Alle Verfahren wurden vom Tierethikkomitee der Changchun University of Chinese Medicine (Genehmigungsnr. 20251038) genehmigt und gemäß den Richtlinien Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments (ARRIVE 2.0) sowie dem NIH-Leitfaden für die Pflege und Nutzung von Labortieren durchgeführt. Alle in dieser Studie verwendeten Materialien sind in der Materialtabelle dargestellt.
Experimentelle Verfahren
Versuchstiere und Gruppierung
Achtzig spezifische pathogenfreie (SPF) erwachsene männliche Sprague–Dawley-Ratten (220–250 g) wurden von der Hongda Animal Breeding Farm (Bezirk Kuancheng, Changchun, China) gekauft. Die Tiere wurden im Versuchstierzentrum der Changchun University of Chinese Medicine unter kontrollierten Bedingungen von 22–25 °C, 50–60 % relativer Luftfeuchtigkeit und einem 12-Stunden-Hell/Dunkel-Zyklus untergebracht, mit freiem Zugang zu Futter und Wasser. Nach einer Woche der Akklimatisierung wurden die Ratten zufällig einer leeren Gruppe (n = 12), einer Sham-Gruppe (n = 12) und einer Modell-Reserve-Gruppe (n = 56) zugeteilt. Die Blankgruppe wurde als normale, unbehandelte Kontrollgruppe einbezogen, um Ausgangswerte für Verhaltensleistung, histopathologische Merkmale und molekulare Markerexpression bei gesunden Ratten bereitzustellen. Die Sham-Gruppe unterzog sich der gleichen Anästhesie und der operativen Exposition wie die MCAO-Gruppe, mit dem Unterschied, dass keine arterielle Okklusion durchgeführt wurde; Daher diente diese Gruppe als Kontrollgruppe für die möglichen Auswirkungen von Anästhesie und chirurgischer Manipulation. Die Aufnahme sowohl der Blank- als auch der Sham-Gruppe ermöglichte es, die Auswirkungen ischämischer Verletzungen von denen des chirurgischen Eingriffs selbst zu unterscheiden.
Die Modellreservegruppe wurde einer MCAO-Modellierung unterzogen. Die ersten drei Tage nach der Operation wurden als Modell-Induktionsperiode definiert. In diesem Zeitraum starben 8 von 56 Ratten, was einer Sterblichkeitsrate von 14,29 % entspricht, und 12 Ratten wurden ausgeschlossen, da die Modellierung erfolglos war. Die übrigen 36 Ratten mit erfolgreicher Modellbildung wurden zufällig mit einer Zufallszahlentabelle den MCAO-, SAE- und Baclofen-Gruppen zugeteilt, wobei jede Gruppe 12 Ratten umfasste. Die Gruppeninterventionen waren wie folgt: (I) Leere Gruppe: nur routinemäßige Fütterung, ohne Intervention. (II) Sham-Gruppe: chirurgische Exposition der Arterie Halsschlagader gemeinsam, der inneren und externen Halsschlagader sowie des Vagusnervs, ohne Ligation oder Filamenteinführung. (III) MCAO-Gruppe: MCAO wurde unter intraperitonealer Anästhesie mit 3 % Natriumpentobarbital etabliert, ohne weitere Behandlung. (IV) SAE-Gruppe: Nach erfolgreicher MCAO-Modellierung und Validierung erhielten die Ratten eine Kopfhautakupunktur in Kombination mit Bewegung. Eine Isofluran-Inhalationsanästhesie mit 1,5–2,0 % wurde nur während der kurzen Nadeleinführungsphase verwendet. Das Laufbandtraining begann erst nach vollständiger Bewusstseinsgewinnung und Wiedererholung der spontanen Gehfähigkeit. Akupunktur wurde bei GV20 und bilateral EX-HN1 durchgeführt. Die Nadeln wurden bis zu einer Tiefe von 1 mm eingeführt und während der Laufband-Trainingsphase beibehalten. Die standardisierte 30-minütige Nadelfesthalte-/Trainingsphase wurde als Laufbandtrainingsphase definiert und bestand aus 6 m/min für 10 Minuten, gefolgt von 12 m/min für 20 Minuten bei 0° Steigung. Die Intervention wurde einmal täglich an 7 aufeinanderfolgenden Tagen durchgeführt. (V) Baclofen-Gruppe: Nach erfolgreicher MCAO-Modellierung und Validierung erhielten Ratten Baclofen durch intragastrische Gavage mit 0,4 mg/kg einmal täglich für 7 aufeinanderfolgende Tage.
