Alle Tierversuche wurden gemäß den institutionellen Richtlinien für die Haltung und Verwendung von Labortieren durchgeführt und von dem Tierversuchsausschuss der Anhui University of Chinese Medicine genehmigt (Genehmigungsnummer: AHUCM-rabbits-2023195). Die in diesem Protokoll verwendeten Reagenzien, Chemikalien, Software und Geräte sind in der Tabelle der Materialien aufgelistet.
1. Experimentelle Tiere und Gruppierung
Fünfzig gesunde erwachsene männliche Neuseeland-Weiße-Kaninchen (6 Monate alt, 2,0–2,5 kg schwer) wurden von der Zuchtfarm Laifu im Bezirk Pukou in Nanjing bezogen (Genehmigungsnummer für die Tierzucht: SCXK (Su) 2024-0007). Alle Tiere durchliefen eine einwöchige Akklimatisierungsphase mit Fütterung vor Beginn des Experiments. Als einheitliche prozedurale Konvention wurde das rechte Knie zur Schwellungsbeurteilung bestimmt und das linke Knie zur Gewinnung von Knorpelgewebe, und zwar nicht basierend auf einer spezifischen experimentellen Hypothese. Nach der Akklimatisierung wurden die Kaninchen zufällig fünf Gruppen zugewiesen (n = 10 pro Gruppe): eine Kontrollgruppe, die weder einer Modellierung noch einer Behandlung unterzogen wurde; eine KOA-Modellgruppe, bei der KOA nach der modifizierten Videman-Methode induziert wurde; eine Celecoxib-Gruppe, bei der die medikamentöse Behandlung sechs Wochen nach der Modellierung begann; eine Akupotomie-Gruppe, bei der die Akupotomie-Behandlung sechs Wochen nach der Modellierung begann; sowie eine Schein-Akupotomie-Gruppe, bei der eine Nadeleinführung ohne Schneiden oder Lösen sechs Wochen nach der Modellierung begann.
2. Erstellung des KOA-Modells
Alle Kaninchen außer den Tieren der Kontrollgruppe wurden einer modifizierten Videman-Prozedur unterzogen, um KOA zu induzieren. Die Tiere wurden vor der Operation 12 Stunden lang nüchtern gehalten. Die Anästhesie wurde durch intravenöse Gabe von 3 % Natriumpentobarbital in einer Dosis von 30 mg/kg über die Randvene des Ohres eingeleitet. Nach routinemäßiger Vorbereitung des Operationsgebiets, Desinfektion und steriler Abdeckung wurde ein longitudinaler Schnitt entlang der medialen Seite des Kniegelenks angelegt. Die mediale Seitenbandstruktur und das vordere Kreuzband wurden nacheinander durchtrennt, und der mediale Meniskus wurde vollständig entfernt. Anschließend wurde die Wunde schichtweise verschlossen.
Um das Risiko einer postoperativen Infektion zu verringern, wurde Penicillin drei aufeinanderfolgende Tage lang intramuskulär in einer Dosis von 40.000 U/kg/Tag verabreicht. Nach der Operation wurden die Kaninchen in ihre Käfige zurückgebracht und konnten sich uneingeschränkt bewegen, ohne dass das Gelenk immobilisiert wurde.
3. Schein-Akupotomie-Behandlung
Sechs Wochen nach der KOA-Modellierung erhielten die Kaninchen der Schein-Akupotomie-Gruppe dieselben Abtast- und Punktmarkierungsverfahren wie bei der aktiven Akupotomie-Behandlung. Eine sterile Einweg-Akupotomie-Nadel mit den Maßen 0,35 mm × 25 mm wurde an jedem markierten Punkt senkrecht durch die Haut bis in das subkutane Gewebe eingeführt. Es wurden keine Schnitt-, Lockerungs-, Querbewegungs- oder sonstigen mechanischen Freisetzungsmanöver durchgeführt. Die Nadel wurde unmittelbar nach der Einführung ohne Gewebemanipulation wieder entfernt. Die Scheinbehandlung wurde einmal wöchentlich über vier aufeinanderfolgende Wochen verabreicht.
