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Methodenartikel

Entwicklung eines Schweres Lungenverletzungsmodells bei einer Ziege zur ultraschallgeographischen Untersuchung

65 Ansichten

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DOI:

10.3791/70656

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29. Mai 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Trauma Medical Center, Daping Hospital, 2No. 951 Hospital of PLA

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Diese Studie etablierte erfolgreich ein Modell für schwere Blastlungenverletzungen bei Ziegen mit einem Antriebsdruck von 4,5 MPa, was zu erheblichen Verletzungen und einer Sterblichkeit von 41,67 % führte. Die Lungenultraschallwertung bewertete dynamisch den Schaden, korrelierte mit traditionellen Indikatoren und zeigte seinen diagnostischen Wert. Dieses reproduzierbare Modell fördert Diagnostik und Therapien für akute Lungenschäden.

Zusammenfassung

Die Blastlungenverletzung (BLI) verursacht schwere Lungenschäden und hohe Morbidität, insbesondere in militärischen und industriellen Umgebungen, was zu Blutungen und möglichem Atemversagen führt und die Notwendigkeit verbesserter Diagnostik und Behandlungen unterstreicht. Diese Studie zielte darauf ab, ein standardisiertes schwerwiegendes BLI-Modell bei Ziegen zu entwickeln, um die Genauigkeit und Machbarkeit von Point-of-Care-Ultraschalluntersuchungen für dynamische Beurteilungen zu bewerten. Ziegen wurden mit dem biologischen Stoßrohr (BST-I) kontrolliertem Explosionsüberdruck bei Antriebsdrücken von 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) bzw. 5,0 MPa (n = 4) ausgesetzt. Wichtige Parameter wie der maximale Überdruck wurden aufgezeichnet. Vitalzeichen, Lungenultraschallwerte (LUS), Sauerstoffindex (PaO₂/FiO₂) und extravaskuläres Lungenwasser (EVLW) wurden zu Beginn (0 Stunden vor der Verletzung) und 0,5 Stunden, 3 Stunden, 6 Stunden, 9 Stunden, 12 Stunden nach der Verletzung überwacht. Thorax-Computertomographie (CT) bei 0 und 12 Stunden quantifizierte das Lungenschadensverhältnis, und die Makrountersuchung nach der Euthanasie bewerteten die Lungenblutung und den Verletzungswert. Bei 4,5 MPa lag der maximale Überdruck bei 396,92 kPa, mit einer Sterblichkeitsrate von 41,67 % nach der Verletzung, während bei 4,0 MPa die Sterblichkeitsrate 0 % betrug. LUS stieg im Laufe der Zeit an und zeigte eine negative Korrelation mit PaO₂/FiO₂ sowie eine positive Korrelation mit EVLW nach 3, 6 und 9 Stunden sowie eine positive Korrelation mit der Lungenverletzungsrate nach 12 Stunden. Das Verhältnis der Flächenfläche der Bruttolungenverletzung betrug 42,14 % in der Gruppe mit 4,5 MPa, was auf schwere Verletzungen hindeutet, während 4,0 MPa eine moderate Verletzung zeigten. Das 4,5-MPa-Modell war geeignet, um schwere Verletzungen zu untersuchen, im Gegensatz zu 4,0 MPa, das nur mittlere Verletzungen verursachte, und 5,0 MPa führte zu einer 100%igen Sterblichkeit. Ein reproduzierbares Ziegenmodell der Blastlungenverletzung wurde entwickelt, das LUS effektiv nutzt, um Lungenschäden nicht-invasiv über die Zeit zu beurteilen und so eine Grundlage für die Überwachung und Erforschung therapeutischer Strategien für akute Lungenschäden bietet.

