Stufenweise präzise Düngung zur Quantifizierung der Nährstoffansammlung und -verteilung in Doppelsaison-Süßkartoffelsystemen

Summary

Dieses Protokoll beschreibt eine stufenweise präzise Düngungsmethode, die mit physiologischen Wachstumsphasen synchronisiert ist, um die Nährstoffversorgung in doppelsaisonigen Süßkartoffelsystemen zu optimieren. Es umfasst Verfahren zur Quantifizierung organspezifischer Nährstoffansammlung, zur Anpassung nichtlinearer dynamischer Modelle an Absorptionsbahnen und zur Berechnung scheinbarer Nährstoffbilanzen zur Minderung von Umweltrisiken.

Abstract

Die Produktion von frischen Süßkartoffeln in der Doppelsaison weist häufig eine Diskrepanz zwischen Bodennährstoffversorgung und Erntebedarf auf, was zu suboptimalem Ertrag und ineffizienter Ressourcennutzung führt. Die traditionelle Düngung basiert oft auf Basalanwendungen, die die dynamischen Anforderungen der Pflanze unter unterschiedlichen Frühlings- und Herbstbedingungen nicht erfüllen. Dieser Artikel präsentiert ein umfassendes Protokoll für eine schrittweise präzise Düngungsstrategie, die Stickstoff-, Phosphor- und Kaliumeinträge mit kritischen phänologischen Knoten synchronisiert. Die Methode teilt die Gesamtnährstoffeingaben in fünf verschiedene Anwendungsphasen auf, die spezifischen Wachstumsstadien entsprechen: Setzlingsetablierung, Rankenwachstum, Knolleninitiierung, schnelle Bulking und Reifung. Das Protokoll beschreibt zudem ein rigoroses destruktives Probeverfahren zur Analyse der Nährstoffverteilung der ganzen Pflanzen. Durch den Einsatz logistischer nichtlinearer Regressionsmodelle können Forscher die maximale Akkumulationskapazität, die Dauer der schnellen Aufnahmephase und die Wendepunkte der Nährstoffaufnahme quantifizieren. Dieser Ansatz ermöglicht eine präzise Identifizierung kritischer Absorptionsfenster und die Bewertung scheinbarer Nährstoffbilanzen. Die Anwendung dieses Protokolls erleichtert die Optimierung der Düngungsregime, verbessert sowohl den Ertrag der Lagerwurzeln als auch die kommerzielle Qualität und reduziert die Risiken von Nährstoffdefiziten oder -überschüssen in intensiven Doppelkultursystemen.

Introduction

Süßkartoffel (Ipomoea batatas. L.) hat sich von einer Subsistenzkulturpflanze zu einer hochwertigen funktionalen Nahrungsquelle und industriellen Rohstoff entwickelt ^1,2. In intensiv landwirtschaftlichen Regionen werden Doppelkultursysteme – bei denen jährlich zwei Kulturen aus demselben Land geerntet werden – zunehmend eingeführt, um Landäquivalente und wirtschaftliche Erträge zu maximieren³. Die Nachhaltigkeit dieser hochintensiven Systeme wird jedoch häufig durch ineffiziente Nährstoffmanagementstrategien beeinträchtigt, die die zeitliche Variabilität des Nährstoffbedarfs und saisonaler klimatischer Schwankungen übersehen ^4,5.

Die grundlegende Herausforderung beim Doppelsaisonanbau liegt in den unterschiedlichen meteorologischen Kontexten der Frühjahrs- und Herbstwachstumssaison⁶. Frühjahrskulturen entwickeln sich bei steigenden Temperaturen und Tageslängen, während Herbstkulturen mit allmählich abnehmender thermischer Energie und Sonnenstrahlung konfrontiert^{sind 7}. Diese Umweltunterschiede verändern den phänologischen Verlauf, die Biomassakkumulationsraten und die Effizienz der Quell-Senken-Translokation der Kultur^{erheblich 5,8}. Konventionelle Düngungspraktiken, die typischerweise eine starke basale Anwendung von Verbindungsdüngern gefolgt von unregelmäßigem Toppdressing beinhalten, führen häufig zu einer Diskrepanz^{zwischen Angebot und Nachfrage 2}. Diese Diskrepanz äußert sich entweder als Luxuskonsum in der frühen vegetativen Phase, was zu übermäßigem Rebenwachstum auf Kosten der Knollenbildung führt, oder als verborgener Hunger in der späten Bulking-Phase, in der vorzeitige Alterung das Endertragspotenzial^{um 2,9} begrenzt.

