Fett wird manuell aus Oberschenkel oder Bauch unter niedrigem Unterdruck gewonnen, mechanisch durch Schneiden und Spritzen-zu-Spritzen-Emulgierung fragmentiert, gefiltert, um eine einheitliche Mikrofettkonsistenz zu erreichen, und zentrifugiert, um den SVF-haltigen Anteil zu isolieren. Das verarbeitete Mikrofett wird in einem mehrschichtigen Muster in die Wundhöhle injiziert. Die postoperative Beurteilung umfasst eine serielle klinische Untersuchung, fotografische Dokumentation und die Messung der Wundflächenreduktion bis zur Epithelialisierung.
In einer kleinen Kohorte war die Methode mit fortschreitender Wundkontraktion und vollständiger Epithelialisierung innerhalb von etwa 4–8 Wochen verbunden, ohne größere Komplikationen. Obwohl zelluläre Zusammensetzung und Lebensfähigkeit nicht quantifiziert wurden, bot die Technik einen praktikablen intraoperativen Ansatz, der für Umgebungen ohne Zugang zu enzymatischer Verarbeitung oder Laboreinrichtungen geeignet war. Dieses Protokoll bietet eine praktische, minimal manipulierte Methode zur Verabreichung von SVF-angereichertem Mikrofett zur Behandlung traumatischer Kariesdefekte und könnte als Grundlage für weitere kontrollierte Studien dienen.

Introduction

Traumatische Weichteildefekte vom Typ Höhle bleiben eine große rekonstruktive Herausforderung, da sie Gewebeverlust, beeinträchtigte lokale Durchfluss und ein hohes Infektions- und Totraum-Risiko vereinen. Konventionelle Deckungstechniken, wie Hauttransplantate mit Split-Thickness oder Lappentransfers, bieten in vielen Fällen eine dauerhafte Deckung. Sie sind jedoch häufig durch die Morbidität der Spenderstätte, technische Komplexität und variable Langzeitergebnisse begrenzt, insbesondere in kontaminierten oder vernarbten Betten ^1,2,3.

Fettgewebe ist eine reichliche, leicht zugängliche Quelle einer heterogenen Zellpopulation, die als stromale Gefäßfraktion (SVF) bezeichnet wird. SVF umfasst mesenchymale stromale Zellen, endotheliale Vorläufer, Perizyten und unterstützende stromale Elemente. Wenn SVF in Fettgewebepartikeln zurückgehalten wird, bleibt der native extrazelluläre Kontext der SVF während der Handhabung und klinischen Verabreichung^erhalten. Klinisch wurde berichtet, dass für SVF angereicherte Fetttransplantate (SVF-angereicherte Mikrofette) die Transplantatretention verbessern und mit einer beschleunigten Wundepithelialisierung in verschiedenen Indikationen assoziiert sein ^5,6,7.

Es gibt zwei Hauptstrategien, um SVF aus Lipoaspirat zu gewinnen. Die enzymatische Verdauung führt typischerweise zu höheren nukleären Zellanzahlen pro Volumeneinheit, erfordert jedoch spezielle Reagenzien, Laborinfrastruktur, längere Verarbeitungszeiten und unterliegt in vielen Rechtsordnungen regulatorischen Beschränkungen ^4,8. Im Gegensatz dazu umfassen mechanische Verarbeitungsmethoden das Schneiden, die Emulgierung von Spritze zu Spritze, Filtration und den Einsatz geschlossener mechanischer Bauteile. Diese Ansätze ermöglichen eine schnelle intraoperative Herstellung von SVF-angereichertem Mikrofett mit minimaler Manipulation und kürzeren Bearbeitungszeiten^von 6,9,10,11. Neuere mechanische Systeme haben Verarbeitungszeiten von <15 Minuten und Erträgen von enzymatischen Methoden in einigen Reihen gemeldet, wobei gemessene Zellanzahl und Lebensfähigkeit je nach Gerät und^{Bediener variieren können}.

