Multimodale Diagnose und Behandlung der Gastrischen Tuberkulose: Ein Fallbericht

Zusammenfassung

Dieser Fallbericht präsentiert einen schrittweise multimodalen Workflow zur Diagnose von Magentuberkulose, indem er Gastroskopie, Querschnittsbildgebung, endoskopischen Ultraschall, Histopathologie und molekulare Tests integriert, um die Infektion zu bestätigen, wenn oberflächliche Biopsien nicht diagnostisch sind.

Zusammenfassung

Gastrische Tuberkulose ist eine außergewöhnlich seltene Form der extrapulmonalen Tuberkulose und zeigt sich häufig mit unspezifischen Symptomen und endoskopischen Erscheinungen, wobei sie häufig submukosale Tumoren, Magengeschwürerkrankungen oder eine bösartige Erkrankung nachahmt. Diese Überschneidungen, zusammen mit der begrenzten Ausbeute oberflächlicher Biopsien, können die endgültige Diagnose verzögern. Hier berichten Forscher über einen Fall von Magentuberkulose und betonen den methodischen Vorteil einer multimodalen Diagnostikstrategie, die Endoskopie, Querschnittsbildgebung, Histopathologie und molekulare Tests integriert, um die diagnostische Unsicherheit zunehmend zu verringern. Die Gastroskopie zeigte eine lokalisierte Magenläsion, während die bildgebende Bildgebende eine komplementäre Läsionscharakterisierung lieferte und auf eine mögliche extragastrische Beteiligung hindeutete, was eine weitere Untersuchung auf granulomatöse Infektion veranlasste. Wiederholte endoskopische Probenahmen stellten keine Diagnose dar, weshalb eine laparoskopische partielle Gastrektomie durchgeführt wurde, um ein ausreichendes Tiefengewebe für eine umfassende Untersuchung zu erhalten. Die histopathologische Untersuchung zeigte eine granulomatöse Entzündung mit caseöser Nekrose, und molekulare Tests unterstützten eine Infektion mit dem Mycobacterium tuberculosis-Komplex , was die Magentuberkulose bestätigte. Der postoperative Verlauf verlief ereignislos, und der Patient erhielt anschließend die Standard-Antituberkulose Therapie. Die Symptome verschwanden, und es wurde kein Rückfall während der Langzeitkontrolle festgestellt. Dieser Fall hebt praktische diagnostische Herausforderungen hervor und bietet einen reproduzierbaren, schrittweisen Ansatz, der Klinikern helfen kann, Magentuberkulose früher in ähnlichen Präsentationen zu vermuten, zu differenzieren und zu bestätigen.

Einleitung

Magen-Tuberkulose ist eine außergewöhnlich seltene Manifestation einer Mycobacterium tuberculosis-Infektion im menschlichen Körper¹. Die Häufigkeit ist extrem niedrig, und selbst in Regionen mit hoher Tuberkuloselast wird die Magenbeteiligung typischerweise als weniger als 1 % der gastrointestinalen Tuberkulosefälle angegeben². Diese geringe Inzidenz wird mehreren lokalen Schutzfaktoren zugeschrieben, darunter die bakterizide Wirkung der Magensäure, die Integrität der Magenschleimhautsperre und die schnelle Magenentleerung, die zusammen den anhaltenden bakteriellen Kontakt mit der Magenwand^reduzieren.

Die klinischen Manifestationen der Magentuberkulose sind heterogen und weisen keine pathognomonen Merkmale auf, wobei Symptome und Anzeichen je nach Läsionsorte, Ausmaß der Beteiligung und Krankheitsverlauf variieren⁴. Patienten können mit Schmerzen oder Unbehagen im oberen Bauch, Übelkeit, Erbrechen, Anorexie und Gewichtsverlust^auftreten. Wenn Magenbeteiligung gleichzeitig mit außermagenhaltiger Tuberkulose auftritt, können auch konstitutionelle Symptome wie leichtes Fieber, Nachtschweiß und Müdigkeit^auftreten. Diese Manifestationen sind jedoch nicht spezifisch, und der klinische Verdacht wird oft verzögert, da die Erkrankung häufigen Magenerkrankungen ähneln kann, darunter Magengeschwürerkrankung, Magenkarzinom, Lymphom und submukosale Tumore⁷.