Einleitung

Explosionsexpositionen, egal ob im Militär oder im Zivilen, stellen weiterhin einen wesentlichen Beitrag zu Morbidität und Mortalität dar, wobei Lungenverletzungen ein Hauptfaktor für Ergebnis1 sind. Zeitgenössische Erkenntnisse bestätigen, dass eine Lungenprellung ein kritischer Risikofaktor für schwere Atemwegskomplikationen wie Lungenentzündung und akutes Atemnotsyndrom (ARDS) ist, die die Prognose der betroffenen Personen erheblich beeinflussen2. Eine schnelle und präzise Bewertung des Ausmaßes der Lungenverletzung ist daher unerlässlich, um das klinische Management zu steuern und das Überleben zu verbessern.

Die Computertomographie (CT) ist wirksam zur Beurteilung des Schweregrads der Blastlungenverletzung (BLI)3. Es beinhaltet jedoch eine Exposition gegenüber ionisierender Strahlung und kann in Szenarien mit Massenopfern oder begrenzten medizinischen Ressourcen unpraktisch sein. Die klinische Untersuchung der Perforation der Trommelhaut wurde als möglicher Marker für eine Lungenblasenverletzung untersucht, aber Studien zeigen, dass eine isolierte Perforation der Trommelhaut kein verlässlicher Indikator für eine verdeckte Lungenblasenverletzung oder eine schlechte Prognose ist und daher die Notwendigkeit einer weiteren Untersuchung nicht ausschließt4. Das klinische Auftreten von Explosionsopfern ist sehr variabel; einige Patienten treten akut vor, während andere 12–24 Stunden später eine Atemversagen entwickeln, was die entscheidende Bedeutung einer häufigen Nachuntersuchung in der Notaufnahme unterstreicht, um übersehene Verletzungen, insbesondere BLI5, zu erkennen. Diese Einschränkungen unterstreichen den dringenden Bedarf an einer schnellen, bettenkompatiblen Bildgebungstechnik, um die Schwere der Lungenprellungen schnell zu beurteilen. Bei Massenunfallereignissen sind Werkzeuge, die eine schnelle Triage und Bewertung ermöglichen, entscheidend für die Optimierung der Ressourcenverteilung und die Verbesserung der Gesamtergebnisse5.

Die thorakale Ultraschalluntersuchung hat sich als unverzichtbares Werkzeug in der Intensivstation etabliert, da sie in Echtzeit, nicht-invasiv und tragbarist. Seine etablierte Rolle bei der Diagnose verschiedener pleuraler und parenchymaler Lungenerkrankungen macht sie zu einer sehr vielversprechenden Methode für die dynamische Beurteilung von Blastlungenverletzungen. Sonographische Anzeichen wie Lungenkonsolidierung, Bronchogramme, Pleuralinienauffälligkeiten und Kometenschwanzartefakte können als Hinweise auf Ausmaß und Schwere von Lungenprellungen und Ödem7 dienen. Sein Mangel an ionisierender Strahlung macht es besonders geeignet für Patienten, die wiederholt untersucht werden müssen, und seine Zugänglichkeit in ressourcenarmen Umgebungen ist ein bedeutender Vorteil.

Während die vorhandene Literatur den Einsatz von Point-of-Care-Ultraschall (POCUS) zur Triage und Überwachung unterstützt, wird Ultraschall bereits routinemäßig in der Traumadiagnostik (z. B. erweiterte fokussierte Beurteilung mit Sonographie für Trauma, eFAST) zur Erkennung von Pneumothorax und Hämothorax8 eingesetzt. Dennoch erfordert eine rigorose Validierung ihrer Genauigkeit und Machbarkeit zur Bewertung schwerer Lungenprellungen ein translationales und physiologisch relevantes Tiermodell. Diese Forschung zielt darauf ab, ein standardisiertes Modell für schwere Lungenverletzungen bei Ziegen zu etablieren, das als Plattform dient, um systematisch den Nutzen des Point-of-Care-Ultraschalls bei der schnellen Triage und fortlaufenden Überwachung dieser lebensbedrohlichen Erkrankung zu bewerten.