4. Akupotomie-Behandlung
Sechs Wochen nach der KOA-Modellierung wurden die Kaninchen der Akupotomie-Gruppe auf einem Behandlungstisch fixiert. Die periartikulären Gewebe um das betroffene Knie wurden abgetastet, insbesondere um die Patella sowie die mediale und laterale Gelenkspalte, um strangförmige Strukturen oder harte Knoten zu identifizieren. Vier bis sechs Behandlungspunkte wurden entsprechend den Befunden der Palpation ausgewählt und auf der Haut markiert.
Der Behandlungsbereich wurde rasiert und mittels routinemäßiger steriler Verfahren desinfiziert. Eine sterile Einweg-Akupotomie-Nadel mit den Maßen 0,35 mm × 25 mm wurde langsam und senkrecht an jedem markierten Punkt eingeführt, bis die Knochenoberfläche erreicht war. Der Eingriff erfolgte gemäß der vierstufigen Akupotomie-Technik. Zuerst wurde eine longitudinale Freilegung durchgeführt, gefolgt von einer transversalen Trennung. Bei einem harten Knoten wurde dieser so lange incidiert, bis eine deutliche Freigabeempfindung über die Nadelklinge wahrgenommen wurde. Nach Abschluss des Eingriffs wurde die Nadel zurückgezogen, jede Einstichstelle kurz mit steriler Gaze komprimiert und mit einem adhäsiven Pflaster abgedeckt. Die Behandlung wurde einmal wöchentlich über vier aufeinanderfolgende Wochen verabreicht.
5. Medikamentöse Behandlung
Sechs Wochen nach der KOA-Modellierung erhielten die Kaninchen der Celecoxib-Gruppe täglich über vier aufeinanderfolgende Wochen hinweg eine Celecoxib-Suspension in einer Dosis von 24 mg/kg Körpergewicht per orale Gavage. Die Suspension wurde täglich frisch in physiologischer Kochsalzlösung hergestellt. Angaben zu Lieferant und Katalognummer finden sich in der Materialtabelle.
6. Beurteilung der Schwellung des Kniegelenks
Am Ende der Interventionsphase, entsprechend 10 Wochen nach der KOA-Modellierung, wurde die Schwellung des Kniegelenks beurteilt. Ein weicher Seidenfaden wurde um den am stärksten geschwollenen Bereich des rechten Kniegelenks gewickelt, typischerweise auf Höhe des Tibiakondylus. Der Faden wurde entfernt und mit einem Lineal auf den nächsten Millimeter genau gemessen, und die erfasste Länge wurde als Kniefußumfang definiert.
Das relative Quellverhältnis wurde mit der folgenden Gleichung berechnet:

7. Probenentnahme
Am Ende der Interventionsphase wurden die Kaninchen durch intravenöse Gabe von 3 % Natriumpentobarbital in einer Dosis von 30 mg/kg über die Randvene des Ohres anästhesiert. Das linke Kniegelenk wurde mit einer Skalpellklinge Nr. 23 eröffnet, um die Gelenkflächen des Tibiakondyls und der Femurkondylen freizulegen. Gelenkknorpelgewebe wurde aus diesen Bereichen entnommen.
Jede Knorpelprobe wurde in zwei Teile geteilt. Ein Teil wurde in 4 % Paraformaldehyd zur histopathologischen Untersuchung fixiert. Der zweite Teil wurde in kryogene Röhrchen gegeben, schnell in flüssigem Stickstoff eingefroren und bei −80 °C gelagert, bis molekularbiologische Analysen durchgeführt wurden. Unmittelbar nach Abschluss aller Gewebeentnahmeverfahren wurden die Kaninchen durch eine Luftembolie mittels schneller intravenöser Injektion von Luft über die Randohrvene euthanasiert.
