$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Diese Studie wurde gemäß den PRILE-Richtlinien durchgeführt und berichtet (Supplementary File 1), und der gesamte experimentelle Workflow wird im PRILE Flussdiagramm (Supplementary File 2) zusammengefasst.
Stichprobenauswahl
VORSICHT: Entfernte menschliche Zähne stellen eine potenzielle biologische Gefahr dar. Behandle alle Proben mit geeigneter persönlicher Schutzausrüstung (PSA), einschließlich Handschuhen, Masken und Schutzbrillen. Entsorgen Sie alle biologischen Abfälle in ausgewiesenen Biogefährdungsbehältern gemäß institutionellen und lokalen Vorschriften.
Das Studienprotokoll erhielt die Zustimmung des örtlichen institutionellen Überprüfungsausschusses (MIU-IRB-2122). Eine Leistungsanalyse mit G*Power (v3.1.9.7) basierend auf Baranwal et al. (8) ergab, dass eine Stichprobengröße von 12 pro Gruppe 80 % Leistung liefert, um signifikante Unterschiede bei einer Effektgröße von 0,586 zu erkennen. Vierundzwanzig frisch extrahierte, einwurzelige permanente Unterkieferpremolaren (Vertucci Klasse I) mit geraden, ausgewachsenen Wurzeln wurden aus der Abteilung für Oral- und Kiefergesichtschirurgie der Misr International University entnommen. Die Zähne wurden aus kieferorthopädischen oder parodontalen Gründen gezogen, die mit dieser Studie nichts zu tun hatten. Unmittelbar nach der Extraktion wurden alle anhaftenden Weichteile oder Zahnsteine mit Parodontal-Scaler entfernt und die Zähne unter fließendem Wasser gewaschen. Um Desinfektion zu gewährleisten und die Hydration zu erhalten, wurden die Proben bis zur Anwendung in einer 0,1%igen Thymollösung bei 4 °C aufbewahrt. Die Zähne wurden unter 8-facher Vergrößerung untersucht; Personen mit Frakturen, vorheriger endodontischer Behandlung, Verkalkungen oder resorptiven Läsionen wurden aus der Studie ausgeschlossen.
Probenvorbereitung
VORSICHT: Verwenden Sie geeignete Behälter für die Entsorgung aller endodontischen Feilen, Nadeln und Diamantscheiben.
Die Kronen wurden an der Zement-Emaille-Verbindung mit einer Hochgeschwindigkeits-Diamantscheibe unter Wasserkühlung entfernt, um die Wurzellänge zu standardisieren. Die Arbeitslänge (WL) wurde durch das Einfügen einer Größe 10 K-Feil, bis sie am Spitzenforamen sichtbar war, und 1 mm abgezogen. Die Kanäle wurden mit HyFlex EDM Glide Path-Dateien (10/0,05) bei 400 × g vorgefackelt. Die Instrumentierung erfolgte mit einem HyFlex EDM OneFile (25/variable Taper) bis zum vollständigen WL.
Das endgültige Bewässerungsprotokoll wurde mit 17 % EDTA und anschließend 2,6 % NaOCl durchgeführt.
HINWEIS: Entsorgen Sie chemische Bewässerungsabfälle in entsprechend gekennzeichneten Chemikalienbehältern gemäß den Laborsicherheitsstandards. Jede Lösung wurde für 30 Sekunden ultraschallweise mit einer Ultraschalleinheit aktiviert, die mit einer Silber-Nickel-Aktivatorspitze der Größe 20 und 0,02 verjüngt war. Die Spitze wurde 2 mm vor dem WL platziert und arbeitete mit mittlerer Leistung (ca. 45 kHz) im passiven Ultraschallbewässerungsmodus (PUI), sodass die Spitze frei schwingte, ohne an den Kanalwänden zu klemmen.
Obturationsprotokoll
Die Stichproben wurden zufällig in zwei Gruppen (n = 12) verteilt, wobei eine computergenerierte Sequenz mit Microsoft Excel verwendet wurde, um eine unvoreingenommene Verteilung sicherzustellen.
- SC Group: Der Kanal wurde mit Papierspitzen getrocknet. NeoSealer Flo wurde mit der Intrakanalspitze des Herstellers in das koronale Drittel des Kanals injiziert, und ein HyFlex EDM-Masterkegel der Größe 25 wurde mit einer dünnen Schicht Versiegelung beschichtet und langsam auf WL gesetzt.
- CLC-Gruppe: Ein .02-Taper-Hauptkegel wurde in Versiegelung getaucht und auf WL gesetzt. Ein Fingerspreizer der Größe 25 wurde bis auf 1 mm an die WL herangeführt, um seitlich Platz zu schaffen. Hilfskegel (Größe fein-fein) wurden mit Versiegler beschichtet und seitlich mit demselben Streuer verdichtet, bis der Kanal voll war.
Die Zugänge wurden mit Cavit versiegelt. Die Qualität der Obturation und das Fehlen von Hohlräumen wurden radiographisch mit einem digitalen intraoralen Sensor und einer Röntgeneinheit mit 65 kV und 7 mA überprüft. Röntgenaufnahmen wurden aus zwei orthogonalen Winkeln (bucco-lingual und mesio-distal) entnommen, um eine dreidimensionale Bewertung der Fülldichte sicherzustellen. Die Bilder wurden unter 2-facher Vergrößerung analysiert. Die Proben wurden 14 Tage bei 37 °C und 100 % Luftfeuchtigkeit gelagert, um sicherzustellen, dass der Versiegler vollständig aushärtet.
