Selektives nicht-operatives Management nach Bauchschuss- und Explosionsverletzungen bei einem Schweinemodell

Zusammenfassung

Diese Arbeit beschreibt die Entwicklung von Schweinemodellen für Bauchschuss- und Explosionsverletzungen, liefert die Ergebnisse der selektiven nicht-operativen Behandlung (SNOM) und der sofortigen Laparotomie bei verletzten Schweinen und betont die Notwendigkeit sorgfältiger Beobachtung und vordefinierter Kriterien für die Umstellung auf die Operation.

Zusammenfassung

Die Rolle des selektiven nicht-operativen Managements (SNOM) nach Schuss- und Explosionsverletzungen wurde zunehmend anerkannt, aber in Tiermodellen nicht untersucht. Insgesamt wurden 24 männliche Schweine vorbereitet, von denen 12 zur Herstellung eines Schusswundenmodells und die restlichen 12 ein Explosionsverletzungsmodell verwendet wurden. Die Tiere in jedem Verletzungsmodell wurden zufällig in Gruppen mit sofortiger Operation und SNOM unter Verwendung einer computergenerierten Zufallssequenz eingeteilt. Die Schussverletzung wurde durch das Abfeuern einer 7-mm-Stahlkugel mit 1,45 g auf den rechten oberen Bauch aus 10 cm Entfernung unter 170 Bar verursacht. Die Explosionsverletzung entstand, indem der rechte obere Bauch einer Hochdruckwelle aus 6 cm unter 170–190 Bar ausgesetzt wurde. In der SNOM-Gruppe wurde unmittelbar nach der Modellierung eine fokussierte Beurteilung mit Sonographie auf Trauma (FAST) durchgeführt und bei Verdacht auf hämodynamische Instabilität oder klinische Verschlechterung wiederholt. Die Umstellung auf eine Operation wurde durch anhaltende heterogene Echogenität oder hypoechoische Flüssigkeit bei FAST, hämodynamische Instabilität oder fortschreitende klinische Verschlechterung ausgelöst. Das Hauptergebnis war das 7-Tage-SNOM-Ergebnis. SNOM-Versagen wurde als Umwandlung in eine Operation oder Tod definiert. Nach der Modellierung von Schussverletzungen lag die 7-Tage-Überlebensrate bei 91,67 % (11/12). In der unmittelbaren Operationsgruppe unterzogen sich 2 Schweine einer therapeutischen Laparotomie und 4 einer negativen Laparotomie. In der SNOM-Gruppe wurde 1 Schwein auf eine Operation umgestellt, 1 starb am ersten Tag nach der Modellierung an einem hämorrhagischen Schock und 4 erfolgreich abgeschlossene SNOM. Nach der Blastverletzungsmodellierung lag die 7-Tage-Überlebensrate bei 100 % (12/12). In der Operationsgruppe unterzogen sich 3 Schweine einer therapeutischen Laparotomie und 3 einer negativen Laparotomie. In der SNOM-Gruppe wurden 2 Schweine auf eine Operation umgestellt, und 4 haben erfolgreich SNOM abgeschlossen. Diese Arbeit beschreibt die Entwicklung vorrangiger Modelle für verletzte Schweine, präsentiert repräsentative Ergebnisse der SNOM- und sofortigen Laparotomie-Strategien und unterstreicht die Notwendigkeit einer engen Überwachung bei der Verwendung der SNOM-Strategie.

Einleitung

Während des Ersten Weltkriegs galt die obligatorische Laparotomie als Standardbehandlung für penetrierende Bauchverletzungen zur Reduzierung der Sterblichkeit¹. 1974 berichteten Nance et al. erstmals über die Vorteile selektiver nicht-operativer Behandlung (SNOM) gegenüber routinemäßiger Chirurgie bei abdominalen Penetrationsverletzungen². Seitdem wird die SNOM-Strategie zunehmend anerkannt, da sie die Kosten für Krankenhausaufenthalte und Krankenhausaufenthalte senken und das Risiko von Komplikationen im Zusammenhang mit ^{nicht-therapeutischer} Laparotomie ^3,4,5 vermeiden kann. Es wurde berichtet, dass SNOM 25–47 % der nicht-therapeutischen Laparatotomien effektiv vermeiden kann⁶. Dennoch bleibt ihre klinische Anwendbarkeit bei Bauchschuss- und Explosionsverletzungen weniger^{klar definiert 7,8}. Einige Chirurgen bevorzugen weiterhin die explorative Laparotomie als Anfangsbehandlungsstrategie, selbst bei Patienten, die die Kriterien für eine nicht-operative Behandlung^{erfüllen 9}. Bei erwachsenen Patienten mit Bauchschusswunden unterziehen 73,00 % eine Laparotomie, von denen¹⁰ % als unnötig gelten. Die Häufigkeit von Komplikationen nach einer negativen Laparotomie kann bis zu 20,00–40,00 ^{% erreichen}.