Das Management von Stickstoff (N) stellt aufgrund seiner doppelten physiologischen Effekte eine besondere Herausforderung in der Süßkartoffelproduktion^{dar 2}. Obwohl es für die Etablierung des Kronendachs und die Photosynthesekapazität unerlässlich ist, unterdrückt eine übermäßige Stickstoffverfügbarkeit vor der Knollenentnahme die Entwicklung der Speicherwurzeln erheblich, wodurch die Verteilung der Assimilates auf Laub statt auf unterirdische Speicherorgane verlagert^wird. Umgekehrt beschleunigt Stickstoffmangel in späten Wachstumsstadien die Blattalterung und verkürzt die effektive Photosyntheseperiode. Jüngste Metaanalysen zeigen, dass die Optimierung der Stickstoffzuwendungsrate und -zeitpunkte der einflussreichste Faktor zur Stabilisierung der Erträge in verschiedenen Bodentypen^ist.

Die Dynamik von Phosphor (P) und Kalium (K) stellt ebenso komplexe Managementanforderungen dar. Phosphor ist entscheidend für die Initiierung von Wurzelprimordien und Energieübertragungsprozesse, wird jedoch oft bei der Basisdüngung übermäßig aufgetragen, was zu Bodenansammlung und potenzieller Umweltabfluss^führt. Kalium, oft als Qualitätselement für Wurzelgemüse bezeichnet, wird während der Phase der schnellen Lagerung der Wurzelvergrößerung in erheblichen Mengen benötigt, um das Phloemladen und den Transport von Saccharose von den Blättern zu den Sinkorganen^{zu erleichtern. Ein} Kaliummangel während dieses kritischen Zeitfensters beeinträchtigt nicht nur den Gesamtertrag, sondern auch die kommerzielle Vermarktbarkeit der Knollen, was zu schlechtem Zustand und reduziertem Stärkegehalt^führt.

Um diese agronomischen Komplexitäten zu bewältigen, besteht ein dringender Bedarf an einer standardisierten, quantifizierbaren Methodik, die über die empirische Faustregel-Düngung hinausgeht. Präzisionslandwirtschaft erfordert Protokolle, die spezifische Managementmaßnahmen mit physiologischen Reaktionen verknüpfen. Jüngste Fortschritte bei der Modellierung von Nährstoffaufnahmetrajektorien mit nichtlinearen logistischen Funktionen haben neue Erkenntnisse in die zeitlichen Muster des Ernährungsbedarfs der Pflanzen geliefert¹⁹. Durch die Anpassung dieser Modelle an Felddaten können Forscher mathematisch den Beginn und das Ende schneller Aufnahmephasen bestimmen und so die genauen Fenster identifizieren, in denen die Düngungsintervention den höchsten marginalen Ertrag²⁰ ergibt.

Konkret gilt: Während traditionelle geteilte Anwendungen auf Kalendertagen angewiesen sind, bestimmt SPF die Befruchtungsereignisse anhand quantifizierbarer physiologischer Wendepunkte. Durch das Extrahieren von Parametern wie der maximalen Akkumulationsrate (R_max) und der Wendepunktzeit (t₀) aus den logistischen Modellen können Praktiker das genaue biologische Fenster für die Intervention bestimmen. Dies minimiert den Nährstoffüberschuss und verbindet zeitliche Anwendungsstrategien direkt mit einer verbesserten kommerziellen Qualität.

Dieser Artikel stellt ein Stepwise Precision Fertilization (SPF)-Protokoll vor, das darauf ausgelegt ist, die Nährstoffzufuhr mit dem physiologischen Rhythmus von Süßkartoffeln mit doppelten Saisons zu synchronisieren. Im Gegensatz zur statischen Düngung verwendet SPF eine dynamische Allokationsstrategie, die die Nährstoffe über fünf Schlüsselwachstumsstadien verteilt. Diese Methode integriert rigorose Probenahme- und Analyserahmen, um organspezifische Nährstoffaufteilungen und Ganzpflanzenakkumulationsbahnen zu quantifizieren. Ziel ist es, einen reproduzierbaren, wissenschaftlich robusten Arbeitsablauf bereitzustellen, der es Forschern und fortgeschrittenen Praktikern ermöglicht, die Nährstoffnutzungseffizienz zu optimieren, den kommerziellen Ertrag zu steigern und die Bodenfruchtbarkeit in intensiven Anbausystemen^{zu erhalten 21,22}.