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Protokoll

Alle in diesem Manuskript detaillierten experimentellen Methoden erhielten die Genehmigung des Ausschusses für Labortierschutz und -ethik der Dritten Militärmedizinischen Universität (SCXK (Yu) 2017-0002). Darüber hinaus wurden alle tierbezogenen Verfahren in strikter Übereinstimmung mit den vom Genehmigungsausschuss festgelegten Richtlinien zur Tiernutzung durchgeführt.

1. Versuchstiere

  1. Bereite gesunde Ziegen vor, 3–6 Monate alt, weiblich, mit einem Gewicht von etwa 15 kg.

2. Verletzungsplattform

  1. Verursachen Lungenexplosionsverletzungen durch das biologische Schockrohr (das große) (BST-I), das 39,4 m lang ist (Abbildung 1), das durch zwei halbstarre Aluminiumschichten in zwei Abschnitte geteilt ist – den Antriebsteil und den experimentellen Abschnitt, wobei jeweils 4,0 MPa, 4,5 MPa und 5,0 MPa Fahrdruck verwendet werden.

3. Tiervorbereitung

  1. Faste die Tiere 24 Stunden lang und entziehe ihnen vor dem Experiment 8 Stunden Wasser.
  2. Wiegen und aufzeichnen.
  3. Verwenden Sie Midazolam zur Einleitung der Anästhesie (intramuskuläre Injektion: 1 mg/kg).
  4. Rasieren Sie das Fell an Brust, Hals und Schritt der Ziege ab und tragen Sie dann die Enthaarungscreme auf, um das restliche Fell vollständig zu entfernen.

4. Zeichnen von Trennwänden für die Ultraschallerkennung

  1. Betäuben Sie die Ziege mit 3 % Pentobarbitalnatrium (10–20 mg/kg) über eine bewohnende Nadel in der Vene saphenus. Halten Sie ihn in entspannter seitlicher Position, mit Gliedmaßen senkrecht zum Oberkörper und ausgestrecktem Kopf.
  2. Bewegen Sie die Ultraschallsonde parallel zum Interkostalraum von unten nach oben, vom Dorsalbereich nach vorne, um die Ränder der Lunge zu markieren.
  3. Zeichnen Sie aufeinanderfolgende 2,5 Zentimeter lange Rechtecke entlang des Interkostalraums im Bereich der Lunge als Trennwände für die Ultraschalluntersuchung. Insgesamt gibt es 66 Partitionen, davon 33 rechts und 33 links, und die Anzahl der Partitionen in jedem Interkostalraum beträgt 1, 2, 2, 5, 5, 5, 5, 5, 4, 3, 1, vom ersten bis zum zehnten Zwischenraum (Abbildung 2).