Eine große diagnostische Hürde, die in der breiteren Literatur beschrieben wird, ist, dass eine routinemäßige endoskopische Zangbiopsie häufig nicht diagnostisch ist, insbesondere wenn Läsionen überwiegend submukosal sind oder wenn granulomamatöse Veränderungen lückenhaft sind, was zu einem Stichprobenfehler⁸ führt. Um dies zu überwinden, bietet die hier vorgestellte multimodale Diagnostikstrategie erhebliche Vorteile gegenüber herkömmlichen endoskopischen Bewertungen mit einer einzelnen Modalität. Durch die Integration von Querschnittsbildbildung, Tiefengewebeaufnahme und molekularen Tests (PCR) erhöht dieser umfassende Ansatz die diagnostische Sicherheit erheblich und minimiert Verzögerungen bei herkömmlichen säurefesten Färbungen von minus⁹.

Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist es, einen reproduzierbaren, schrittweise diagnostischen Workflow für den Verdacht auf Magentuberkulose zu formalisieren. Die Begründung für die Darstellung dieses speziellen Falls besteht darin, zu zeigen, wie Kliniker systematisch mit der diagnostischen Unsicherheit umgehen können, wenn erste oberflächliche Biopsien fehlschlagen und die Läsion stark einen submukosalen Tumor nachahmt.

Dieser repräsentative Fall ist sehr geeignet für Kliniker und Endoskopisten, die praktische Ratschläge zum Umgang mit atypischen, refraktären Magenläsionen suchen, die mit unerklärlichen systemischen Befunden wie Lymphadenopathie¹⁰ koexistieren. Durch die Einhaltung dieses multimodalen Protokolls können Praktiker die frühe Erkennung verbessern, unnötige radikale Resektionen vermeiden und gezielte Anti-Tuberkulose-Therapie effizienter in klinischen Einrichtungen einleiten¹¹.

Fallpräsentation:
Eine 70-jährige Frau hatte eine einmonatige Vorgeschichte von Bauchschmerzen ohne typische konstitutionelle Symptome der Tuberkulose. Die körperliche Untersuchung und Laboruntersuchungen waren unspektakulär, aber die Gastroskopie zeigte eine unbestimmte subepitheliale Läsion im Magenfundus.

Diagnose, Beurteilung und Plan:
Angesichts des nicht-diagnostischen Ertrags oberflächlicher endoskopischer Biopsien wurden Querschnittsbildgebung und endoskopischer Ultraschall durchgeführt, die gleichzeitig eine systemische Lymphadenopathie und eine Masse aus muscularis propria aufzeigten. Um eine endgültige Diagnose zu stellen, wurde eine laparoskopische partielle Gastrektomie zur vollständigen Gewebeaufnahme durchgeführt. Die Histopathologie zeigte eine granulomatöse Entzündung mit kasöser Nekrose, und die anschließende Kettenreaktion (PCR) bestätigte das Vorhandensein des Mycobacterium tuberculosis-Komplexes. Der Patient wurde erfolgreich mit einer Standard-Erstlinien-Antituberkulose-Therapie behandelt, was zu einer vollständigen Symptombeseitigung ohne Komplikationen führte.

Protokoll

Dieses Protokoll wurde in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Institutional Human Research Ethics Committee des Dongguan People's Hospital unter der Genehmigungsnummer LW 2026-001 durchgeführt. Vor allen diagnostischen, therapeutischen und nachfolgenden Verfahren wurde eine schriftliche informierte Zustimmung vom Patienten eingeholt.