Traditionelle Düngungsmodelle schätzen den Nährstoffgehalt oft mit statischen linearen Annahmen oder festen Kalendertagen, die grundlegend von unserem Ansatz abweichen. Solche konventionellen Methoden berücksichtigen nicht die dynamischen, nichtlinearen biologischen Rhythmen des Pflanzenwachstums und der Effizienzbeschränkungen der Nährstoffnutzung²³ . Folglich bleibt eine bedeutende Forschungslücke bestehen, indem die Nährstoffversorgung präzise mit tatsächlichen, zeitlich variablen physiologischen Anforderungen synchronisiert wird, insbesondere in Doppelsaisonsystemen, in denen Frühling und Herbst deutlich unterschiedliche meteorologische und entwicklungsbezogene Herausforderungen mit sich bringen²⁴. Unser Stepwise Precision Fertilization (SPF)-Protokoll adressiert diese Lücke, indem es das logistische Wachstumsmodell integriert, um die Nährstoffakkumulation dynamisch zu schätzen. Im Gegensatz zu statischen Methoden verwendet SPF quantifizierbare Wendepunkte, um zeitliche Verschiebungen der Nährstoffwerte zu verfolgen. Basierend auf dieser Methode geben wir eine entscheidende Empfehlung: Praktiker sollten von beliebigen Split-Anwendungen zu physiologisch gesteuerten Interventionen übergehen und die Nährstoffgewichte an bestimmten phänologischen Knoten dynamisch anpassen, um die saisonale Aufteilung zu optimieren und einen Umweltüberschuss^{von 25 zu} minimieren.

Konkret beruhen traditionelle Split-Anwendungen auf Kalendertagen, während SPF die Befruchtungsereignisse anhand quantifizierbarer physiologischer Wendepunkte bestimmt. Durch das Extrahieren von Parametern wie der maximalen Akkumulationsrate (R_max) und der Wendepunktzeit (t₀) aus den logistischen Modellen können Praktiker das genaue biologische Fenster für die Intervention bestimmen. Dies minimiert den Nährstoffüberschuss und verbindet zeitliche Anwendungsstrategien direkt mit einer verbesserten kommerziellen Qualität. Durch die Befolgung dieses Protokolls können Nutzer hochauflösende Datensätze erzeugen, die die mechanistischen Zusammenhänge zwischen Düngezeitpunkten, pflanzlichem Zustand und endgültigen agronomischen Ergebnissen aufzeigen.

Protocol

1. Vorbereitung und Design des Versuchsgeländes

1. Wählen Sie einen Versuchsstandort mit flachem Gelände, effizienter Entwässerung und homogener Bodenfruchtbarkeit, um die räumliche Heterogenität zu minimieren.
2. Sammeln Sie Bodenproben aus der obersten 0–20 cm großen Schicht mit einer Edelman-Schnecke. Nehmen Sie Proben von fünf zufälligen Punkten in jedem Parzelle und kombinieren Sie sie vor der Landvorbereitung für jede Wachstumssaison (Frühling und Herbst) zu einer einzigen Plastiktüte.
3. Lufttrocknen Sie die Bodenproben bei Raumtemperatur, mahlen Sie sie mechanisch und lassen Sie sie durch ein 2-mm-Edelstahlsieb laufen, um die physikalisch-chemischen Grundeigenschaften zu analysieren, einschließlich pH-Wert, organischer Substanz, Gesamtstickstoff, verfügbarem Phosphor (Olsen-P) und verfügbarem Kalium (NH4OAc-extraktierbares K).
4. Festlegen Sie ein randomisiertes Blockdesign für das Experiment mit mindestens vier Replikaten pro Behandlung. Setzen Sie vier Behandlungen fest: Konventionelle Befruchtung (CON), Schrittweise Präzisionsbefruchtung (SPF), Stickstofffokussiert (NF) und Kaliumverstärkt (KB). Halten Sie für Frühlings- und Herbstsaisons exakt die gleichen Plotzuweisungen bei, um potenzielle Legacy-Effekte zu berücksichtigen.
5. Grenzen Sie einzelne Parzellen mit einer Fläche von etwa 25 m^² ab (Pflanzdichte von 40.000 Pflanzen pro Hektar) und sorgen Sie für die Einbeziehung von Pufferreihen (mindestens 1 m Breite) zwischen den Parzellen, um Düngerkreuzkontamination und seitliche Wurzelwanderung zu verhindern.
6. Schließen Sie die äußeren beiden Reihen jeder Parzelle als Grenzreihen aus, um räumliche Verzerrung zu minimieren. Bestimmen Sie die nächsten 10 aufeinanderfolgenden Pflanzen strikt als destruktive Probenahmezone. Lassen Sie den verbleibenden zentralen Kern der Parzelle (mindestens 20 Pflanzen) vollständig unberührt als Erntezone, um sicherzustellen, dass die Probennahmen während der Saison weder die endgültige Pflanzendichte noch die Ertragsintegrität beeinträchtigen.