Bislang konzentrierten sich bestehende Studien zur Anwendung von SNOM bei Patienten mit Bauchschussverletzungen und Explosionsverletzungen auf klinische Szenarien 8,12,13,14,15. Soweit wir wissen, sind nur sehr wenige Tierstudien zu SNOM verfügbar. In Tiermodellen können experimentelle Bedingungen kontrolliert und angepasst werden; Im Gegensatz dazu liegen in klinischen Fällen zahlreiche und komplexe Störfaktoren vor. Zusätzlich sind in Tiermodellen wiederholte serielle Messungen innerhalb relativ kurzer Zeit erlaubt, wodurch wichtige Daten zur Bewertung neuartiger klinischer Managementstrategien bereitgestellt werden; Die multisystemische Komplexität menschlicher Kampftraumata kann jedoch nicht vollständig reproduziert werden. Im Vergleich zu Kleintiermodellen oder klinischen Beobachtungsstudien erlauben Schweinemodelle eine abdominale Beurteilung mit Sonographie für Trauma (FAST), Laparotomie und serielle Blutproben unter kontrollierten experimentellen Bedingungen. Diese Studie zielt darauf ab, Schweinemodelle von Schuss- und Explosionsverletzungen im Bauchbereich zu etablieren und deren Ergebnisse nach SNOM und sofortiger Operation zu vergleichen.

Protokoll

Diese Studie wurde vom Unterausschuss für Tierethik des General Hospital of Northern Theater Command genehmigt (Ethical Approval Number: 2024–23) und gemäß den ARRIVE-Richtlinien (Animals in Research: Reporting In Vivo Experiments)¹⁶ durchgeführt. Alle Schweine wurden vom Laboratory Animal Center des General Hospital des Northern Theater Command bereitgestellt und gepflegt.

1. Gruppierung

1. Verwenden Sie 24 männliche Landrace-Schweine im Alter von 4 Monaten, mit einem durchschnittlichen Körpergewicht von 27,7 kg und einem Bereich von 25–30 kg.
2. Halten Sie jedes Schwein mindestens 48 Stunden vor dem Experiment einzeln in einem Standardkäfig.
3. Zufällig werden 24 Schweine der Schussverletzungsmodellgruppe (n = 12) oder der Explosionsmodellgruppe (n = 12) mit einer computergenerierten Zufallssequenz zugeordnet.
4. Außerdem werden die Schweine in jeder Verletzungsmodellgruppe zufällig der Gruppe für unmittelbare Operationen (n = 6) oder der selektiven nicht-operativen Managementgruppe (SNOM) (n = 6) mit derselben Randomisierungsmethode zugeordnet (Abbildung 1).
5. Definieren Sie die chirurgischen und SNOM-Ergebnisse wie folgt: Sofortige Operation bezieht sich auf geplante Laparotomie, die unmittelbar nach der Verletzungsmodellierung durchgeführt wird; Therapeutische Laparotomie bezeichnet eine Laparotomie, die eine aktive chirurgische Intervention bei anhaltenden Blutungen oder chirurgisch behandelbaren viszeralen Verletzungen erfordert; Negative Laparotomie bezeichnet eine Laparotomie ohne aktive Blutung oder chirurgisch behandelbare Bauchverletzung; Die Umwandlung zur Operation bezieht sich auf eine Laparotomie, die nach dem ersten SNOM durchgeführt wird; Ein SNOM-Versagen bezieht sich auf die Umwandlung in eine Operation oder den Tod während der 7-tägigen Beobachtungsperiode; und erfolgreiches SNOM bezeichnet den Abschluss der 7-tägigen Beobachtungsperiode ohne Umwandlung in Operation oder Tod.