Etablierung des MCAO-Modells
Das Ratten-MCAO-Modell wurde mit einer modifizierten intraluminalen Filamentmethode19 entwickelt. Nach 12 Stunden Fasten und Wassermangel wurden die Ratten durch eine intraperitoneale Injektion von 3 % Natriumpentobarbital betäubt und in die Rückenposition gebracht. Nach der Hautdesinfektion wurde ein Mittellinien-Halswirbelschnitt angefertigt, um die rechte Arteria common carotis (CCA) sowie angrenzende Nerven und Muskeln freizulegen. Die äußere Halsschlagader (ECA) wurde identifiziert und ligiert, und die interne Halsschlagader (ICA) isoliert. Ligaturen wurden an der proximalen ICA und CCA angebracht, und die distale CCA wurde vorübergehend geklemmt. Anschließend wurde im CCA proximal zur Klemme eine kleine Arteriotomie durchgeführt. Ein 0,26 mm dicker Nylonfaden wurde eingesetzt und 18–20 mm durch die ICA geführt, um den Ursprung der mittleren Großhirnarterie zu verschließen. ICA und CCA wurden anschließend ligiert und der Schnitt genäht. Nach der Operation wurden die Ratten während der Genesung warm gehalten und erhielten eine intraperitoneale Injektion von Penicillin (40.000 U), um eine Infektion zu verhindern. In der Sham-Gruppe wurde nur eine vaskuläre Exposition durchgeführt, ohne Filamentinsertion; Wundverschluss und postoperative Versorgung waren identisch mit denen der MCAO-Gruppe. Die erfolgreiche Modellentwicklung wurde definiert als ein Zea-Longa-Wert ≥ 2 3 Tage nach derOperation 19 und ein modifizierter Ashworth-Skala (MAS) Muskeltonuswert ≥ Grad 120.
Interventionsmethoden
Kopfhautakupunktur kombiniert mit Bewegungsintervention
Frühere Studien zeigen, dass bei MCAO-Ratten die neurologischen Defizite am dritten Tag ihren Höhepunkt erreichen und innerhalb von 10 Tagen nach der Operation erhöht bleiben, während der periphere Muskelwiderstand von Tag 6 bis Tag921 progressiv zunimmt. Daher wurde die Behandlung am postoperativen Tag 3 eingeleitet und wurde einmal täglich über 7 aufeinanderfolgende Tage fortgesetzt, um die Auswirkungen der spontanen Genesung zu minimieren. Vor der Modellierung durchliefen die Ratten, die der SAE-Gruppe zugeteilt waren, drei Tage adaptives Laufbandtraining mit 5 m/min für 10 Minutenpro Tag 22 Minuten. Dieses adaptive Training wurde genutzt, um Ratten mit dem Laufbandlaufen vertraut zu machen und die Wahrscheinlichkeit von Kämpfen, Fallen, Laufweigerung oder Stopp während der formellen Interventionsphase zu verringern. Während des adaptiven Trainings und der formalen Intervention wurden abnormale laufbandbezogene Ereignisse als anhaltendes Kämpfen, Sturz aus der Laufbahn, Weigerung, länger als 1 Minute zu laufen, oder längeres als 1 Minute Stopp während des Laufbandtrainings definiert. Diese Ereignisse wurden in experimentellen Protokollen festgehalten, als sie beobachtet wurden. Kurzes Zögern oder vorübergehendes Stoppen führte nicht zu einem Ausschluss, wenn das Laufbandlaufen nach sanfter Aufforderung wieder aufgenommen werden konnte. Daten wurden nur dann ausgeschlossen, wenn ein Tier aufgrund wiederholter Stürze, anhaltender Laufweigerung oder starker Belastung die zugewiesene tägliche Laufbandsitzung nicht absolvieren konnte. Nach erfolgreicher Modellvalidierung am dritten Tag wurde die SAE-Intervention einmal täglich für 7 aufeinanderfolgende Tage durchgeführt.