Trotz der wachsenden Literatur zu mechanisch verarbeiteten SVF und zu Fetttransplantationen bei chronischen Geschwüren und diabetischen Fußerkrankungen sind standardisierte, reproduzierbare Protokolle, die speziell auf kariesartige traumatische Weichteildefekte abzielen, selten ^7,12. Veröffentlichte klinische Berichte behandeln häufig chronische Geschwüre, diabetische Wunden oder ästhetische Fetttransplantationen. Nur wenige bieten jedoch ein intraoperatives, schrittweises Protokoll an, das Ernteparameter, Emulgierungsendpunkte, Filtrationspronengrößen, Zentrifugationskraft (× g), Dosierung pro Wundbereich und Wundbereitschaftskriterien für die Injektion in Trauma-Situationen ^7,13 spezifiziert.

Praktische Anwendbarkeitshinweise sind daher für chirurgische Teams, die diesen Ansatz in Betracht ziehen, wichtig. Basierend auf der verfügbaren Literatur und unserer operativen Erfahrung betragen typische intraoperative Aspiratvolumina für eine einzelne Kavitität ~20–40 ml. Dieses Volumen liefert in der Regel ausreichend verarbeitetes Mikrofett, um kleine bis mäßige Hohlräume zu füllen. Im Gegensatz dazu liegen großvolumige Rekonstruktionen wahrscheinlich außerhalb des Bereichs der mechanischen Point-of-Care-Verarbeitung und erfordern möglicherweise gestufte Verfahren oder alternative Strategien ^9,12. Mechanische SVF-Ansätze sind auch weniger geeignet für stark kontaminierte Wunden, bis die Infektion unter Kontrolle ist; In solchen Fällen sollten ergänzende Debridement und Infektionsmanagement (einschließlich gezielter Antibiotika und, wo angebracht, Therapie mit negativem Druck) der Transplantation⁷ vorausgehen.

Die vorliegende Arbeit zielt darauf ab, ein detailliertes, reproduzierbares intraoperatives Protokoll zur Herstellung von SVF-angereicherten Mikrofetten durch mechanische Verarbeitung und zur Injektion dieses Produkts in kariesartige traumatische Weichteildefekte bereitzustellen. Das Protokoll legt besonderen Wert auf explizite Betriebsparameter (Entnahme, mechanische Fragmentierung und Emulgierung, Filtration, Zentrifugation als × g, Injektionstechnik und objektive Wundflächenmessung), damit andere chirurgische Teams die Methode in ihren eigenen Umgebungen übernehmen und validieren können.

Protocol

Alle Verfahren wurden vom institutionellen Ethikausschuss genehmigt (Genehmigungsnummer KL-2025062) und wurde gemäß der Erklärung von Helsinki durchgeführt. Vor der Teilnahme wurde von allen Patienten eine schriftliche informierte Zustimmung eingeholt.

1. Patientenauswahl und präoperative Beurteilung

1. Erwachsene Patienten werden mit kariesartigen traumatischen Weichteildefekten eingeschlossen, die nach Abschluss einer ausreichenden chirurgischen Debridement eine rekonstruktive Behandlung erfordern.
   HINWEIS: Defekte sollten eine klar definierte Höhle mit umgebendem lebensfähigem Gewebe zeigen und keine anhaltende Nekrose zum Zeitpunkt der Rekonstruktion.
2. Ausschluss von Patienten mit aktiver systemischer Infektion oder unkontrollierter lokaler Wundinfektion, schlecht kontrolliertem Diabetes mellitus (definiert als HbA1c dauerhaft >8 % trotz Behandlung), signifikanter peripherer Gefäßerkrankung mit betroffenem Gliedmaß, bekannten Gerinnungsstörungen oder aktuellen Antikoagulationsstörungen, die nicht sicher unterbrochen werden können, Malignität am Defekt oder Kontraindikationen für Fettabsaugung oder Anästhesie, wie durch präoperative Untersuchung festgestellt.
3. Durchführung von Basisdatenerhebung und Wundbeurteilung
   1. Erfassen Sie die Ausgangsmerkmale der Patienten, einschließlich Alter, Geschlecht, Wundstelle, Verletzungsmechanismus und Zeit von der Verletzung bis zur Rekonstruktion.
   2. Führen Sie die Wundbeurteilung nach der regulären Wundvorbereitung durch. Messen Sie die Wundlänge und -breite an den breitesten Stellen mit einem sterilen Lineal. Erwerben Sie Standard-Digitalfotos mit fester Entfernung und Orientierung. Berechnen Sie die Wundfläche (cm²) mittels planimetrischer Analyse basierend auf kalibrierten Fotografien (siehe Schritt 6.6).
4. Bieten Sie präoperative Beratung an. Erklären Sie dem Patienten die Verfahrensschritte, erwartete Vorteile, potenzielle Risiken (einschließlich Infektion, Fettresorption und Notwendigkeit zusätzlicher Eingriffe), die Anforderungen an die postoperative Versorgung und den Nachsorgeplan.
5. Bestätigen Sie das Verständnis und holen Sie vor der Operation eine schriftliche informierte Einwilligung ein