2. Berechnung und Umsetzung der stufenweisen Düngung

1. Bestimmen Sie die gesamte saisonale Zieldosis, indem Sie die Differenz zwischen dem Nährstoffbedarf für einen vordefinierten regionalen Zielertrag und der einheimischen Bodennährstoffversorgung berechnen. Zum Beispiel wurden bei einem Ziel-Speicher-Wurzelertrag von 35 t/ha die in dieser Studie angewandten absoluten Zielwerte 150 kg·ha^⁻1 für N, 75 kg·ha^⁻1 für P₂O⁵ und 225 kg·ha^⁻1 für K₂O.
2. Die gesamte Nährstoffzufuhr wird in fünf verschiedene Anwendungsereignisse aufgeteilt (m = 5), die den folgenden phänologischen Knoten entsprechen: Basalanwendung (beim Umpflanzen); Rankenexpansionsphase (diagnostiziert, wenn die schnelle Internode-Verlängerung beginnt und das Überleben des Setzlings stabilisiert ist); Knolleninitiierungsphase (diagnostiziert bei der ersten sichtbaren Schwellung der adventitiven Wurzeln in weiße Primordien); schnelle Bulking-Phase (diagnostiziert, wenn der Blätterdachverschluss ≥80 % erreicht und die Primärwurzeln rasch verdicken); späte Bulking-/Reifungsphase (diagnostiziert, wenn die Basalblätter frühzeitig physiologisch gelb werden).
3. Berechnen Sie die spezifische Dosierung für jede Anwendung mit der Verhältnisformel
   F_x,t = F_{x ×} R_t (1)
   Dabei ist F_x die gesamte saisonale Menge des Nährstoffs x und R_t das Allokationsverhältnis für das^t-te Ereignis.
   HINWEIS: Um eine physiologische Begründung zu liefern, muss frühes Luxus-N vermieden werden, um eine Tuberisationsunterdrückung zu verhindern, während K während der Befüllung aufrechterhalten werden muss, um die Stärketranslokation zu unterstützen. Die genauen _R-T-Anteile, die für den SPF in den fünf Stadien empfohlen werden, sind: Basal (N: 20 %, P: 50 %, K: 10 %, K: 10 %), Rankenausdehnung (N: 20 %, K: 20 %, P: 20 %), Schnelles Bulking (N: 30 %, P: 10 %, K: 40 %) und Reifung (N: 10 %, P: 0 %, K: 20 %).
4. Wiegen Sie die genaue Düngermenge für jedes Parzelle einzeln mit einem präzisen elektronischen Gewicht.
5. Tragen Sie den Dünger auf.
   1. Für die Furchenanwendung: Öffnen Sie einen flachen Graben (10 cm tief) entlang der Gratseite, verteilen Sie den Dünger gleichmäßig und decken Sie sofort mit Erde ab.
   2. Für Tropffertigungssysteme: Lösen Sie den berechneten Dünger vollständig auf eine maximale Konzentration von 2 g/L auf, um eine Verstopfung des Emitters zu verhindern. Injizieren Sie die Lösung mit einem standardisierten Volumen von 150 L pro Stück. Lassen Sie das System vor und nach der Injektion 15 Minuten mit reinem Wasser laufen, um die Leitungen zu spülen, wodurch Versalzung vermieden und eine gleichmäßige räumliche Verteilung gewährleistet wird.
6. Notieren Sie das genaue Datum, die meteorologischen Bedingungen und den Bodenfeuchtigkeitsstatus zum Zeitpunkt jeder Anwendung.