2. Anästhesie und Vorbereitung vor dem Modellieren

1. Jedes Schwein mindestens 12 Stunden vor der Verletzungsmodellierung fasten lassen und freien Zugang zu Wasser ermöglichen.
2. Vollnarkose über die Ohrvene wird mit 1 % Propofol in einer Dosis von 0,8 mL/kg induziert. Geben Sie bei Bedarf zusätzlich 2–4 ml Propofol, um eine ausreichende Anästhesie zu erreichen.
3. Betäuben Sie während des gesamten Experiments durch kontinuierliche Infusion von Propofol mit einer Dosis von 1,2 mg/kg/h.
4. Ausreichende Anästhesie wird durch das Fehlen eines Hornhautreflexes, erweiterte Pupillen mit vermindertem Lichtreflex und natürliche Entspannung der Gliedmaßen bestätigt.
5. Setzen Sie jedes Schwein in die Rückenlage, nachdem eine ausreichende Betäubung erreicht ist.
6. Intubieren Sie jedes Schwein mit einem 7,5°F Endotrachealrohr unter Laryngoskopie, um die Atemwegsöffnung zu erhalten.
7. Halten Sie die spontane Atmung aufrecht, wenn die Vitalwerte stabil bleiben, und bieten Sie bei Apnoe, schwerer Atmung oder Sauerstoffentsättigung eine positive Druckbeatmung.
8. Stabile Vitalwerte für 10 Minuten vor der Verletzungsmodellierung bestätigen.
9. Führen Sie vor der Verletzungsmodellierung keine prophylaktische Flüssigkeitsladung durch. Während der perioperativen Phase werden warme, normale Kochsalzlösungen nur als Wartungs- oder Rettungsflüssigkeit verabreicht, wenn es klinisch erforderlich ist. Anhaltende Hypotonie oder fortschreitende klinische Verschlechterung werden als Hinweis auf eine sofortige chirurgische Untersuchung oder Umstellung auf eine Operation verwendet, anstatt eine langanhaltende konservative Wiederbelebung.
10. Verabreichen Sie während des Experiments keine Blutprodukte. Wenn eine Blutung festgestellt wird, wird die Blutung durch chirurgische Hämostase bei Tieren, die sofort operiert oder zur Operation umgewandelt werden, statt durch transfusionsbasierte Wiederbelebung erreicht.

3. Modelletablierung

1. Setzen Sie jedes betäubte Schwein in die rechte laterale Dekubitisposition.
2. Überführen Sie das Schwein zur multifunktionalen Tiertrauma-Modellierungsplattform in der Einrichtung (Abbildung 2).
3. Identifizieren Sie die Zielstelle im rechten oberen Quadranten, unmittelbar unterhalb des rechten Rippenrandes.
4. Markiere den Zielpunkt etwa 27 cm oberhalb der Symphyse der Schambein (Bereich: 25–30 cm) und 2 cm lateral zur Mittellinie.
5. Stellen Sie das Modell der Schussverletzung fest, indem Sie eine kleine Stahlkugel mit 7 mm Durchmesser und 1,45 g Gewicht vertikal auf den markierten Bauchpunkt aus einer Entfernung von 10 cm mit einem Druck von 170 bar abfeuern.
6. Stellen Sie das Explosionsschadensmodell fest, indem Sie eine Hochdruckstoßwelle aus einer Entfernung von 6 cm mit einem Druck von 170–190 bar auf den markierten Bauchpunkt richten.
7. Betreiben Sie die Trauma-Modellierungsplattform mit dem Fernbedienungssystem.
8. Halten Sie alle Forscher während der Modelleinrichtung in einem separaten, abgeschirmten Beobachtungsbereich, um Hochdruckexposition und akustische Traumata zu vermeiden.
   HINWEIS: Lassen Sie die Eindringtiefe durch den standardisierten Druck und den individuellen Gewebewiderstand bestimmt werden. Definieren Sie den Modellausfall als sofortige Sterblichkeit beim Aufprall.