2. Präoperative Vorbereitung

1. Vorbereitung steriler Geräte
   1. Bereiten Sie die erforderliche sterile Ausrüstung vor, darunter: Fettabsaugungskanülen (2–3 mm Durchmesser, stumpfe Spitze), Luer-Lock-Spritzen (10–20 ml Kapazität), sterile Luer-Lock-Verbinder für den Transfer von Spritze auf Spritze, chirurgische Schere, stumpfe Injektionskanonen (22G × 50 mm).
   2. Überprüfen Sie vor der Nutzung die Integrität und Sterilität aller Geräte.
2. Herstellung und Infiltration der tumeszenten Lösung
   1. Nehmen Sie 1.000 ml 0,9 % normaler Kochsalzlösung in einen sterilen Behälter
   2. Fügen Sie 2 ml 1:1.000 Epinephrin hinzu, um eine Endkonzentration von 1:500.000 zu erreichen. Unter sterilen Bedingungen gründlich mischen.
   3. Schließen Sie die Lösung mit einer Luer-Lock-Spritze mit einer 2-3 m stumpfen Infiltrationskanone an eine Luer-Lock-Spritze an
      HINWEIS: Lidocain wird absichtlich weggelassen, um eine separate, dosiskontrollierte Anästhesieverabreichung zu ermöglichen.
   4. Die Lösung wird in die subkutane Spenderstelle (z. B. Bauch- oder Oberschenkel) mit langsamen, fächerförmigen Durchgängen von tiefen zu oberflächlichen Ebenen eingeführt.
   5. Das Gesamtvolumen wird entsprechend der Spenderoberfläche und dem erwarteten Lipoaspiratvolumen angepasst.
   6. Infiltrieren, bis das Gewebe eine einheitliche Tumeszenz und Vasokonstriktion zeigt.
   7. Warte 10-15 Minuten nach der Infiltration, um maximale Vasokonstriktion zu ermöglichen, bevor du entnehmen kannst. HINWEIS: Epinephrin reduziert intraoperative Blutungen und erleichtert die Fettentnahme. Das Weglassen von Lidocain verhindert das Überschreiten sicherer Anästhesiedosen und ermöglicht eine separate lokale oder regionale Anästhesie.
3. Verabreichung der Anästhesie
   HINWEIS: Die Anästhesie wird getrennt von der tumeszenten Lösung verabreicht und basierend auf Defektgröße, Spenderstelle und Patiententoleranz ausgewählt. Eine der folgenden Anästhesiemethoden wird basierend auf Defektgröße, Spenderstelle und Patiententoleranz ausgewählt.
   1. Lokale Infiltration (Feldblock): Infiltrieren Sie 0,5–1 % Lidocain mit Adrenalin 1:200.000 mit einer stumpfen Kanüle (22 g × 50 mm). Radial um die sensorischen Nerven verteilt, die die Spenderstelle versorgen. Rechnen Sie mit 5–10 Minuten für die vollständige Anästhesiewirkung ein, bevor Sie an der Spenderstelle manipuliert werden oder in die Infiltration des Tumors eingesetzt werden.
      HINWEIS: Maximaldosis: 7 mg/kg Lidocain mit Adrenalin, angepasst an Patientengewicht und Begleiterkrankungen.
   2. Regionalanästhesie (optional): Verwenden Sie ultraschallgeleitete periphere Nervenblockaden basierend auf der Spenderstelle. Verwenden Sie Bupivacain (0,25–0,5 %) oder Ropivacain (0,5 %), dosiert gemäß den Standardrichtlinien. Bestätigen Sie den Blockeinsatz (10-20 Minuten) vor der Ernte.
   3. Vollnarkose: Reserviert für große Defekte oder kombinierte Eingriffe. Verabreichen Sie gemäß institutionellen Protokollen mit standardisierter Überwachung.
      VORSICHT: Stellen Sie sicher, dass die gesamte systemische Epinephrin-Dosis aller infiltrierten Lösungen innerhalb der anerkannten klinischen Sicherheitsgrenzen bleibt.