Für jede Behandlungssitzung wurden die Ratten mit 1,5–2,0 % Isofluran betäubt. Die Anästhesie wurde unmittelbar nach dem Einsetzen der Nadel eingestellt. In der experimentellen Praxis erlangten Ratten typischerweise innerhalb von etwa 1–2 Minuten nach dem Isofluranentzug wieder das volle Bewusstsein. Das Laufbandtraining begann nicht, während die Ratten betäubt waren. Die Akupunkturen wurden von erfahrenen Tierakupunkteuren gemäß der Nomenklatur und Lokalisierung gewöhnlicher Akupunkturpunkte bei Versuchstieren, die 2020 von der China Association of Acupuncture-Moxibustion herausgegeben wurde, lokalisiert. GV20 war definiert als der Mittelpunkt der Linie, die die vorderen und hinteren Fontanellen auf der Schädelmittellinie verbindet. Die beidseitigen EX-HN1-Punkte befanden sich 2 mm lateral zu GV20. Einwegnadeln mit den Maßen 0,25 mm × 13 mm wurden vertikal bis zu einer Tiefe von 1 mm eingesetzt und während der standardisierten 30-minütigen Laufbandtrainingsphase beibehalten. Nadeln wurden mit atmungsaktivem medizinischem Klebeband befestigt, um eine Verschiebung zu verhindern, und die Schädelpenetration wurde durch Palpation ausgeschlossen, um eine prozedurale Konsistenz zu gewährleisten. Nadelposition und Klebeband wurden vor dem Laufbandtraining, während kurzer Pausen bei abnormalem Laufverhalten und unmittelbar nach Abschluss des Trainings überprüft. Außerdem wurde die Nadelposition während des Laufbandtrainings alle 5 Minuten visuell überprüft, unabhängig vom Tierverhalten. Nadelverschiebung wurde definiert als sichtbare Lockerung, eine Änderung des Nadelwinkels, teilweisen Rückzug oder vollständiges Lösen während des Laufbandlaufens. Wenn es zu leichter Lockerung ohne Verlust der Nadelposition kam, wurde das Band sanft verstärkt, während das Laufband kurzzeitig pausiert wurde. Wenn eine Nadel teilweise herausgezogen oder vollständig verrutscht wurde, wurde sie während dieser Sitzung nicht wieder eingesetzt; Die Ratte absolvierte das verbleibende Laufbandtraining ohne zusätzliche Nadelmanipulation, und das Ereignis wurde im experimentellen Logbuch dokumentiert. Tiere wurden nicht allein wegen eines einzelnen Nadelverschiebungsereignisses ausgeschlossen, es sei denn, das Ereignis ging mit einer Unfähigkeit zum Abschluss des Laufbandtrainings oder Anzeichen starker Belastung einher.
Die standardisierte 30-minütige Nadel-Retention und Trainingsphase begann, als die Ratte nach vollständiger Genesung von der Isofluran-Anästhesie mit dem Laufbandlaufen begann und endete unmittelbar nach Abschluss des Laufbandtrainings, als die Nadeln entfernt wurden. Das kurze Erholungsintervall nach dem Absetzen des Isoflurans wurde nicht in den standardisierten 30-minütigen Trainingszeitraum einbezogen. Da die Nadeln vor der Erholung eingeführt wurden, war die tatsächliche Verweildauer etwa 1–2 Minuten länger als die 30-minütige Laufbandtrainingsphase. Diese Definition wurde auf alle Ratten der SAE-Gruppe einheitlich angewendet. Eine Ratte galt als ausreichend genesen, um mit dem Laufbandtraining zu beginnen, wenn folgende Kriterien erfüllt waren: vollständige Wiedererholung des Bewusstseins, Fähigkeit zum eigenständigen Stehen, Fähigkeit, ruhig auf einer ebenen Unterlage zu gehen, und normale Reaktion auf sanfte äußere Stimulation. Diese Kriterien wurden vor der Platzierung auf dem Laufband überprüft.