1. Anspruchsberechtigung des Patienten und Erstbeurteilung

1. Medizinische Vorgeschichte
   1. Die Hauptbeschwerde wurde erfasst und Symptome, Dauer, Ort, Charakter, erschwerende Faktoren (z. B. postprandial oder nachtaktiv) sowie Linderungsfaktoren dokumentiert.
   2. Aufgezeichnete assoziierte Symptome (z. B. Rülpsen, Übelkeit, Erbrechen, Reflux, Blähungen, Durchfall, Schüttelfrost, Fieber, Hämatochetzezie/Melena) und festgestellte Alarmmerkmale (z. B. unbeabsichtigter Gewichtsverlust, anhaltendes Fieber).
   3. Dokumentierte Krankengeschichte und aktuelle Medikamente (z. B. Bluthochdruck und Typ-2-Diabetes mellitus; blutdrucksenkende und glukosesenkende Therapie).
   4. Screening auf tuberkulosebedingte Risikofaktoren (Expositionsgeschichte, frühere Tuberkulose, Immunsuppression) und malignitätsbedingte Vorgeschichte.
2. Körperliche Untersuchung
   1. Beurteilte den allgemeinen Status und die Vitalwerte (Blutdruck, Herzfrequenz, Temperatur, Atemfrequenz), um die klinische Stabilität zu bestätigen.
   2. Ich habe die Haut und die Sklera auf Gelbsucht untersucht.
   3. Palpierte oberflächliche Lymphknotenregionen (Zervikal, Supraklavikulär, Axillare) manuell mit den Kuppen von Zeige- und Mittelfinger, um Vergrößerung, Druckempfindlichkeit oder Fixierung zu beurteilen.
   4. Untersuchte den Bauch systematisch mittels visueller Inspektion, Auskultation von Darmgeräuschen sowie leichter und tiefer manueller Palpation, um auf Dehnung, Empfindlichkeit (einschließlich Rebound/Guarding), tastbare Massen und Murphy-Gebärden zu erkennen.
   5. Gelenke und untere Gliedmaßen wurden auf Auffälligkeiten untersucht (z. B. Ödem, Erythem, Deformität).
3. Erste Laboruntersuchungen
   1. Vollständiges Blutbild (CBC) wurde mit Standardlaborausrüstung durchgeführt (siehe Materialtabelle).
   2. Leber- und Nierenfunktionstests wurden durchgeführt [Alanin-Aminotransferase (ALT), Aspartat-Aminotransferase (AST), Bilirubin, Kreatinin, Harnstoff].
   3. Serumelektrolyte wurden gewonnen [Natrium (Na⁺), Kalium (K⁺), Chlorid (Cl⁻)].
   4. Gerinnungstests [Prothrombinzeit (PT), aktivierte partielle Thromboplastinzeit (APTT)] und kardiales Troponin, wenn es klinisch induziert war.
   5. Serumtumormarker [z. B. karzinoembryonales Antigen (CEA), Kohlenhydratantigen 19–9 (CA19–9), Alpha-Fetoprotein) (AFP)] wurden zur Unterstützung der Differenzialdiagnose gewonnen.
   6. Er hat einen Stuhl-Okkult-Bluttest durchgeführt.
   7. Untersuchte Helicobacter pylori mit einer institutionellen Methode (Serologie, Harnstoff-Atemtest oder Stuhlantigen).
      HINWEIS: Die verwendete Methode und ihre Interpretationsschwelle wurden notiert.