Die histologische Färbung sowie die Mankin- und Moran-Bewertung wurden mit Knorpelproben von jeweils allen 10 Kaninchen pro Gruppe (n = 10) durchgeführt. Repräsentative Bilder der Hämatoxylin- und Eosin- sowie der Safranin-O–Fast-Grün-Färbung wurden von jeweils drei zufällig ausgewählten Kaninchen pro Gruppe ausgewählt. Die Immunhistochemie und die Western-Blot-Analyse wurden mit Proben von jeweils drei zufällig ausgewählten Kaninchen pro Gruppe (n = 3) durchgeführt. Die quantitative reversetranskriptionsbedingte Polymerase-Kettenreaktion und der enzymgekoppelte Immunosorbens-Assay wurden mit Proben von jeweils sechs zufällig ausgewählten Kaninchen pro Gruppe (n = 6) durchgeführt. Alle Teilauswahlen erfolgten zufällig, ohne vorherige Kenntnis der Gruppenzuordnungen.
8. Hämatoxylin- und Eosin-Färbung
Das in 4 % Paraformaldehyd fixierte Knorpelgewebe wurde zur Entkalkung 4–6 Wochen lang in einer 10%igen Ethylendiamintetraessigsäure-(EDTA-)Lösung mit einem pH-Wert von 7,4 inkubiert. Die Entkalkungslösung wurde alle 3 Tage erneuert. Nach Bestätigung der vollständigen Entkalkung durch Nadeleinstich wurde das Gewebe über eine abgestufte Ethanolreihe (70 %, 80 %, 90 %, 95 % und 100 %) dehydriert, in Xylol geklärt und in Paraffin eingebettet. Das eingebettete Gewebe wurde mit einem Mikrotom in 5 µm dicke Schnitte zerlegt, die anschließend auf Objektträger aufgebracht wurden.
Für die Hämatoxylin- und Eosin-Färbung wurden die Schnitte 60 min bei 60 °C erhitzt, dreimal für jeweils 5 min in Xylol entparaffiniert und nacheinander in 100 %, 95 %, 80 % und 70 % Ethanol sowie anschließend in destilliertem Wasser rehydriert. Die Schnitte wurden 5 min mit Hämatoxylin gefärbt, 10 min unter fließendem Leitungswasser gespült, 2–3 s in 1 % Salzsäure, hergestellt in 70 % Ethanol, differenziert und erneut mit destilliertem Wasser gespült. Anschließend wurden die Schnitte 2 min mit Eosin gefärbt, mit destilliertem Wasser gespült, durch 70 %, 80 %, 90 %, 95 % und 100 % Ethanol dehydriert, in Xylol geklärt und mit neutralem Harz eingedeckt. Die Knorpelmorphologie wurde untersucht, und repräsentative Bilder wurden mit einem Lichtmikroskop aufgenommen.
9. Safranin-O-Fast-Green-Färbung
Paraffin-eingebettete Knorpelschnitte wurden wie in Abschnitt 8 beschrieben deparaffinisiert und rehydriert. Die Schnitte wurden 5 min mit Weigert-Eisenhämatoxylinfärbung angefärbt und mit destilliertem Wasser gespült. Anschließend wurden die Schnitte 3 min mit einer 0,05 %igen Fast-Green-Lösung gefärbt, kurz 10–15 s in 1 %iger Essigsäure gespült und danach 5 min mit einer 0,1 %igen Safranin-O-Lösung gefärbt.
Nach der Färbung wurden die Schnitte schnell in 95 % und 100 % Ethanol dehydriert, in Xylol geklärt und mit neutralem Harz eingebettet. Die gefärbten Schnitte wurden mit einem Lichtmikroskop untersucht. Die Safranin-O-Färbungsintensität, die den Proteoglykangehalt widerspiegelt, wurde semiquantitativ mithilfe einer Bildanalyse-Software analysiert.