4. Leitung der unmittelbaren Operationsgruppe

1. Bringen Sie jedes Schwein der unmittelbaren Operationsgruppe unmittelbar nach der Verletzungsmodellierung in den Operationssaal.
2. Setzen Sie das Schwein in die Rückenlage.
3. Bereiten Sie den Bauchbereich mit Iodophor vor und legen Sie das Operationsfeld steril ab.
4. Machen Sie einen horizontalen Schnitt von etwa 10–15 cm Länge in der Nähe der Wundstelle, um in die Bauchhöhle einzutreten.
5. Verwenden Sie einen Metallretraktor, um die Bauchwand ausreichend zu öffnen und die intraabdominalen Organe und Strukturen freizulegen.
6. Evakuieren Sie das Hämoperitoneum mit einem Absauggerät, wenn intraperitoneales Blut beobachtet wird.
7. Schätzen Sie den gesamten Blutverlust, indem Sie das abgesaugte Blutvolumen mit dem Gewichtszuwachs blutgetränkter chirurgischer Schwämme kombinieren.
8. Untersuchen Sie die Bauchhöhle systematisch nach der Ableitung des intraperitonealen Blutes, mit besonderem Augenmerk auf die Leber und andere verletzte Organe.
9. Bestimmen Sie die anschließende operative Behandlung anhand der intraoperativen Befunde.
10. Verwenden Sie elektrochirurgische Gerinnung bei etwa 40 W, um die anhaltende Blutung bei der Leberverletzung zu bewältigen.
11. Partielle Leberresektion wird durchgeführt, wenn die elektrochirurgische Gerinnung die Blutung nicht kontrollieren kann oder das Lebergewebe stark devitalisiert ist.
12. Vermeiden Sie weitere chirurgische Eingriffe, wenn während der Untersuchung keine aktive Blutung oder chirurgisch behandelbare viszerale Verletzung festgestellt wird.
13. Schließen Sie den Bauchschnitt schichtweise mit 0-Gauge-Nähten.

5. Leitung der SNOM-Gruppe

1. Arbeiten Sie sofort nach der Modellierung SCHNELL.
2. Missen und dokumentieren Sie nach dem Modellieren Vitalzeichen, einschließlich Körpertemperatur, Blutdruck und Sauerstoffsättigung.
3. Überwachen Sie die Vitalwerte kontinuierlich in den ersten 2 Stunden nach der Verletzungsmodellierung. Registrieren Sie alle 4 Stunden die Vitalwerte nach den ersten 2 Stunden kontinuierlicher Überwachung.
4. Führen Sie den ersten FAST-Scan unmittelbar nach der Verletzungsmodellierung mit einem tragbaren Farb-Doppler-Ultraschalldiagnosesystem durch, das mit einer konvexen Array-Sonde mit einem Frequenzbereich von 1–7 MHz und einer Mittelfrequenz von 3,2 MHz ausgestattet ist.
5. Führen Sie wiederholte FAST-Scans durch, wenn klinische Verschlechterung oder hämodynamische Instabilität vermutet wird.
6. Weisen Sie FAST-Untersuchungen einem erfahrenen Sonographen zu, der die anfänglichen physiologischen Parameter der Tiere nicht kennt.
7. Führen Sie FAST-Untersuchungen gemäß dem Standard-Trauma-Ultraschallprotokoll durch.
8. Erlauben Sie einem leitenden Unfallchirurgen, die endgültige Entscheidung über die Umstellung von SNOM auf chirurgische Maßnahmen gemäß den vordefinierten sonographischen oder hämodynamischen Schwellenwerten zu treffen.
9. Bringen Sie das Schwein in den Operationssaal zur chirurgischen Behandlung, wenn FAST anhaltende heterogene Echogenität im Leberparenchym, eine fortschreitende Ausdehnung der intraperitonealen freien Flüssigkeit oder ein vergrößerndes hepatisches Hämatom zeigt.
10. Bringen Sie das Schwein in den Operationssaal zur chirurgischen Intervention, wenn eine hämodynamische Instabilität, definiert als systolischer Blutdruck <90 mmHg, auftritt.
11. Setzen Sie eine konservative Behandlung fort, wenn die Vitalwerte stabil sind und FAST keine abnormalen Befunde zeigt.