2. Diagnostischer Arbeitsablauf für gastrointestinale und systemische Läsionen

1. Gastroskopie und erste Probenahme
   1. Diagnostische Gastroskopie wurde durchgeführt, um Speiseröhre, Magen (einschließlich Fundus in retroflexer Ansicht) und Duodenum zu untersuchen.
   2. Dokumentierte Läsionen, Größe, makroskopisches Erscheinungsbild und vermutete Ursprungsschicht sowie archivierte repräsentative Bilder.
   3. Das Duodenalgeschwür wurde mit einem standardisierten endoskopischen Stadiensystem (z. B. aktives Stadium mit Exsudat) und archivierten Bildern klassifiziert.
   4. Er wurde Zangbiopsien von der Läsionsoberfläche und der angrenzenden Schleimhaut (≥6 Fragmente, wenn technisch möglich) mit endoskopischer Zange gewonnen (siehe Materialtabelle) und Proben in 10 % neutralem Formalin platziert (siehe Materialtabelle).
   5. Markierte Proben mit Patientenkennzeichen und Probenahmestellen wurden innerhalb von 1 Stunde nach der Entnahme an die Pathologie geliefert.
   6. Säuresuppressionstherapie für das aktive Geschwür wurde eingeleitet und die Symptomantwort während der Nachbeobachtung neu bewertet.
2. Querschnittsbildgebung
   1. Durchgeführte Nichtkontrast-Thorax-Computertomographie (CT) unter Verwendung eines Standardprotokolls für Erwachsene (z. B. 120 kVp; automatische Röhrenstrommodulation; Tonhöhe 0,9–1,2).
   2. Rekonstruierte Bilder mit 1,0 mm Schnittdicke mit multiplanaren Reformatierungen und überprüften sie mit Lungen- und Mediastinalfenstern.
   3. Nachweiste Pulmonalknoten (Lage, maximaler Durchmesser, Dichte) und mediastinale/hilare Lymphadenopathie (Stationen, Kurzachsendurchmesser).
   4. Im Vergleich zu früheren Bildgeben, wenn sie verfügbar sind, um Intervalländerungen zu beurteilen.
3. Kontrastverstärkte CT des oberen Bauches
   1. Kontrastverstärkte CT des oberen Bauches wurde durchgeführt, sofern es nicht kontraindiziert war.
   2. Jodiertes Kontrastmittel (siehe Materialtabelle) bei 1,5 mL/kg (maximal 120 mL) über einen Leistungsinjektor bei 3,0 mL/s verabreicht, gefolgt von einer 30–40 mL Kochsalzlösung (siehe Materialtabelle).
   3. Arterielle Phase bei 25–30 Sekunden und nach 60–70 Sekunden Portalvenenphase erworben und mit einer Schnittdicke von 1,0–1,25 mm rekonstruiert.
   4. Dokumentierte Verdickung/Verstärkung der gastrointestinalen Wand (Duodenalbulb, Kardie, Magenantrum) und kartierte abdominale Lymphadenopathie (perikardial, hepatogastrisch, retroperitoneal) nach Lage und Größe.
4. Endoskopischer Ultraschall (EUS) und Probenahme
   1. EUS mit einem linearen Array-Echoendoskop durchgeführt (typischer Frequenzbereich 5–12 MHz; siehe Materialtabelle).
   2. Lokalisierte die Läsion und bestimmte die Ursprungsschicht (z. B. muscularis propria) sowie die Läsiongröße (z. B. 12,4 mm × 5,3 mm), Echogenität, Homogenität und hintere akustische Merkmale mit Bildarchivierung.
   3. Führte EUS-gesteuerte Feinnadelaspiration/Biopsie durch, um die Gewebeausbeute bei submukosalen Läsionen zu verbessern.
   4. Verwendete eine 22-Gauge-Nadel (siehe Materialtabelle) und führte 3 Durchgänge durch (2 Durchgänge mit Saugung mit einer 10-ml-Spritze; 1 Durchgang ohne Absaugung), mit 10–15 Hin- und Rückbewegungen pro Durchgang unter kontinuierlicher Ultraschall-Visualisierung.
   5. Von jedem Durchgang wurden direkte Verschmierungen vorbereitet; Ein Objektträger wurde sofort in 95 % Ethanol für die Zytologie fixiert und ein Objektträger luftgetrocknet, um einen Objektträger schnell zu verfärben, falls vorhanden.
   6. Restmaterial wurde in 10 % neutrales Formalin gelegt, um einen Zellblock für die Histologie zu schaffen, und ein separater Teil in ein steriles Rohr für molekulare Tests gelegt.
   7. Mindestens 2 Stunden nach dem Eingriff wird auf unmittelbare Komplikationen (Schmerzen, Blutungen, Perforation) überwacht und Vitalzeichen sowie Symptomstatus dokumentiert.
      HINWEIS: Wenn der dargestellte Fall keine Feinnadelaspiration (FNA)/Feinnadelbiopsie (FNB) umfasst, ersetzen Sie die Schritte 2.4.3–2.4.7 durch die exakt verwendete Probenahmemethode und nennen Sie die Einschränkung explizit.