5. Chirurgischer Eingriff

  1. Stellen Sie sicher, dass die Ziege unter Narkose ist. Falls nicht, spritzen Sie zusätzlich 3 % Pentobarbitalnatrium von 10 mg/kg.
  2. Katheterisation der Halsvenen
    1. Positioniere die Ziege in rechte seitliche Liegeposition und halte sie richtig fest.
    2. Machen Sie einen längsverlaufenden Hautschnitt von etwa 4 cm Länge über dem mittleren Drittel der Jugularrinne. Führen Sie eine stumpfe Sektion durch das subkutane Gewebe und den Musculus cutana colli durch, um die äußere Jugularvene freizulegen und zu isolieren.
    3. Führen Sie unter Anleitung einer Einführungsnadel einen zentralen Venenkatheter mit Doppellumen (7Fr) ein. Schieben Sie den Katheter etwa 15 bis 20 cm vor, bis seine Spitze in der Präkavalvene der Ziege liegt, etwa 2 cm vom rechten Vorhof entfernt. Ligate und fixiere den Katheter sicher.
    4. Verbinden Sie das distale Lumen über einen Dreifach-Absperrhahn mit einem Temperatursensor und einem Druckwandler zur Überwachung des zentralvenösen Drucks und zur Eis-kalte Kochsalzlösung. Verbinden Sie das proximale Lumen über einen dreifachen Absperrhahn mit einer intravenösen Infusionsleitung zur Flüssigkeitsgabe und zusätzlicher Anästhetika.
  3. Endotracheale Intubation
    1. Positioniere die Ziege in dorsaler Rückenlehnung und sichere den Hals in Streckung.
    2. Führen Sie einen 5–6 cm langen Längsschnitt entlang der Mittellinie vor. Verwenden Sie eine stumpfe Dissektion, um die Sternohyoideusmuskeln zu trennen und ein 2–3 cm großes Segment der Luftröhre freizulegen.
    3. Setzen Sie eine nicht absorbierbare Naht unter die freiliegende Luftröhre, um die Luftröhre vorsichtig anzuheben und zu stabilisieren. Machen Sie einen horizontalen "T"-Schnitt durch 2–3 Tracheenringe in der Mitte des stabilisierten Segments.
    4. Führe eine Endotrachealröhre der Größe 6,0 in die Tracheallumen ein und führe sie distal vor. Blas die Manschette auf. Nähen Sie den Luftröhrenschnitt locker und nähen Sie den Schlauch fest an die Haut. Schließen Sie den Endotrachealschlauch direkt an den mechanischen Beatmungskreislauf an.
      HINWEIS: Beatmungsparameter: Die Belüftungsart ist intermittierende positive Druckventilation (IPPV); das Gezeitenvolumen (VT) ist auf 8 mL/kg festgelegt; die Atemfrequenz (RR) wird bei 15 Atemzügen pro Minute gehalten; das Inspirations-Atmungsverhältnis (I: E) ist auf 1:1,5 konfiguriert; die Durchflussrate (V) liegt bei 7,2 L/min; der Anteil des eingeatmeten Sauerstoffs (FIO2) wird auf 21 % eingestellt; der positive Endexpirationsdruck (PEEP) ist auf 3,9 cm H2O eingestellt; und der Atemdruck (Pinsp) liegt zwischen 9 und 12 cm H2O.
  4. Femoralarteriekatheterisation
    1. Positioniere die Ziege in rechte seitliche Liegeposition und halte sie richtig fest.
    2. Führen Sie einen 3–4 cm langen Längsschnitt entlang der medialen Seite der Leiste vor. Verwenden Sie stumpfe Dissektionstechniken, um das femorale neurovaskuläre Bündel freizulegen und die Femoralarterie sorgfältig von der benachbarten Vene und dem benachbarten Nerv durch eine Kombination aus stumpfen und scharfen Dissektionsmethoden zu trennen.
    3. Führen Sie eine kleine transversale Arteriotomie am isolierten Oberschenkelarteriesegment durch und führen Sie einen Picco-Thermodilutionskatheter (4Fr) in die Arterie ein. Schieben Sie den Katheter auf 16 cm vor, wobei die Spitze in der Arteria iliaca common liegt. Nähen Sie den Katheter fest an die umliegende Haut oder das subkutane Gewebe.
      HINWEIS: Achten Sie darauf, den Katheter nicht gegen die Gefäßwand zu knicken oder zu drücken, da dies die genauen Drucktransduktions- und Thermoverdünnungsmessungen beeinträchtigt.
    4. Verbinden Sie den Katheter über einen Dreifach-Absperrhahn mit einem Drucksensor für kontinuierliche hämodynamische Überwachung, wie Blutdruck und extravaskuläres Lungenwasser. Diese Linie wird auch für intermittierende arterielle Blutproben verwendet. Halten Sie eine kontinuierliche heparinisierte Kochsalzspülung (1–2 ml/h) aufrecht, um eine Katheterverschluss zu verhindern.