Während der Nadelfesthaltung führten die Ratten Laufbandübungen bei 0° Neigung aus: 6 m/min für 10 Minuten, gefolgt von 12 m/min für 20 Minuten. Während der Studie wurde zu keinem Zeitpunkt Elektroschock eingesetzt. Wenn eine Ratte während des formalen Trainings aufhörte zu laufen oder sich weigerte, länger als eine Minute zu laufen, wurde sanfte, nicht-aversive auditive Stimulation, wie leichtes Klopfen auf die Laufbandwand, eingesetzt, um die Bewegung zu fördern. Der Einsatz solcher Impulse sowie jegliches Kämpfen, Fallen, Stoppen, Rennverweigern oder Nadelverschiebung wurden im experimentellen Logbuch dokumentiert, als es beobachtet wurde. Diese Ereignisse wurden deskriptiv überwacht und im experimentellen Logbuch dokumentiert, wenn sie beobachtet wurden. Die Trainingsintensität wurde umfassend angepasst, basierend auf zuvor berichteten Protokollen, die Kopfhautakupunktur mit Laufbandtrainingkombinieren 16,23. Die SAE-Intervention wurde einmal täglich über 7 aufeinanderfolgende Tage durchgeführt (Abbildung 1A).
Baclofen-Intervention
Nach erfolgreicher Modellvalidierung erhielten Ratten der Baclofen-Gruppe eine Baclofen-Lösung mittels intragastrischer Gavage in einer Dosis von 0,4 mg/kg. Das Medikament wurde einmal täglich um 9:00 Uhr an 7 aufeinanderfolgenden Tagen verabreicht.
Ergebnis-Mittelwert
Allgemeine Beobachtung
Der allgemeine Zustand wurde in allen Gruppen täglich überwacht, einschließlich Körpergewicht, geistigem Zustand, Nahrungs- und Wasseraufnahme sowie spontaner Aktivität.
Neurologische Funktion und Muskeltonusbewertung
Neurologische Defizite und Spastizität der Gliedmaßen wurden an den Tagen 1, 3, 5 und 7 nach Modellvalidierung mit dem Zea Longa-Score, dem modifizierten neurologischen Schweregrad (mNSS) und der modifizierten Ashworth-Skala bewertet. Alle Verhaltensbewertungen zu allen Zeitpunkten wurden unabhängig voneinander von zwei Forschern durchgeführt, die während des gesamten Beobachtungszeitraums für die Gruppenzuweisung blind waren. Detaillierte Bewertungskriterien sind dargestellt (Tabellen 1–3).