3. Destruktive Probenahme und Organpartitionierung

1. Plane acht Probenahmezeitpunkte pro Saison ein, um den gesamten Wachstumspfad zu erfassen: Setzlingsüberleben, Rankenverlängerung, Kronenschließung, Knolleninitiierung, frühes Bulking, mittleres Bulking, spätes Bulking und Vorernte.
2. Mit einer stratifizierten Zufallsprobenmethode werden drei Pflanzen ausschließlich aus der 10-Pflanzen-Destruktiv-Stichprobenzone ausgewählt und dabei die Grenzreihen kontinuierlich umgangen.
3. Graben Sie die gesamte Pflanze sorgfältig aus und lockern Sie mit einer Spate den Boden in einem Radius von etwa 30 cm, um das feine Wurzelsystem und die kleinen, sich entwickelnden Knollen zu erhalten.
4. Waschen Sie die geernteten Pflanzen mit Leitungswasser, um alle haftenden Erde und Ablagerungen zu entfernen.
5. Trennen Sie die Pflanze sofort in vier unterschiedliche Organfraktionen: Blätter (einschließlich Klingen), Blattstiele, Stängel (Ranken) und Aufbewahrungswurzeln (Knollen).
   HINWEIS: Trennen Sie feine faserige Wurzeln von Aufbewahrungswurzeln basierend auf dem Durchmesser (>5 mm für Aufbewahrungswurzeln).
6. Wiegen Sie die frische Masse jeder Organfraktion sofort, um Feuchtigkeitsverlust zu vermeiden.
7. Schneiden Sie die Stiel- und Knollenproben in kleine (<1 cm) große Würfel, um das gleichmäßige Trocknen zu erleichtern; Blätter und Blattstiele intakt, aber getrennt lassen.
8. Lege jede Organprobe in eine beschriftete Papiertüte.

4. Bestimmung der Trockensubstanz und chemische Analyse

1. Stellen Sie die Probenbeutel in einen Zwangsluftofen.
2. Enzyme deaktivieren, indem man sie 30 Minuten bei 105 °C erhitzt.
3. Reduzieren Sie die Temperatur auf 75 °C und trocknen Sie die Proben, bis ein konstantes Gewicht erreicht ist (typischerweise 48–72 Stunden).
4. Wiegen Sie die Trockenproben, um die Trockensubstanzansammlung (DMA) für jedes Organ zu bestimmen.
5. Mahlen Sie die getrockneten Proben mit einer Edelstahlmühle und lassen Sie das Pulver durch ein 0,25-mm-Sieb laufen.
6. Verdauen Sie 0,2 g der pulverisierten Proben mit einer 5:1 (v/v)-Mischung aus konzentrierter Schwefelsäure (H₂SO₄) und 30 % Wasserstoffperoxid (H₂O₂) bei 350 °C zur Nährstoffgewinnung.
7. Analyse des Verdauungs auf Gesamtstickstoff mit der Kjeldahl-Methode oder einem automatisierten Elementaranalysator; Gesamtphosphor mit der Vanadium-Molybdat-gelben kolorimetrischen Methode; Gesamtkalium mittels Flammenphotometrie.
8. Berechnen Sie die Nährstoffansammlung ($NA$, kg·^ha-1) mit folgender Formel:
   NA = (2)

5. Datenanalyse und Modellanpassung

1. Berechnen Sie den Harvest Index (HI) und den Root Partitioning Coefficient, um die Biomassezuweisung an wirtschaftliche Organe zu quantifizieren.
2. Passen Sie die Daten zur Nährstoffakkumulation der gesamten Pflanze und der Speicherwurzel mit der logistischen Wachstumsgleichung mithilfe der nichtlinearen kleinsten Quadrat-Funktion ('nls') in R-Software an:
   Y = (3)
   Dabei ist Y die Akkumulation, A die maximale theoretische Akkumulation, k der Wachstumsratskoeffizient und t₀ die Wendepunktzeit.
3. Leite programmatisch Sekundärparameter ab: Dauer der schnellen Phase (T_schnell) und die maximale Rate (R_max) mit den abgeleiteten Formeln: t₁₀ = t₀ – ; t₁₀ = t₀ + ; T_schnell = t₉₀ – t¹⁰; R_max = 
4. Berechnen Sie die scheinbare Nährstoffbilanz (B) für jede Parzelle, wobei die 'Gesamternteentfernung' streng als die dauerhaft vom Feld aus dem Feld exportierte Nährstoffmasse über die geernteten kommerziellen und nicht-kommerziellen Lagerwurzeln (ohne Reben, die im Feld zurückbleiben) exportiert wird:
   B = Gesamteinsatz – Gesamte Ernteentfernung (4)
   HINWEIS: "Totale Ernteentfernung" ist streng definiert als die gesamte Nährstoffmasse, die dauerhaft über kommerzielle und nicht-kommerzielle Lagerwurzeln vom Feld exportiert wird. Oberirdische Triebe, die als Ernterückstände im Feld zurückbleiben, sind bei der Entfernungsberechnung ausgeschlossen.
5. Führen Sie statistische Analysen mit einem Linear Mixed-Effects Model (LMM) in R (z. B. 'lme4'-Paket) durch, um die beiden Faktoren (Behandlung × Saison) und wiederholte Messungen über die Zeit (8 Sammlungen) zu berücksichtigen, wobei 'Behandlung' und 'Saison' als feste Effekte und 'Plot' als Zufallseffekt definiert werden.