Wiederbehandlung
Die Nachbehandlung wurde mit ProTaper Universal-Nachbehandlungsdateien (D1, D2 und D3; Dentsply Sirona, Ballaigues, Schweiz). Nach der Entfernung des Großteils des Füllmaterials wurde eine weitere Vergrößerung mit ProTaper Next-Dateien X2 (Größe 25, 0,06 Taper) und X3 (Größe 30, 0,07 Taper) bei 500 × g und 2,0 Ncm Drehmoment durchgeführt. Die Spülung mit 5,25 % NaOCl wurde zwischen den einzelnen Feilen mit einer 30-Gauge seitlich belüfteten Nadel durchgeführt.
Der klinische Endpunkt für die Nachbehandlung wurde definiert als der Moment, in dem die X3-Datei die volle Arbeitslänge erreicht hatte und die Feilenflöten bei Inspektion unter 8-facher Vergrößerung frei von sichtbaren Füllmaterialresten erschienen. Dieses Kriterium stellt einen standardisierten klinischen "Stopppunkt" für das Verfahren dar. Dies bedeutet jedoch nicht die vollständige Entfernung des gesamten Füllmaterials aus dem Kanal, da mikroskopische Reste oft in dentinalen Unregelmäßigkeiten verbleiben und anschließend während der stereomikroskopischen Evaluierungsphase quantifiziert wurden.
Die prozedurale Nachbehandlungszeit wurde in Minuten und Sekunden mit einer digitalen Stoppuhr erfasst. Das Zeitintervall begann in dem Moment, in dem die erste Nachbehandlungsdatei (D1) die koronale Gutta-Percha berührte, und wurde während Bewässerung, Feilwechsel und Flötenreinigung pausiert, um sicherzustellen, dass nur die aktive Instrumentierungszeit erfasst wurde. Das Timing endete, als die letzte apikale Linie (X3) die festgelegte Arbeitslänge erreichte.
Stereomikroskopische Untersuchung
Jede Wurzel wurde für das längsliegende Spalten vorbereitet, indem zwei oberflächliche Rillen (etwa 0,5 mm tief) auf der buckalen und lingualen Oberfläche mit einer Diamantscheibe unter Wasserkühlung erzeugt wurden. Die Wurzeln wurden dann gespalten, indem die Klinge eines sterilen Meißels in die Rillen gesteckt und mit einem Hammer leicht geklopft wurde. Jede Hälfte wurde mit 8-facher Vergrößerung fotografiert. Bilder wurden in ImageJ importiert. Um standardisierte Messungen sicherzustellen, wurde zunächst die Messskala der Software kalibriert. Dies geschah, indem man das Werkzeug "Gerade Linie" auswählte, um eine Linie über das fotografierte physische Lineal zu zeichnen, und dann das Dialogfeld "Maßstab einstellen" öffnete, um die bekannte Entfernung (1 mm) einzugeben und Pixel in Millimeter (mm 2) umzuwandeln. Anschließend wurde das Werkzeug "Polygon-Auswahl" verwendet, um manuell den genauen Umfang des gesamten Wurzelkanalbereichs nachzuzeichnen und so die gesamte Kanalfläche zu berechnen. Anschließend wurde dasselbe Werkzeug verwendet, um die Grenzen aller sichtbaren Inseln mit Restrobben und Gutta-Percha nachzuzeichnen und so deren Gesamtfläche zu berechnen. Der Prozentsatz des Restfüllmaterials wurde dann berechnet, indem die Gesamtfläche der Überreste durch die Gesamtfläche des Kanalraums geteilt und mit 100 multipliziert wurde.
Die Überreste auf den drei Wurzelebenen koronal, mittlere und apikale Ebene wurden gemäß Sherif et al.9 mit folgendem Bewertungssystem bewertet. Im Einklang mit den Einschränkungen der stereomikroskopischen Analyse wurde kein Versuch unternommen, zwischen Gutta-Percha und Versiegelung zu unterscheiden; daher werden alle Restabfälle zusammenfassend als "Restfüllmaterial" bezeichnet.
Statistische Analyse:
Alle Analysen wurden mit dem vollständigen Rohdatensatz durchgeführt, der in dieser Studie erstellt wurde (Supplementary File 3). Ordinaldaten wurden als Häufigkeits- und Prozentwerte präsentiert. Numerische Daten werden als Mittelwert- und Standardabweichungswerte präsentiert. Die Daten wurden mit Shapiro-Wilks Test auf Normalität überprüft und stellten sich als nicht normal verteilt heraus. Für Gruppenvergleiche zwischen den SC- und CLC-Gruppen an jedem Wurzeldrittel wurde der Mann-Whitney-U-Test verwendet. Für innergruppenspezifische Vergleiche über die drei Wurzelebenen (koronal, mittlere und apikale) wurde der Kruskal-Wallis-Test verwendet, gefolgt von Dunns Post-hoc-Test für paarweise Vergleiche, bei denen signifikante Unterschiede festgestellt wurden. Um mehrere Abschnittsvergleiche zu berücksichtigen und das Risiko von Typ-I-Fehlern zu verringern, wurde eine Bonferroni-Korrektur angewandt, die das Signifikanzniveau entsprechend anpasste. Das Signifikanzniveau wurde auf P < 0,05 festgelegt. Die statistische Analyse wurde mit der R-Statistiksoftware Version 4.3.1 für Windows (Materialtabelle) durchgeführt.