Bestimmung des zerebralen Infarktvolumens
Das Zerebralinfarktvolumen wurde mittels einer 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC)-Färbung bewertet. Nach 7 Tagen der Intervention wurden drei Ratten aus jeder Gruppe zufällig ausgewählt und durch eine intraperitoneale Überdosis von Natriumpentobarbital eingeschläfert, gefolgt von einer schnellen Enthauptung für die gesamte Gehirnsammlung. Die Gehirne wurden zunächst bei −20 °C eingefroren und anschließend in 2 mm dicke koronale Abschnitte geschnitten. Die Abschnitte wurden in einer 2%igen TTC-Lösung bei 37 °C für 30 Minuten im Dunkeln inkubiert und dann über Nacht in 4% Paraformaldehyd bei 4 °C fixiert. Am folgenden Tag wurden alle Abschnitte mit einer Digitalkamera fotografiert. Normales Hirngewebe war dunkelrot gefärbt, während infarktiertes Gewebe blass weiß erschien. Infarktflächen wurden mit ImageJ quantifiziert, und das Infarktvolumen wurde als Prozentsatz mit folgender Formel angegeben:
Infarktvolumen (%) = Infarktfläche / gesamter Hirnschnittbereich X 100%. (1)
Histopathologische Untersuchung des Hirngewebes
Hämatoxylin–Eosin (HE) Färbung
Hämatoxylin- und Eosin-Färbungen wurden verwendet, um histopathologische Veränderungen im periinfarkten Kortex zu bewerten. Nach 7 Tagen der Intervention wurden die Ratten durch eine intraperitoneale Überdosis von Natriumpentobarbital eingeschläfert. Anschließend wurde eine schnelle transkardiale Perfusion mit 0,01 m phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) durchgeführt, um das Blut zu entfernen, gefolgt von 250 ml kaltem 4%-Paraformaldehyd (4 °C) zur Fixierung. Ganze Gehirne wurden entnommen, und peri-infarktes kortikales Gewebe isoliert und in 4 % Paraformaldehyd bei 4 °C für 24 Stunden fixiert. Das Gewebe war paraffin-eingebettet und koronal bei 5 μm durchschnitten. Die Abschnitte wurden auf Objektträgern montiert, 30 Minuten bei 60 °C gebacken und in Xylol I–III (jeweils 10 Minuten) deparaffinisiert. Anschließend wurde eine HE-Färbung durchgeführt, gefolgt von Dehydrierung und Säuberung. Abschließend wurden Abschnitte mit neutralem Balsam gedeckt, und die Bilder wurden mit einem Nikon-Lichtmikroskop aufgenommen.
Nissl-Flecken
Die Nissl-Färbung wurde verwendet, um das neuronale Überleben und die Nissl-Körperdichte im periinfarkten Bereich zu beurteilen. Nach 7 Tagen der Intervention wurden die Ratten eingeschläfert und transkardial mit 0,01 M PBS (37 °C) perfundiert, gefolgt von 250 ml 4 % Paraformaldehyd (4 °C). Ganze Gehirne wurden entfernt, und periinfarktes sowie kontralaterale kortikale Gewebe wurden seziert und über Nacht in 4 % Paraformaldehyd bei 4 °C fixiert. Nach der Paraffineinbettung wurden 5 μm-Abschnitte vorbereitet. Die Schnitte wurden 10 Minuten lang in Xylol deparaffinisiert, durch eine Reihe von graduierten Ethanollösungen (95 %, 90 %, 80 %, 70 % und 50 %; 5 Minuten pro Konzentration) rehydriert und bei Raumtemperatur 30 Minuten mit Nissl-Arbeitslösung gefärbt. Nach einer kurzen Spülung mit destilliertem Wasser wurden die Abschnitte durch gegraduertes Ethanol dehydriert, 2 Minuten lang in Xylol freigegeben und schließlich mit Deckfolien befestigt. Die Bilder wurden unter einem Lichtmikroskop aufgenommen und analysiert.