6. Überwachung und Messungen

  1. Vitalzeichen
    1. Missen und zeichnen Sie die Vitalwerte zu folgenden Zeitpunkten: 0 Stunde vor der Verletzung, 0,5 Uhr, 3 Stunden, 6 Stunden, 9 Stunden und 12 Stunden nach der Verletzung.
    2. Verbinden Sie alle Sensorleitungen mit dem PiCCO-Überwachungsmodul. Positioniere den Drucksensor auf Herzenhöhe. Öffnen Sie den Absperrhahn am Wandler zur atmosphärischen Luft und führen Sie keine Kalibrierung sowohl für die arteriellen als auch für Venendruckleitungen durch.
    3. Überwachen und erfassen Sie den mittleren arteriellen Druck (MAP). Positionieren Sie die Elektrodenpads zur Überwachung der Kerntemperatur (T), der Atemfrequenz (RR) und der Herzfrequenz (HR) an den angegebenen Stellen: auf der linken Seite der Brust, zwischen der zweiten und dritten Rippe; auf der linken Seite der Brust, zwischen der fünften und sechsten Rippe; und auf der rechten Seite der Brust, zwischen der zweiten und dritten Rippe.
  2. Ultraschall (B-Modus)
    1. Führen Sie Lungenultraschalluntersuchungen zu folgenden Zeitpunkten durch: 0 Stunden vor der Verletzung, 0,5 Stunden, 3 Stunden, 6 Stunden, 9 Stunden und 12 Stunden nach der Verletzung. Halten Sie eine konsistente Scan-Sequenz aufrecht: Untersuchen Sie zunächst die rechte Lunge, dann die linke an jedem Zeitpunkt.
    2. Positioniere die Ultraschallsonde senkrecht zur Hautoberfläche an der Mitte jeder Trennwand. Stellen Sie sicher, dass der Markerpunkt der Sonde zur Wirbelsäule ausgerichtet ist.
    3. Videoclips erhalten Sie, indem Sie entlang der Zwischenrippenräume von der 10. bis zur 1. Rippe scannen. Speichere Videoaufnahmen, die mindestens zwei vollständige Atemzyklen enthalten.
    4. Wenden Sie den folgenden standardisierten Lungenultraschallwert (LUS) auf die gespeicherten Bilderan: Weisen Sie zwei ausgebildete Sonografen zu, die den Scoring-Prozess unabhängig voneinander durchführen. Berechnen Sie den Durchschnitt der beiden Ergebnisse für die Abschlussprüfung.
      HINWEIS: Punktzahl 0 zeigt das Vorhandensein von A-Linien an. Score 1 ist gekennzeichnet durch mehrere, deutlich getrennte B-Linien oder eine Verschmelzung von B-Linien, die weniger als 50 % der Pleuralinie umfasst. Score 2 zeigt diffuse koaleszente B-Linien an, die allgemein als "weiße Lunge" bezeichnet werden. Der Score 3 wird vergeben, wenn Hinweise auf Konsolidierung vorliegen, die sich als gewebeähnliche Echotextur oder dynamische Luftbronchogramme äußern kann.
  3. Arterielle Blutgasanalyse (ABG)
    1. Entnahme von arteriellen Blutproben zur Analyse zu folgenden Zeitpunkten: 0 Stunden vor der Verletzung, 0,5 Uhr, 3 Stunden, 6 Stunden, 9 Stunden und 12 Stunden nach der Verletzung.
    2. Mit einer Spritze wird zunächst die heparinisierte Kochsalzlösung und etwa 5 ml Blut aus der PiCCO-Arterienleitung abgesaugt und entsorgt. Anschließend entnehmen Sie 0,3 ml frisches arterielles Blut direkt über den Katheter.
    3. Injizieren Sie die Blutprobe sofort in eine CG4+-Testpatrone. Stecken Sie die Kartusche in den tragbaren Blutgasanalysator, um die Analyse durchzuführen.
    4. Zeichnen Sie die gemessenen Werte für pH, Sauerstoffpartialdruck (PaO2) und weitere relevante Parameter auf. Berechnen Sie den Sauerstoffindex (das Verhältnis des Partialdrucks von Sauerstoff zum Anteil des eingeatmeten Sauerstoffs, PaO₂/FiO₂).
  4. Messung von extravaskulärem Lungenwasser (EVLW)
    1. Führen Sie EVLW-Messungen mittels transpulmonaler Thermoverdünnung zu folgenden Zeitpunkten durch: 0 Stunden vor der Verletzung, 0,5 Stunden, 3 Stunden, 6 Stunden, 9 Stunden und 12 Stunden nach der Verletzung.
    2. Stellen Sie die arteriellen und venösen Drucktransducer wie in Abschnitt 6.1.2 beschrieben wieder ein. Stellen Sie sicher, dass eine stabile arterielle Wellenform auf dem Monitor angezeigt wird, bevor Sie fortfahren.
    3. Injizieren Sie genau 10 ml eiskalte (0 °C) Kochsalzlösung als Bolus durch den Temperatursensor des zentralen Venenkatheters. Beenden Sie die Injektion innerhalb von 7 Sekunden. Führen Sie jeweils drei aufeinanderfolgende Injektionen durch. Verwenden Sie den Durchschnitt der drei Messungen für den endgültigen EVLW-Wert.
    4. Zeichnen Sie EVLW und andere hämodynamische Parameter auf, die vom PiCCO-System bereitgestellt werden.
  5. Computertomographie (CT)
    1. Machen Sie Thorax-CT-Scans 0 Stunden vor der Verletzung und 12 Stunden nach der Verletzung.
    2. Führen Sie den Scan mit einem 64-Schnitt-CT-Scanner mit folgendem Protokoll durch: Röhrenstrom: 200 mas; Röhrenspannung: 100 kV; Rotationszeit: 0,4 S.
    3. Lassen Sie einen qualifizierten Radiologen den Scan und die anschließende Analyse durchführen, ohne Kenntnis der experimentellen Bedingungen. Nutzen Sie die spezialisierte Arbeitsstation, um eine dreidimensionale volumetrische Analyse des gesamten Lungenvolumens und des verletzten Lungenvolumens mit einer definierten Hounsfield-Einheit (HU)-Schwelle durchzuführen, um das verletzte Lungengewebe zu segmentieren. Korrigiere den Schadensbereich manuell.
    4. Berechnen Sie den Prozentsatz des verletzten Lungenvolumens (Lungenverletzungsverhältnis) mit der Formel: (verletztes Lungenvolumen / Gesamtlungenvolumen) * 100%.