3. Fetternte

1. Wählen Sie die Spenderstelle (Bauch und/oder lateraler Oberschenkel) anhand folgender Kriterien aus
   1. Verfügbarkeit ausreichender subkutaner Fettgewebe, um eine ausreichende Ernte ohne Konturdeformität zu ermöglichen
   2. Fehlen von lokalen Narbenbildungen, Infektionen oder vorherigen Operationen, die die Gewebequalität beeinträchtigen könnten.
   3. Zugänglichkeit und Positionierung des Patienten auf dem Operationstisch, um sterile Infiltration und Aspiration zu ermöglichen.
      HINWEIS: Die Auswahl eines Standorts mit ausreichendem Gewebe und minimalem vorherigen Trauma erleichtert eine konsistente Fettentnahme und reduziert prozedurale Komplikationen.
2. Machen Sie unter sterilen Bedingungen einen 2–3 mm dicken Hautschnitt mit einem Skalpell Nr. 11. Schneiden Sie durch die Epidermis und Dermis hinunter zur subkutanen Schicht, ohne tiefere Faszie oder Muskel zu durchdringen.
3. Halten Sie einen kleinen, kontrollierten Schnitt aufrecht, um Narbenbildung zu minimieren.
4. Befestigen Sie eine 2-3 mm Fettabsaugungskanüle an eine 10-20 ml Luer-Lock-Spritze.
5. Führe die Kanüle durch den Hautschnitt in die subkutane Fettschicht ein, wobei sie oberflächlich zur darunterliegenden Faszie bleibt.
6. Verwenden Sie sanfte, multidirektionale Bewegungen, um die Kanüle gleichmäßig über die subkutane Zielfläche zu verteilen.
7. Üben Sie manuell niedrigen Unterdruck an, indem Sie den Spritzenkolben vorsichtig herausziehen, um Fettgewebe anzusaugen.
8. Vermeiden Sie aggressives Absaugen, um mechanische Schäden an fettabgeleiteten Zellen zu minimieren.
9. Die Aspiration in kleinen, kontrollierten Aliquots fortsetzen und die Kanüle innerhalb der subkutanen Schicht neu positionieren, um die Ernteeffizienz zu maximieren.
   HINWEIS: Halten Sie die Spritze bei Raumtemperatur (20–25 °C), um die Lebensfähigkeit der Zellen zu erhalten.
10. Entnehmen Sie etwa 20–40 ml Lipoaspirat, angepasst an die Defektgröße.
11. Nach der Aspiration werden die Kanüle entfernt und der Hautschnitt mit einer einzelnen 3-0- oder 4-0-Nylonnaht geschlossen oder sterile Klebestreifen für kleinere Stichschnitte verwendet. Tragen Sie einen sterilen Verband an der Spenderstelle auf.
12. Das aspirierte Lipoaspirat befindet sich zunächst in der Luer-Lock-Spritze, die für die Entnahme verwendet wird. Lösen Sie vorsichtig die Entnahmekanüle ab und übertragen Sie das Lipoaspirat in eine neue, sterile 10-20 mL Luer-Lock-Spritze für die weitere Verarbeitung.
13. Vermeiden Sie Lufteinwirkung, hohe Temperaturen oder übermäßige mechanische Kraft. Halten Sie den Aspirat bis zur Verarbeitung (z. B. Reinigung, Zentrifugation oder Einspritzung) bei Raumtemperatur (20–25 °C).
    HINWEIS: Die Verwendung einer frischen sterilen Spritze verhindert eine Verunreinigung und ermöglicht eine standardisierte Verarbeitung. Sanfte Handhabung erhält die Lebensfähigkeit der Adipozyten und der stromalen Gefäßfraktion