3. Chirurgische Eingriffe und bestätigende Labortests

1. Laparoskopische partielle Gastrektomie
   1. Bestätigte das Fehlen chirurgischer Gegenanzeigen (z. B. unkontrollierte Koagulopathie, instabile kardiopulmonale Erkrankung) und überprüfte präoperative Laborergebnisse.
   2. Induzierte Vollnarkose und etablierte Pneumoperitoneum bei 12–14 mmHg.
   3. Standard-Laparoskop-Anschlüsse (z. B. 10-mm-Nabelkamera-Port plus 2–3 Arbeitsanschlüsse; siehe Materialtabelle) eingesetzt und systematische Erkundung durchgeführt.
   4. Die Läsion wurde anhand präoperativer endoskopischer und bildgebender Informationen lokalisiert (z. B. Fundus in der Nähe der Kardie/größere Krümmung).
   5. Es wurde eine Keil-/partielle Gastrektomie durchgeführt, um die Läsion mit einem Bruttorand von ≥1 cm zu entfernen, wenn anatomisch möglich, und erreichte eine Hämostase sowie einen sicheren Verschluss gemäß der institutionellen Praxis.
   6. Die Probe wurde sofort an die Pathologie übergeben, die Zeit bis zur Fixierung erfasst und die Probe (proximal/distal oder anterior/posterior) für eine grobe Begutachtung ausgerichtet.
2. Histopathologie
   1. Fixiertes Gewebe in 10 % neutralem Formalin für 24–48 Stunden bei Raumtemperatur.
   2. Es wurden repräsentative Bereiche (Läsionszentrum, Grenzfläche mit benachbartem Gewebe und grob nekrotische Bereiche, falls vorhanden), zur Paraffineinbettung verarbeitet und Schnitte mit einer Dicke von 3–4 μm geschnitten.
   3. Hämatoxylin- und Eosin-(H&E)-Färbungen wurden durchgeführt und auf granulomatöse Entzündung und Nekrose (einschließlich caseöser Nekrose) untersucht.
   4. Spezielle Färbungen wurden durchgeführt: periodische Säure-Schiff-Färbung (PAS) und periodische Säure-Silber-Methenamin-Färbung (PASM) für Pilzelemente sowie Ziehl–Neelsen- oder Auramin-Rhodamin-Färbung für säurefeste Bazillen.
      HINWEIS: Eine negative säurefeste Bazillenfarbe (AFB) schloss Tuberkulose nicht aus; Die Interpretation wurde mit molekularen Tests und klinischen/bildgebenden Befunden integriert.
3. Molekulare Tests [Gewebepolymerase-Kettenreaktion (PCR)]
   1. Gewebe wurde für molekulare Tests mit sauberen Instrumenten ausgewählt, um Kreuzkontamination zu vermeiden, und separate Arbeitsbereiche für Vor- und Nachamplifikationsschritte verwendet.
   2. DNA wird aus frischem Gewebe (bevorzugt) oder formalinfixiertem, paraffin-eingebettetem (FFPE) Gewebe mit einem validierten Extraktionskit extrahiert. Für FFPE-Gewebe werden deparaffinisierte Schnitte mit Xylen (2 × 10 Min) gefolgt, gefolgt von gradierten Ethanolwäschen (100 %, 95 %, 70 %) (siehe Materialtabelle für Reagenzien) und vor der Lyse an der Luft getrocknet.
   3. Durchgeführte Echtzeit-PCR zur Zielsetzung des M. tuberculosis-Komplexes (z. B. IS6110 oder ein anderes validiertes Ziel).
   4. Verwendete folgende Zyklusbedingungen als Standard-Echtzeit-PCR-Profil: erste Denaturierung bei 95 °C für 5 Minuten; 40 Zyklen mit 95 °C für 15 Sekunden und 60 °C für 60 Sekunden.