Results

Grundbodeneigenschaften und saisonale Schwankungen

Tabelle 1 zeigt die physikochemischen Eigenschaften des Oberbodens (0–20 cm), die vor der Umpflanzung sowohl im Frühjahr als auch im Herbst bestimmt wurden. Die Analyse zeigt, dass grundlegende Bodeneigenschaften, darunter pH-Wert (gehalten in einem schwach saueren Bereich von 6,38–6,42), organischer Stoffgehalt und Volumendichte, zwischen den beiden Jahreszeiten statistisch s...

Discussion

Die Implementierung des Stepwise Precision Fertilization (SPF)-Protokolls zeigt, dass die Ertragsbildung in Süßkartoffelsystemen mit doppelter Saison stark von der Synchronisation der Nährstoffzufuhr mit dem physiologischen Bedarf der Ernte^{abhängt 26,27}. Die Ergebnisse bestätigen, dass der Versorgungsrhythmus ebenso kritisch ist wie die Gesamtdosis. Durch die Anwendung des schrittweisen Protokolls haben wir effektiv den gemeinsam...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Analytisches Sieb (0,25 mm)	Retsch	AS200	Partikelgrößenstandardisierung
Calciumsuperphosphat	Sinofert Holding Co., Ltd. (China)	≥ 12 % P2O5	Phosphorquelle
Verbindungsdünger (N– P2O5– K2O)	Sinofert Holding Co., Ltd. (China)	Individuelle Formulierung	Verwendet für die stufenweise präzise Düngung
Verdauungsblocksystem	Gerhardt	Kjeldatherm	Säureverdauung von Pflanzenmaterial
Tröpfchenbewässerungs- und Fertigisationssystem	Netafim	Standard-Agrarsystem	Optionale Fertigationsbehandlung
Trocknungsofen (Zwangsluft)	Memmert	UF110	Probentrocknung bei 75 %; 105 & Grad; C
Elektronische Waage	Mettler Toledo	MS204S	Verwendet für präzises Wiegen von Düngermitteln
Flammenphotometer	Sherwood Scientific	Modell 420	Kaliumbestimmung
Kjeldahl-Stickstoffanalysator	Foss	Kjeltec 8400	Bestimmung des Gesamtstickstoffs
Papierprobenbeutel	Whatman	Klasse 1	Trocknung und Lagerung von Pflanzenproben
Kaliumsulfat	Sinofert Holding Co., Ltd. (China)	≥ 50 % K2O	Kaliumquelle für die Bulking-Phase
Bodenbohrer	Eijkelkamp	Edelman-Schnecke	Bodenprobenentnahme (0– 20 cm Tiefe)
Spaten und Handwerkzeuge	Lokaler landwirtschaftlicher Zulieferer	—	Zerstörerische Probenahme ganzer Pflanzen
Edelstahlmühle	Retsch	ZM200	Mahlen getrockneter Pflanzenproben
Statistische Analysesoftware	R-Stiftung	R-Version 4.3.0	Logistische Modellanpassung und ANOVA
Süßkartoffelpflanzmaterial (Ipomoea batatas L.)	Lokaler zertifizierter Saatgutlieferant	—	Einheitliche Sorte für Doppelsaison-Feldexperimente
Harnstoff (N-Dünger)	Sinofert Holding Co., Ltd. (China)	≥ 46% N	Stickstoffquelle für Split-Anwendung
UV– Vis-Spektrophotometer	Shimadzu	UV-1800	Phosphorkolorimetrische Analyse