4. Mechanische Verarbeitung von SVF-angereicherten Mikrofetten

1. Lassen Sie das entnommene Lipoaspirat 5 Minuten bei Raumtemperatur (20-25 °C) in sterilen 10-20 mL Luer-Lock-Spritzen aufrecht stehen, um eine schwerkraftbasierte Trennung zu ermöglichen.
2. Nach dem Stehen werden drei deutlich sichtbare Schichten (obere Ölschicht [freie Lipidfraktion], mittlere Fettschicht, untere wässrige/Blutschicht).
3. Bei steriler Technik halten Sie die Spritze vertikal mit der Düse nach oben gerichtet, und schieben Sie den Kolben vorsichtig vor, um die obere Ölschicht auszustoßen, bis nur noch der Fettanteil übrig bleibt. Drehen Sie die Spritze um und entfernen Sie vorsichtig die untere Wasser-/Blutschicht durch langsames Verschieben oder Sugen mit einer sterilen Spritze. Behalten Sie nur den mittleren Fettanteil für die weitere Verarbeitung.
   HINWEIS: Die Entfernung von freiem Öl und wässrigen Komponenten reduziert entzündliche Nebenprodukte und verbessert die Konsistenz des Transplantats sowie die Zelllebensfähigkeit.
4. Übertragen Sie den zurückgehaltenen Fettanteil in eine sterile Edelstahl- oder Glasschale. Mit einer sterilen chirurgischen Schere wird das Fettgewebe vorsichtig in Fragmente von etwa 1–2 mm Größe zerkleinert, um übermäßige Kompression oder Scherkräfte zu vermeiden.
5. Fülle das gehackte Fettgewebe in eine 10 ml Luer-Lock-Spritze. Verbinden Sie diese Spritze mit einer zweiten 10-mL Luer-Lock-Spritze über einen sterilen weiblichen Luer-Lock-Steckverbinder.
6. Mechanisch emulgieren Sie das Fettgewebe, indem Sie es für 20–30 Durchgänge in gleichmäßiger, moderater Geschwindigkeit zwischen den beiden Spritzen hin und her transportieren. Machen Sie weiter, bis eine gleichmäßige, injizierbare Mikrofettkonsistenz erreicht ist.
   HINWEIS: Das verarbeitete Fett sollte homogen emulgiert erscheinen und mit minimaler sichtbarer Öltrennung erscheinen.
7. Lösen Sie den Luer-Lock-Anschluss ab und übertragen Sie das emulgierte Mikrofett von der Spritze in ein steriles Zentrifugenrohr, das mit dem Zentrifugenrotor kompatibel ist. Stellen Sie sicher, dass die Röhren vor der Zentrifugation durch das Volumen ausbalanciert sind.
8. Zentrifugieren Sie das emulgierte Fett bei etwa 400 × g für 3 Minuten bei Zimmertemperatur.
9. Nach der Zentrifugation sind drei Schichten sichtbar: obere Ölschicht, mittlere SVF-angereicherte Mikrofettfraktion, untere wässrige/Blutschicht (Abbildung 1).
10. Mit einer sterilen Spritze wird vorsichtig nur die mittlere, mit SVF angereicherte Mikrofettschicht abgesaugt, um eine Kontamination durch die angrenzenden Schichten zu vermeiden.
11. Führen Sie die gesammelte Fraktion durch einen 500–1.000 μm starken sterilen Edelstahlgitterfilter, um faserige Ablagerungen und große Partikel zu entfernen. Dieser Schritt ermöglicht eine reibungslose Injektion und minimiert das Verstopfen der Kanüle während der Transplantationsabgabe.
12. Füllen Sie das gefilterte, mit SVF angereicherte Mikrofett in 1–5 mL sterile Spritzen zur sofortigen Injektion.