   5. Interpretierte Ergebnisse mit Laborschwellenwerten [z. B. Zyklusschwelle (Ct) ≤ 38 als positiv, Ct 38–40 als unbestimmt und erfordert wiederholte Tests und keine Verstärkung als negativ] und bestätigte unbestimmte Ergebnisse durch wiederholte Extraktion und wiederholte PCR.
      HINWEIS: Ersetzen Sie Zielgen(n) und CT-Schwellenwerte durch die vom Labor verwendeten, falls sie unterschiedlich sind.
4. Interferon-Gamma-Freisetzungstest (IGRA)
   1. Vollblut-IGRA wurde durchgeführt, um die Tuberkulose-Infektionsbeurteilung zu unterstützen.
   2. Es wurde 1 ml Blut in jedes Assay-Rohr aufgenommen [Null-Kontrolle, Tuberkulose-Bazillus (TB)-Antigenröhren, Mitogenenkontrolle] und unmittelbar nach der Entnahme 10-mal durch Invertieren gemischt.
   3. Inkubierte Röhrchen bei 37 °C für 16–24 Stunden, zentrifugierte bei 2.000–3.000 × g für 15 Minuten und entnommen Plasma für die enzymgebundene Immunsorbent-Assay-Messung (ELISA) der Interferon-Gamma-Messung.
   4. IGRA wurde als positiv interpretiert, wenn (TB-Antigen − null) ≥0,35 IU/mL und ≥25 % von null, mit einer angemessenen Mitogenantrat gemäß den Assay-Kriterien.
      HINWEIS: Falls in diesem Fall keine IGRA durchgeführt wurde, geben Sie dies ausdrücklich an und geben Sie den Grund an.
5. Diagnostische Integration
   1. Die Diagnose wurde durch die Integration (i) granulomatoser Entzündung mit caseöser Nekrose in der Histopathologie, (ii) molekularer Hinweis auf den M. tuberculosis-Komplex im PCR und (iii) unterstützende klinische/bildgebende Ergebnisse festgestellt.
   2. Aufgezeichnete alternative Diagnosen wurden berücksichtigt (z. B. Malignität, Lymphom, Pilzinfektion) und die negativen Befunde, die den Ausschluss unterstützen.

4. Therapeutisches Management und Nachsorge-Anti-Tuberkulose-Therapie

1. Konsultierte Infektionskrankheitsspezialisten, um das Regime nach diagnostischer Bestätigung zu bestätigen.
2. Verabreichung einer standardisierten Erstlinien-Anti-Tuberkulose-Therapie (Rifampicin, Isoniazid, Pyrazinamid, Ethambutol) gemäß institutionellen/nationalen Richtlinien.
3. Angepasste Dosen basierend auf Körpergewicht und Leber-/Nierenfunktion sowie dokumentierte Ausgangswerte und Nachuntersuchungslaborwerte.
4. Es wurde auf unerwünschte Ereignisse (gastrointestinale Unverträglichkeit, Hepatotoxizität, Hautausschlag, visuelle Symptome) überwacht und nach institutioneller Praxis behandelt.
5. Geplante Nachsorge 2 Wochen nach der Entlassung und dann alle 4 Wochen während der frühen Behandlung, mit anschließenden Intervallen, die je nach klinischer Reaktion individuell angepasst werden.
6. Bei jedem Besuch wurden CBC- und Leberfunktionstests durchgeführt.
7. Symptomauflösung wurde bewertet und auf Rückfall auf Basis klinischer Untersuchung und wiederholter Bildgebung/Endoskopie untersucht, wenn klinisch angezeigt.