7. Blasverletzungsverfahren der Ziege

  1. Die Ziegen werden die Ziegen zufällig in eine von drei unterschiedlichen Explosionsüberdruckkategorien unter Verwendung des BST-I.-Bioschockrohrs eingeteilt. Stellen Sie den Antriebsdruck auf 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) bzw. 5,0 MPa (n = 4) an, um die entsprechenden primären Druckwellen zu erzeugen.
  2. Führen Sie alle Vor-Verletzungsmessungen und Überwachung gemäß Abschnitt 6 durch. Sichern Sie die Ziege mit Stoffriemen im Stehen auf dem Fixierungsrahmen innerhalb des Stoßrohrs. Positioniere die Ziege 37,5 m von der Explosionsquelle entfernt, wobei ihre rechte Seite zum Epizentrum der Explosion zeigt (Abbildung 3).
  3. Positioniere den Luftdrucksensor an der Tierposition innerhalb des BST-I... Verbinden Sie das Signalaufbereitungsmodul mit dem Datenerfassungssystem. Zeichnen Sie Verletzungsparameter auf: den Spitzenüberdruck, die Aufstiegszeit, die positive Phasendauer und den positiven Phasenimpuls für jedes Verletzungsereignis.
    HINWEIS: Spitzenüberdruck: Der maximale Wert des Überdrucks, der durch die Druckwelle erzeugt wird. Aufstiegszeit: Die Zeit, die benötigt wird, damit der Druck von 0 auf den Spitzenwert steigt. Positive Phasenzeit: Der Überdruck bleibt nach dem Vorbeiziehen der Stoßfront über dem Umgebungsdruck. Positiver Phasenimpuls: Der gesamte Impuls pro Flächeneinheit, der durch den Überdruck der Stoßwelle erzeugt wird.
  4. Holen Sie die Ziege sofort aus dem Stoßrohr nach der Explosion. Führen Sie eine schnelle Beurteilung des allgemeinen Zustands der Ziege durch. Verwenden Sie ein Absauggerät, um alle blutigen Sekrete schnell aus dem Endotrachealrohr und den Atemwegen zu entfernen. Beginnen Sie sofort mit der manuellen Belüftung, wenn Apnoe festgestellt wird.
  5. Führen Sie alle nachträglichen Messungen und Überwachung gemäß Abschnitt 6 durch.