5. Injektion in die Defektstelle

1. Führen Sie eine abschließende Wundentschärfung durch, gefolgt von gründlicher Spülung mit steriler Kochsalzlösung, bis das gesamte nekrotische Gewebe entfernt ist.
2. Bestätigen Sie die Wundfähigkeit durch gesundes Granulationsgewebe und/oder Punktenblutungen, was auf ausreichende Durchfluss und Gewebetragfähigkeit hinweist.
3. Mit steriler Technik wird eine stumpfe Kanüle (1,2–2,0 mm Durchmesser) durch den Wundrand oder die angrenzende intakte Haut in den Defekt eingeführt und so weit wie möglich ein direktes Eindringen durch die zentrale Wundbasis vermieden.
   1. Tiefe und Gewebeebene: Die Kanüle in die subkutane Gewebeebene unmittelbar oberflächlich zum Wundbett vorschieben; Eine intramuskuläre Platzierung wird vermieden, es sei denn, dies wird ausdrücklich durch die Defekttiefe angegeben.
   2. Einstichwinkel: Die Kanüle wird in einem niedrigen schrägen Winkel (etwa 10–30°) relativ zur Wundfläche eingesetzt, um eine kontrollierte, geschichtete Ablagerung zu ermöglichen.
   3. Kanülepositionierung: Halten Sie die Kanülenspitze in gut gefäßreichen Gewebeebenen, um das Überleben des Transplantats zu optimieren und die Extrudion zu minimieren.
4. Injektion des SVF-angereicherten Mikrofetts mit einer mehrschichtigen, retrograden Fanning-Technik, wobei kleine Aliquoten während des langsamen Kanüleentzugs abgelagert werden.
5. Verteilt das Transplantat gleichmäßig über die Wundbasis, die Ränder und das umliegende subkutane Gewebe, um eine gleichmäßige Füllung zu erreichen und den Kontakt mit dem gefäßgerichteten Empfängergewebe zu maximieren.
6. Passen Sie das Einspritzvolumen entsprechend der Größe und Tiefe der Kavitität an, typischerweise zwischen 5 und 12 mL.
7. Die Injektion wird eingestellt, sobald der Defekt ausreichend gefüllt und die Gewebekonturen wiederhergestellt sind, sodass keine Überkorrektur oder übermäßige Gewebespannung gewährleistet ist.
   HINWEIS: Vermeiden Sie Überfüllung, um das Risiko einer Fettnekrose, beeinträchtigter Perfusion oder Transplantatextrudierung zu verringern.
8. Decken Sie die Wunde mit Vaseline-(Petrolatum-)Gaze ab und bringen Sie sie in nicht-drückenden Kontakt mit der Wundoberfläche.
9. Verwenden Sie einen sekundären Verband, um die Stelle zu schützen, während eine passive Entwässerung ermöglicht und Scherkräfte auf das eingespritzte Mikrofett minimiert werden.

6. Postoperative Versorgung und Nachsorge

1. Verabreichen Sie prophylaktische Antibiotika gemäß dem institutionellen Protokoll, wobei Wundgröße, Kontaminationsstatus und patientenspezifische Risikofaktoren berücksichtigt werden.
2. Weisen Sie Patienten an, Druck – Scherung oder Reibung sowohl an Spender- als auch an Transplantationsstellen – 1–2 Wochen postoperativ zu vermeiden, um die Verschiebung des Transplantats zu minimieren und die Integration zu optimieren.
3. Untersuchen Sie den Wundverband bei jedem Nachsorgetermin und ersetzen Sie bei Bedarf die Vaseline-Gaze (Petrolatum). Entfernen Sie nicht gewaltsam haftende Mullbinden; Ermöglicht eine spontane Ablösung während der Epithelialisierung, um eine Störung des regenerierenden Gewebes zu verhindern.
4. Vereinbaren Sie Nachsorgetermine 1, 2, 4 und 12 Wochen nach dem Eingriff.
5. Erwache bei jedem Besuch standardisierte digitale Fotos mit einer festen Kamera im Wundabstand, mit konstanten Lichtverhältnissen und einer Maßstabsreferenz (z. B. sterilem Lineal), die in derselben Ebene wie die Wunde platziert ist. Dies gewährleistet Konsistenz bei der Längsbegutachtung.
6. Missen Sie die Wundfläche mit der ImageJ-Software (National Institutes of Health (NIH), USA) mittels planimetrischer Analyse.
   1. Importiere standardisierte Wundfotos in ImageJ
   2. Kalibrieren Sie die Bildskala mit dem Referenzlineal
   3. Zeichnen Sie den Wundrand manuell mit dem Polygon-Auswahlwerkzeug nach.
   4. Berechnen Sie die Wundfläche automatisch mit der Messfunktion der Software.
7. Für die Ergebnisbeurteilung definieren Sie vollständige Epithelialisierung als vollständige Abdeckung der Wundoberfläche ohne Exsudat, Verbandsbedarf oder Notwendigkeit einer sekundären Intervention.
8. Erfassen Sie alle postoperativen Komplikationen, einschließlich Infektion, Fettnekrose, Hämatom, Serom oder verzögerter Wundheilung.
   VORSICHT: Entsorgen Sie alle biologischen Abfälle gemäß institutionellen Biosicherheitsvorschriften.