Ergebnisse

Erste Bewertungsergebnisse
Eine 70-jährige Frau hatte einen Monat lang Bauchschmerzen. Sie berichtete von keiner bekannten Tuberkulose-Exposition und bestritt konstitutionelle oder Alarmsymptome wie Übelkeit, Erbrechen, Fieber und erheblichen Gewichtsverlust. Ihre Krankengeschichte umfasste gut kontrollierte Bluthochdruck und Typ-2-Diabetes mellitus, behandelt mit chronischen oralen Medikamenten. Bei der körperlichen Untersuchung war sie wach und hämodynamisch stabil. Es wurden weder Gelbsucht noch ta...

Diskussion

Gastrische Tuberkulose ist eine seltene Manifestation der gastrointestinalen Tuberkulose und kann durch hämatogene oder lymphatische Verbreitung, direkte Ausdehnung von benachbarten Läsionen oder Einnistung in einem Umfeld einer geschädigten Schleimhautabwehr entstehen. Da die Symptome unspezifisch sind und endoskopische Erscheinungen oft mit Magengeschwürerkrankungen, Malignität, Lymphom und subepithelialen Tumoren überlappen, verzögert sich die Diagnose häufig und erfordert möglicherwe...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Säurefestes Beizset (Ziehl– Neelsen)	BD Difco	215073	Für AFB-Färbungen; Auramin-Färbung akzeptable Alternative
Zentrifuge (2.000 & Dash; 3.000 & mal; g)	Eppendorf	5810 R	Plasmatrennung für IGRA
Deckzettel	Citotest	10212424C	Zur Mikroskopievorbereitung
CT-Scanner (Multi-Detektor)	Siemens Healthineers	SOMATOM-Definition AS+	Jeder ≥ 64-Schnitt-CT akzeptabel; kVp, Schnittdicke, Phasen aufzeichnen
Einweg-Biopsie-Zange	Boston Scientific	1395 (Radialer Kinn 4)	Für mukosale/Oberflächenbiopsien; jede sterile Einweg-Pinzette ist akzeptabel
DNA-Extraktionskit (FFPE)	QIAGEN	56404 (QIAamp DNA FFPE Tissue Kit)	Wenn FFPE-Sektionen für PCR verwendet werden
DNA-Extraktionskit (Gewebe)	QIAGEN	69504 (DNeasy Blood & Gewebe-Kit)	Zur Extraktion von frischem Gewebe-DNA
ELISA-Kennzeichenleser	BioTek (Agilent)	Synergie H1	Für die IGRA-ELISA-Auslesung (wenn ein Kit einen Leser benötigt)
EUS-Ultraschallprozessor	Olympus	EU-ME2	Jeder gleichwertige EUS-Prozessor ist akzeptabel
EUS-FNA/FNB-Nadel, 22G	Cook Medical	EchoTip Ultra (22G)	Wenn dein Fall FNA/FNB verwendet hat; Record-Gauge und Anzahl der Durchgänge
Gastroskop	Olympus	GIF-HQ190	Standard-Diagnostik-Gastroskop; gleichwertige Modelle sind akzeptabel
Grocott' s Methenamin-Silber (GMS/PASM) Kit	Abcam	ab150680	Für das Pilzscreening (PASM/GMS)
H& E-Färbungsset oder Reagenzien	Sigma-Aldrich (Merck)	HT110116	Hämatoxylin- und Eosin-Färbung
IGRA-Testkit	Qiagen	QuantiFERON-TB Gold Plus	Vollblut-IGRA; Kriterien für die Interpretation der Unterlagen