6. Blutprobenentnahme

1. Entnehmen Sie etwa 2 ml Blut pro Entnahme aus der marginalen Ohrvene und der Halsschlagader vor der Modellierung (Baseline), 24 Stunden, 3 Tage, 5 Tage und 7 Tage nach der Modellierung.
2. Nehmen Sie Blutproben in geeigneten Tuben gemäß den Anforderungen jedes Labortests.
3. Behandle alle Blutproben innerhalb von 30 Minuten nach der Entnahme.
4. Trennen Sie das Serum durch Zentrifugation bei 3.000 U/min für 5 Minuten.
5. Serumproben werden bei -80 °C bis zur weiteren Analyse gelagert.
6. Fehlende Proben durch frühe Sterblichkeit oder technischen Ausfall zu den entsprechenden Zeiten ausschließen.
7. Führen Sie eine arterielle Blutgasanalyse mit einem Blutgasanalysator durch. Analysieren Sie vollständige Blutwerte mit einem hämatologischen Analysator. Missen Sie die Prothrombinzeit (PT) und Fibrinogenwerte (FIB) mit einem Gerinnungsanalysator. Analysieren Sie C-reaktives Protein (CRP), Gesamtbilirubin (TBIL), indirektes Bilirubin (IBIL), Aspartat-Aminotransferase (AST) und Alaninaminotransferase (ALT) mit einem automatisierten biochemischen Analysator.
8. Quantifizieren Sie Serumspiegel von Tumornekrosefaktor-α (TNF-α), Interleukin-6 (IL-6) und Interleukin-10 (IL-10) mittels spezifischer Porcine-Enzym-gebundener Immunsorbent-Assay-Kits (ELISA).
9. Prüfstandards und Proben doppelt. Verwenden Sie die mittleren optischen Dichtewerte doppelter Bohrungen, um Standardkurven zu erstellen und die Konzentrationen von Entzündungsfaktoren zu berechnen.

7. Management nach dem Vorleben

1. Jedes Schwein nach der Verletzungsmodellierung einzeln in einem separaten Käfig unterbringen. Verabreichen Sie 0,75 g Cefuroxim-Natrium einmal täglich durch eine intramuskuläre Injektion in den ersten 5 Tagen nach der Modellierung, um eine Infektion zu verhindern.
2. Postoperative Analgesie unter Aufsicht von geschultem Personal anbieten. Beurteilen Sie schmerzbedingte Verhaltensweisen, einschließlich verminderter Aktivität, abnormaler Haltung und geringer Nahrungsaufnahme, mindestens dreimal täglich. Verabreichen Sie eine Rettungsanalgesie, wenn schmerzbedingte Verhaltensweisen beobachtet werden.
3. Desinfizieren Sie die Operationswunde dreimal täglich mit Jod-Tinktur. Geben Sie dreimal täglich Nahrung und Wasser.
4. Überwachen Sie kontinuierlich den körperlichen Zustand und den geistigen Zustand jedes Schweins während der 7-tägigen Beobachtungsphase.
5. Am 7. Tag nach der Modellierung wird jedes überlebende Schwein durch eine intravenöse Überdosis von 1 % Propofol eingeschläfert.
6. Mache einen mittleren Bauchschnitt, um die Bauchhöhle vollständig freizulegen. Führen Sie eine gründliche Obduktion durch, um die Schwere und Verteilung der Bauchverletzungen zu bestätigen.
7. Bewerten Sie die Schwere der Verletzungen anhand der Überarbeitung der Abbreviated Injury Scale (AIS^{) von} 2015.
8. Setzen Sie zwei erfahrene Chirurgen zu, die für die experimentellen Gruppenzuweisungen und klinischen Ergebnisse blind sind, um unabhängig AIS-Bewertungen durchzuführen und eventuelle Unstimmigkeiten durch Diskussionen zu beseitigen, bis ein Konsens erzielt wird.

8. Statistische Analyse

1. Stetige Variablen als Mediane mit Interquartilbereichen (IQR) präsentieren.
2. Stellen Sie kategoriale Variablen als Häufigkeiten und Prozentsätze dar.
3. Vergleichen Sie kontinuierliche Variablen mit dem Mann-Whitney-U-Test.
4. Vergleichen Sie kategoriale Variablen mit dem exakten Test von Fisher.
5. Führen Sie alle statistischen Analysen mit Statistiksoftware durch.
6. Verwenden Sie einen P-Wert von <0,05, um die statistische Signifikanz anzuzeigen.
7. Tiere mit früher Sterblichkeit von nachfolgenden seriellen physiologischen und biochemischen Bewertungen sowie der abschließenden AIS-Bewertung ausschließen.

Ergebnisse

Bei insgesamt 24 Schweinen blieben die Vitalzeichen innerhalb von 1–2 Stunden nach der Modellierung stabil.