8. Euthanasie und Obduktion

  1. Tief betäuben Sie die Ziege mit einer intravenösen Injektion von 3 % Natrium-Pentobarbital nach Abschluss der 12-stündigen Beobachtungsphase. Führen Sie eine Blutblutung über den arteriellen Katheter oder ein anderes großes Gefäß durch. Führen Sie eine Sternotomie durch, um die Lunge vorsichtig zu entfernen.
  2. Führen Sie Bruttobewertungen mit der ImageJ-Software durch.
    1. Öffnen Sie das grobe Lungenbild in ImageJ und wandeln Sie es über den Menüpfad in ein 16-Bit-Graustufenbild um: Bild > Geben Sie > 16-Bit. (Abbildung 4A–B)
    2. Setzen Sie den Graustufenwert an der Stelle zwischen dem verletzten und normalen Gewebe als Schwelle. Kennzeichnen Sie alle Bereiche oberhalb dieser Schwelle rot als Darstellung der Verletzungszone (Abbildung 4C).
    3. Verfolgen Sie manuell den äußeren Rand des Lungengewebes, um die Grenze des gesamten Lungenbereichs zu definieren (Abbildung 4D).
    4. Berechnen Sie das Pixelverhältnis (Verletzungsfläche / Gesamtlungenfläche) sowohl für die dorsale als auch die ventrale Seite mithilfe des Menüpfads: Analysieren > Messungen > Strg + M setzen. Stellen Sie sicher, dass die Optionen 'Area', 'Area Fraction' und 'Limit to Threshold' ausgewählt sind. Man berechnet diese beiden Verhältnisse im Mittelpunkt, um das endgültige Verletzungsflächenverhältnis für die gesamte Lunge zu bestimmen.
  3. Bewerten Sie die Lungenprellung mit einem standardisierten Bewertungssystem, das von Yelverton et al.10 und den historischen Kriterien unseres Labors übernommen wurde.
    HINWEIS: Bewertungskriterien für grobe Lungenverletzungen: Grad 0 (Fehlen von Verletzung): Keine sichtbaren Prellungen oder Blutungen. Grad 1 (Mild): Verstreute Petechien oder Prellungen, die weniger als 10 % der Gesamtlungenoberfläche betreffen. Grad 2 (Mittel): Prellungen oder Hepatisationen, die bis zu 30 % der gesamten Lungenoberfläche bedecken. Grad 3 (Schwer): Prellungen oder Hepatisationen, die bis zu 50 % der gesamten Lungenoberfläche betreffen. Grad 4 (sehr schwer): Prellungen oder Hepatisationen, die mehr als 50 % der gesamten Lungenoberfläche betreffen.

9. Statistische Analyse

  1. Führen Sie alle statistischen Analysen mit SPSS-Software (Version 22.0) durch.
  2. Drücken Sie kontinuierliche Messdaten als Mittelwert ± Standardabweichung (x ± s) aus.
  3. Teste alle Datensätze auf Normalität.
  4. Verwenden Sie einen t-Test mit unabhängigen Stichproben, um die Mittelwerte zwischen zwei Gruppen zu vergleichen.
  5. Verwenden Sie den Pearsonschen Korrelationskoeffizienten für Korrelationsanalysen.
  6. Setzen Sie die Signifikanzschwelle auf p < 0,05.
    HINWEIS: '#' bedeutet p < 0,05 im Vergleich zum Wert vor der Verletzung; '##' bedeutet p < 0,01 im Vergleich zum Wert vor der Verletzung. '*' bedeutet p < 0,05, Vergleich zwischen der 4,0 MPa-Gruppe und der 4,5-MPa-Gruppe; '**' bedeutet p < 0,01, im Vergleich zwischen der 4,0-MPa-Gruppe und der 4,5-MPa-Gruppe.