10. Histologische Bewertung
Zwei Pathologen, die hinsichtlich der experimentellen Gruppenzugehörigkeit verblindet waren, bewerteten die gefärbten Schnitte unabhängig voneinander anhand der Mankin- und Moran-Bewertungssysteme, um das Ausmaß der Knorpeldegeneration zu beurteilen. Vor der Bewertung erhielten alle Schnitte zufällige Identifikationscodes. Die Behandlungszuordnungen wurden den Pathologen erst mitgeteilt, nachdem die gesamte Bewertung abgeschlossen war23.
11. Enzymgekoppelter Immunosorbens-Assay
Gefrorenes Knorpelgewebe wurde gewogen, mit Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung bei pH 7,4 versetzt und gründlich auf Eis homogenisiert. Das Homogenat wurde bei 3.000 × g für 20 min bei 4 °C zentrifugiert, und der Überstand wurde zur Analyse gesammelt. Die Konzentrationen von Interleukin-1β (IL-1β), Tumor-Nekrose-Faktor-α (TNF-α) und Interleukin-6 (IL-6) im Gewebeüberstand wurden mithilfe spezifischer enzymgekoppelter Immunosorbens-Assay-Kits für Kaninchen gemäß den Herstelleranweisungen bestimmt.
12. Quantitative Reverse-Transkriptions-Polymerase-Kettenreaktion
Gesamtes RNA wurde aus Knorpelgewebe mittels einer auf Phenol-Chloroform basierenden Methode extrahiert. Kurz gesagt, wurde das Gewebe in einem RNA-Extraktionsreagenz lysiert, und Chloroform wurde hinzugefügt, um die wässrige und die organische Phase zu trennen. Die wässrige Phase wurde gesammelt, und die RNA wurde mit Isopropanol präzipitiert, mit 75%igem Ethanol gewaschen, luftgetrocknet und in mit Diethylpyrocarbonat behandeltem Wasser gelöst. Die RNA-Konzentration und -reinheit wurden mithilfe eines Spektrophotometers gemessen.
Vor der reversen Transkription wurde genomische Rest-DNA mit einem Reagenz zur Eliminierung genomischer DNA entfernt. Die komplementäre DNA wurde anschließend mit einem Reverse-Transkriptionskit gemäß den Herstelleranweisungen synthetisiert. Die quantitative Polymerase-Kettenreaktion wurde mittels einer SYBR-Green-basierten Detektionsmethode auf einem Echtzeit-Polymerase-Kettenreaktionssystem durchgeführt. Die Zyklenbedingungen waren wie folgt: eine initiale Denaturierung bei 95 °C für 1 min, gefolgt von 40 Zyklen mit Denaturierung bei 95 °C für 20 s und Annealing sowie Extension bei 60 °C für 1 min. Eine Schmelzkurvenanalyse wurde durchgeführt, um die Spezifität der Amplifikation zu überprüfen.
Die Expressionslevel von Matrix-Metalloprotease-3 (MMP-3), Matrix-Metalloprotease-13 (MMP-13), SRY-Box-Transkriptionsfaktor 9 (SOX9), Aggrecan, RIC8A und circPDE4B wurden gemessen. β-Aktin wurde als internes Referenzgen verwendet. Die relative Expression wurde nach der 2-ΔΔCt-Methode berechnet. Die Primersequenzen sind in Tabelle 1.
13. Western-Blot-Analyse
Knorpelgewebe wurde in Radioimmunpräzipitationspuffer, ergänzt mit Phenylmethylsulfonylfluorid, lysiert. Der Lysat wurde bei 12.000 × g für 15 min bei 4 °C zentrifugiert, und das Überstand wurde als Gesamtproteinfraction gesammelt. Die Proteinmenge wurde mittels einer Bicinchoninsäure-Analyse bestimmt.