Results

Insgesamt wurden acht Patienten mit kariesartigen traumatischen Weichteildefekten nach dem beschriebenen Protokoll behandelt.

Kohortenmerkmale

Die Kohorte umfasste fünf Männer und drei Frauen mit einem Durchschnittsalter von 51,5 ± 11,7 Jahren (Spanne 38–74 Jahre). Defekte wurden am unteren Gliedmaß (n = 5), oberer Gli...

Discussion

Diese Studie beschreibt ein klinisch anwendbares und reproduzierbares Protokoll für die mechanische Verarbeitung und Transplantation von SVF-angereicherten Mikrofetten zur Behandlung traumatischer Weichteildefekte. Das Protokoll ist für die Point-of-Care-Implementierung in einem standardisierten Operationssaal gedacht und priorisiert die Einfachheit des Verfahrens, die Sicherheit und die Machbarkeit gegenüber biologischer Charakterisierung. In dieser kleinen klinischen Serie zeigten alle...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0,9 % Kochsalzlösung	Baxter Healthcare (oder gleichwertig)	Verschiedene	Verwendet als Basislösung für tumeszente Lösungen
Kanüle mit stumpfer Spitze (22G & mal; 50 mm)	CONPUVON (;), China	DZ 22× 50-C5	Verwendet für mehrschichtige Injektion von SVF-angereichertem Mikrofett
Zentrifuge	Langjährige Biotechnologie (), China	LTA-1600	Klinische Zentrifuge, die etwa 400 &-fach erzeugen kann; g
Digitalkamera / Smartphone	Irgendeine	N/A	Standardisierte Wundfotografie während der Nachbeobachtung
Epinephrin	Örtliche Krankenhausapotheke	Verschiedene	Kochsalzlösung hinzugefügt, um eine Endkonzentration von 1:500.000 zu erreichen
ImageJ-Software (Version 1.53 oder neuer)	National Institutes of Health (USA)	Freie Software	Verwendung zur Messung der planimetrischen Wundfläche
Fettabsaugungskanüle (2– 3 mm)	Standard-Medizinlieferant	N/A	Verwendet zur Entnahme von Fettgewebe aus der Spenderstelle
Luer-Lock-Steckverbinder (weiblich zu weiblich)	Becton Dickinson (oder gleichwertig)	Verschiedene	Verwendung für mechanische Emulgierung von Spritze zu Spritze
Luer-Lock-Spritze (1, 5, 10, 20 mL)	Hongda Medical Devices (), China	Nicht spezifiziert (institutionelles Angebot)	Verwendet für Aspiration, mechanische Verarbeitung und Einspritzung
Sterile Verband / Verband	Krankenhausapotheke	N/A	Zur postoperativen Wundversorgung
Chirurgische Schere (steril)	Guangzhou Baitang Medical Devices Co., Ltd.	BT00301 (oder ähnliches repräsentatives Modell)	Verwendet zur mechanischen Fragmentierung von Fettgewebe
Vaseline-Gaze (10 cm & mal 10 cm)	Huaxi Medical Dressing Co., Ltd. (), China	Nicht spezifiziert (institutionelles Angebot)	Nicht haftender Verband für die postoperative Wundversorgung