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Ergebnisse

In der 4,5-MPa-Gruppe sind die gemessenen Verletzungsparameter wie folgt: Spitzenüberdruck 396,92 ± 23,11 kPa, Anstiegszeit 9,41 ± 0,32 ms, positive Phasendauer 51,57 ± 1,39 ms und positiver Phasenimpuls 5884,26 ± 231,44 kPa.ms. Das Druckzeitprofil der Stoßwelle ist in Abbildung 5 dargestellt. In der 4,0-MPa-Kohorte lag die Sterblichkeitsrate sowohl unmittelbar nach der Verletzung als auch nach 12 Stunden bei 0 %. In der 4,5-MPa-Kohorte lag die unmittelbare ...

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Diskussion

Explosionslungenverletzung ist eine schwere Erkrankung, die durch die Exposition gegenüber Explosionen verursacht wird. Sie ist gekennzeichnet durch pulmonale Parenchymalschäden, alveoläre Blutungen, Entzündungen und Gerinnungsstörungen und entwickelt sich häufig zu ARDS mit hoher Sterblichkeitvon 11,12,13. Aktuelle diagnostische Methoden umfassen CT für detaillierte morphologische Beurteilung

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Offenlegungen

Alle Autoren haben keine Interessenkonflikte angegeben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch das Outstanding Youth in National Defense Science and Technology (2023-JCJQ-ZQ-001), die Outstanding Young Talents of National Defense Biotechnology (01-SWKJYCJJ06), den Chongqing Outstanding Youth Fund (CSTB2022NSCQ-JQX0017) und das Military Clinical Key Specialty Construction Project unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
64-Schnitt-CT-ScannerGE Lightspeed, USA5133730-3
Babylog 8000Drä ger, Deutschlandhttps://www.draeger.com/en_in/Products/Babylog-8000-plus
Biologisches Stoßrohr (das große) (BST-I)Daping Hosipital, Heeresmedizinische UniversitätBST-I
CG4+-TestpatroneAbbott, USACG4+
Doppellumen-zentraler VenenkatheterBraun, DeutschlandDuo V730
Elektrische SaugvorrichtungJiangsu Yuyue Medizinische Ausrüstung & Supply Co., Ltd.7A-23D
EndotrachealrohrTAMPA, HangzhouETT6014C
HeparinnatriumChangzhou Qianhong Bio-pharma Co., Ltd.
IV-Katheter für den EinzelgebrauchWeihai Jierui Medical Products Co., Ltd.22G & Times; 25 mm/Y-G
ImageJ-Software
IOTech  WaveView 7.15.6 SoftwareIOtech, USAhttps://iotechsoftware.com/
MidazolamNhwa Pharma Co. Chinahttp://pharma-api.com/2-2-5-midazolam-injection/
PCB  SensorPCB Piezotronics, Inc. (USA)M102A02
PentobarbitalnatriumShanghai PharmaceuticalNA
Philips IntelliSpace Portal Workstationhttps://www.philips.ca/healthcare/product/HC881101/intellispace-portal-12
Picco ÜberwachungssetPULSION, DeutschlandPV8215
Tragbarer BlutgasanalysatorAbbott, USAi-STAT 300G
Tragbares drahtloses FarbultraschallgerätYoukey Bio-Medical Electronics Co., ChinaD-236
Veet pure HaarentfernungscremeReckitt Benckiserhttps://www.veet.co.in/en/products/hair-removal-creams/

Referenzen

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