Gleiche Mengen an Protein (30 µg pro Lane) wurden mittels 10%iger Natrium-Dodecylsulfat-Polyacrylamid-Gelelektrophorese getrennt und auf Polyvinylidenfluorid-Membranen übertragen, die zuvor in Methanol präaktiviert worden waren. Die Übertragung erfolgte bei 300 mA und 4 °C. Die Übertragungszeiten betrugen: Aggrecan (250 kDa) 90 min; MMP-3 (60 kDa), RIC8A (59 kDa), SOX9 (56 kDa) und MMP-13 (52 kDa) jeweils 50 min; sowie p38 MAPK (41 kDa) und GAPDH (36 kDa) jeweils 40 min. Die Membranen wurden mit 5%iger fettfreier Trockenmilch in Tris-gepufferter Salzlösung mit Tween 20 für 2 h bei Raumtemperatur blockiert. Anschließend wurden die Membranen über Nacht bei 4 °C mit primären Antikörpern gegen MMP-3 (1:2.000), MMP-13 (1:1.000), SOX9 (1:1.000), Aggrecan (1:1.000), RIC8A (1:1.500), phosphoryliertes p38 MAPK (1:1.000) und gesamtes p38 MAPK (1:2.000) inkubiert. GAPDH (1:2.000) diente als Ladekontrolle. Nach dreimaligem Waschen mit Tris-gepufferter Salzlösung mit Tween 20 (jeweils 10 min) wurden die Membranen 1,2 h bei Raumtemperatur mit mit Peroxidase konjugierten sekundären Antikörpern (1:20.000) inkubiert. Nach drei weiteren Waschschritten wurden die Proteinbanden mittels eines verbesserten chemilumineszenten Substrats sichtbar gemacht und mit einem Gel-Dokumentationssystem aufgezeichnet. Die Bandenintensitäten wurden mit der ImageJ-Software quantifiziert und auf GAPDH normalisiert.
14. Immunhistochemie
Paraffin-eingebettete Knorpelschnitte wurden entparaffiniert und durch eine abgestufte Ethanolreihe rehydriert (drei Wechsel von Xylol, jeweils 5 min; gefolgt von 100 %, 95 % und 80 % Ethanol, jeweils 3 min). Die Antigen-Retrieval-Behandlung erfolgte durch Erhitzen der Schnitte in EDTA-Puffer (pH 9,0) in einem Schnellkochtopf. Der Puffer wurde zum Sieden gebracht, und nach dem Aufbau von Druck wurde die Retrievierung 2 min lang fortgesetzt, gefolgt von einer Abkühlung auf Raumtemperatur. Die endogene Peroxidase-Aktivität wurde mit 3 % Wasserstoffperoxid 10 min bei Raumtemperatur blockiert. Nach dem Waschen wurde unspezifische Bindung mit Ziegen-Serum 20 min bei Raumtemperatur im Dunkeln blockiert.
Die Schnitte wurden 60 Minuten bei 37 °C mit primären Antikörpern gegen phosphoryliertes p38 MAPK (1:800) und phosphorylierten nukleären Faktor kappa B (NF-κB) (1:300) inkubiert. Nach dreimaligem Waschen mit Phosphat-gepufferter Salzlösung, die Tween 20 enthielt, wurden die Schnitte 30 Minuten bei 37 °C mit den entsprechenden mit Peroxidase konjugierten sekundären Antikörpern inkubiert. Nach drei weiteren Waschschritten erfolgte die Farbentwicklung mit Diaminobenzidin (mikroskopisch kontrolliert), gefolgt von einer Kontrastfärbung mit Hämatoxilin (2 min), Differenzierung in 1%iger Salzsäure in 70%igem Ethanol und Blaufärbung in Lithiumcarbonatlösung (30 s). Anschließend wurden die Schnitte dehydriert, geklärt, eingebettet und mit einem Lichtmikroskop untersucht. Die Färbung wurde mittels ImageJ-Software ausgewertet, und die integrierte optische Dichte zur semiquantitativen Analyse berechnet.
15. Statistische Analyse
Die Daten werden als Mittelwert ± SEM angegeben. Der Vergleich zwischen mehreren Gruppen erfolgte mittels einfaktorieller Varianzanalyse, gefolgt von Tukey’s post-hoc-Test. Ein Wert von P < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.