Bildanalyse-/Beschriftungssoftware	NIH	ImageJ/Fiji	Zum Hinzufügen von Skalenleisten/Anmerkungen zu histologischen Bildern
Insufflator	Karl Storz	ENDOMAT	Aufrechterhaltung des Pneumoperitoneums; Verwendung des verwendeten Drucks aufzeichnen
Laparoskop	Karl Storz	26003BA	10 mm Laparoskop; äquivalent akzeptabel
Laparoskopischer Probenentnahmebeutel	Angewandte Medizin	Endo Catch II	Zur sicheren Extraktion der Probe
Laparoskopischer Tacker (Keil-/partielle Gastrektomie)	Medtronic	Endo-GIA	Verwenden Sie institutionellen Tacker; Notieren Sie den Patronentyp, wenn relevant,
Laparoskopischer Turm (Kamera + Lichtquelle)	Karl Storz	IMAGE1 S	Jedes äquivalente laparoskopische Bildgebungssystem ist akzeptabel
Lineares EUS-Echoendoskop	Olympus	GF-UCT180	Lineares EUS empfohlen für Stichproben; äquivalent akzeptabel
Objektträger mit dem Mikroskop	Citotest	188105	Für zytologische Abstriche
Mikrotome	Leica Biosystems	RM2235	Für 3– 4 μ m-Sektion
Montagemedium	Sigma-Aldrich (Merck)	6522	Coverslipping
MTB-komplexes PCR-Kit (validiert)	Sansure Biotech	MTB DNA-Diagnosekit	Verwenden Sie die validierten MTB-Komplex-PCR Ihrer Institution; Erfassungsziel und CT-Schwellenwert
Nichtionisches jodiertes Kontrastmittel (für CT)	GE Healthcare	Omnipaque 350	Verwenden Sie institutionelle Standardkontrastmittel; Erfassen Sie Konzentration und Dosis
Paraffin-Einbettungssystem	Leica Biosystems	HistoCore Arcadia	Jedes äquivalente Einbettungssystem ist akzeptabel
PAS-Färbeset	Sigma-Aldrich (Merck)	395B	Für die Pilzuntersuchung
PCR-Clean-Workflow-Materialien (Filtertipps)	Thermo Fisher Scientific	2069G	Verwenden Sie aerosolresistente Spitzen, um die Verunreinigung zu reduzieren
Injektor für Kontrast	Bayer	MEDRAD Stellant	Jeder akzeptable Injektor; Registrieren Sie die Injektionsrate und Kochsalzlösungsspülung
Echtzeit-PCR-Instrument	Roche	LightCycler 480 II	Jedes validierte Echtzeit-PCR-System ist akzeptabel
Probenbehälter (undicht)	Thermo Fisher Scientific	02-544-208	Für den formalinfixierten Gewebetransport
Statistik-/Figurensoftware	GraphPad-Software	Prisma	Wenn zum Plotten verwendet; optional
Spritze (10 ml)	BD	309604	Zur Saugung während der FNA bei Verwendung
Video-Gastroskop-System (diagnostische obere GI-Endoskopie)	Olympus	CV-190 (Prozessor), CLV-190 (Lichtquelle)	Jede gleichwertige Endoskopieplattform ist akzeptabel; verwendetes Aufzeichnungsmodell
10 % neutrales gepuffertes Formalin	Sigma-Aldrich (Merck)	HT501128	Fixierung von Biopsie- und Resektionsproben
37 & Grad; C-Inkubator	Thermo Fisher Scientific	Heratherm	Für die IGRA-Inkubation
95 % Ethanol	Sigma-Aldrich (Merck)	459844	Sofortige Fixierung zytologischer Objektträger