Modell der Schussverletzung

In der unmittelbaren OP-Gruppe hatten alle 6 Schweine durchdringende Verletzungen (Tabelle 1). Die chirurgische Untersuchung zeigte, dass 1 Schwein (16,67 %) eine peritoneale Penetration ohne Organverletzung, 1 (16,67 %) eine Leberpenetrationsverletzung und 4 (66,67...

Diskussion

Nach dem ballistischen Pfad können Schussverletzungen als durchdringende und blinde Röhrenverletzungen eingeteilt werden. Explosionsverletzungen werden im Allgemeinen in vier Typen eingeteilt: 1) Schäden, die ausschließlich durch die Explosionswelle verursacht werden; 2) Schäden, die hauptsächlich durch Trümmer des Sprengstoffs oder der Umgebung verursacht werden; 3) Schäden durch Verschiebung des Opfers oder Umweltstrukturen; und 4) Verbrennungen, Vergiftungen und radioaktive Kontaminat...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Einstellbare Einzelkanalpipette, 20–200 µL	Thermo Labsystems	4642080
AU5800 Serie Klinische Chemieanalysatoren	Beckman Coulter	B23279
Automatisierter Blutgerinnungsanalysator CS-5100	Sysmex	BY990757
BC-6800Plus Auto Hämatologieanalysator	Mindray	BC-6800Plus
Cefuroxim-Natrium zur Injektion, 0,75 g/Fläschchen	Guangzhou Baiyunshan Tianxin Pharmaceutical Co., Ltd.	NMPA-Zulassung Nr. H10940187
Beschichtete geflochtene Seidennaht	Covidien Healthcare International Trading (Shanghai) Co., Ltd.	N/A
Kontinuierlicher Spender	TOMOS Life Science Group	1008004
Konvexer Array-Schallkopf	SonoScape Medical Corp	Modell 3C-A
Denley Dragon Wellscan MK-3 Mikroplattenleser	Thermo Labsystems	Wellscan MK-3
Wassermantel-Elektro-Thermostat-Inkubator mit Digitalanzeige	Shanghai Yuejin Medical Instrument Factory	PYX-DHS
Elektrischer thermostatischer Blas-Trockenschrank	Shanghai Jinghong Experimental Equipment Co. Ltd.	DHG-9023A
Endotracheale Kanüle, Größe 7,5 mm	Teleflex	5-10114
GEM Premier 3500 Blutgasanalysator	Werfen	26000000
Hochgeschwindigkeits-Tischzentrifuge	Shanghai Anting Scientific Instrument Factory	TGL-168
K2 EDTA Vakuum-Blutentnahmeröhrchen	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Multifunktionale Plattform zur Modellierung von Tierverletzungen	Chongqing Zhishangyun Technology Co., Ltd.	23X-FH
Porcines IL-10 Elisa-Kit	Aimeng Youning	LV70245
Porcines IL-6 Elisa-Kit	Aimeng Youning	LV70293
Porcines TNF-α Elisa-Kit	Aimeng Youning	LV70500
Tragbare Farbdoppler-Ultraschall-Diagnostikanlage	SonoScape Medical Corp	Modell E3
Voreingestellte heparinisierte arterielle Blutentnahmespritze	BD	364390
Propofol 1% (10 mg/ml)	Fresenius Kabi	N/A
RM800 Veterinär-Multiparameter-Monitor	RWD Life Science Co., Ltd.	RM800
Sicherheits-IV-Katheter	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Serumseparatorröhrchen (SST), Gerinnungsaktivator + Gel	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Natriumchlorid-Injektionslösung 0,9%, 500 ml	Anhui BBCA Pharmaceutical Co., Ltd.	NMPA-Zulassung Nr. H34021876
SPSS	IBM Corp, Armonk, New York, USA	26
Sterile Einwegspritze, 10 ml	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Sterile Einwegspritze, 5 ml	Shandong Ande Healthcare Apparatus Co., Ltd.	N/A
Sterile chirurgische Pinzette (gerade und gebogen)
Sterilisationsverpackungsfolie (Vliesstoff)	MPACK	A082700
Vakuum-Blutentnahmeröhrchen, Natriumcitrat	Jiangsu Yuli Medical Instrument Co., Ltd.	N/A
Vortexmischer	Shanghai Qingpu Huxi Instrument Factory	XW-80A
Wellwash 4 MK 2 Mikroplatten-Waschmaschine	Thermo Labsystems	N/A