Western-Blot-Analyse der Protein-Exprssion
Western-Blotting wurde durchgeführt, um Proteine zu untersuchen, die an der PI3K/Akt-Signalübertragung und synaptischen Plastizität beteiligt sind. Nach 7 Tagen der Intervention wurden die Ratten mit einer Überdosis Natriumpentobarbital eingeschläfert, und periinfarktes motorisches Cortex-Gewebe wurde entnommen. Die Gewebe wurden vollständig homogenisiert in einem Radioimmunpräzipitations-Assay (RIPA)-Lysispuffer auf Eis und bei 1610 × g bei 4 °C für 30 Minuten zentrifugiert, um das gesamte Protein zu extrahieren. Die Proteinkonzentration wurde mit einem kommerziellen Bicinchoninsäure-(BCA)-Protein-Assay-Kit quantifiziert. Gleiche Mengen an Protein (50 μg pro Spur) wurden durch Natriumdodecylsulfat-Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE) getrennt und elektrisch auf Polyvinylidenfluorid-(PVDF)-Membranen übertragen. Die Membranen wurden mit einer 5%igen Rinderserum-Albuminlösung (BSA) für 1 Stunde bei Raumtemperatur blockiert, um unspezifische Bindungen zu eliminieren, und dann über Nacht mit primären Antikörpern bei 4 °C inkubiert. Nach drei Waschrunden mit Tris-gepufferter Kochsalzlösung und Tween-20 (TBST)-Puffer wurden die Membranen mit sekundärem Antikörper (Verdünnungsverhältnis 1:1000) für 1 Stunde bei Zimmertemperatur inkubiert. Die Proteinbänder wurden mit verstärkter Chechemielumineszenz (ECL) visualisiert, und die Bandintensität wurde mit ImageJ quantifiziert. Die relative Proteinexpression wurde als Verhältnis des Zielproteins zur internen Kontrolle berechnet. Die primären Antikörper waren wie folgt: GAPDH (1:1000), PI3K (1:1000), phospho-PI3K (1:1000), Akt (1:1000), phospho-Akt (1:1000), GAP-43 (1:1000), SYN (1:1000), PSD-95 (1:1000) und GDNF (1:1000).
Synaptische Ultrastrukturbeobachtung
Die Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) wurde verwendet, um die Anzahl der Synapsen und die strukturelle Integrität zu beurteilen. Nach 7 Tagen der Intervention wurden die Ratten betäubt und transkardial mit einem gemischten Fixativ mit 4 % Paraformaldehyd und 2,5 % Glutaraldehyd perfundiert. Periinfarkt-kortikale Gewebeblöcke (1 mm × 1 mm × 1 mm) wurden gesammelt und 2,5 % Glutaraldehyd für 2 Stunden fixiert, gefolgt von einer Nachfixierung mit 1 % Osmiumtetroxid für 1 Stunde. Die Proben wurden anschließend mit graduierter Ethanoldehydratisierung, Epoxidharz-Einbettung, ultradünner Schnittung (50 nm Dicke) und Doppelfärbung mit Uranylacetat und Bleicitrat verarbeitet. Die synaptische Ultrastruktur wurde mit einem Transmissionselektronenmikroskop untersucht. Bilder wurden mit 8.000 × für die strukturelle Bewertung aufgenommen, und die Synapsen wurden mit 5.000 × gezählt. Drei zufällige Neuropilfelder pro Gruppe wurden analysiert, um die mittlere Synapsenzahl zu berechnen, und die Daten wurden mittels Einweg-ANOVA verglichen.
Immunfluoreszenz-Doppel-Markierungstest
Eine Immunfluoreszenz-Doppel-Markierungsfärbung wurde durchgeführt, um die Expression und Verteilung von SYN und p-Akt im periinfarkten Kortex zu bewerten. Nach 7 Tagen der Intervention wurden die Ratten durch eine intraperitoneale Überdosis von Natriumpentobarbital eingeschläfert, und das peri-infarktische kortikale Gewebe wurde schnell seziert. Die Proben wurden 24 Stunden lang in 4 % Paraformaldehyd fixiert, in eine optimale Schneidtemperaturverbindung (OCT) eingebettet und in 10 μm dicke Abschnitte geschnitten. Die Abschnitte wurden 1 Stunde lang bei Raumtemperatur an der Luft getrocknet und dreimal mit TBST-Puffer gewaschen, um die Reste von OCT-Substanz zu entfernen. Die Schnitte wurden mit 0,3 % Triton X-100 für 20 Minuten bei Zimmertemperatur permeabilisiert, mit PBS abgespült und mit 5 % BSA-Lösung für 1 Stunde bei Zimmertemperatur blockiert. Bei dunklen Bedingungen wurden Abschnitte über Nacht bei 4 °C mit Kaninchen-Anti-SYN (Verdünnung 1:200) und Kaninchen-anti-p-Akt (Verdünnung 1:200) Primärantikörpern inkubiert. Am nächsten Tag wurden die Schnitte dreimal mit PBS gewaschen und im Dunkeln mit einem sekundären Antikörper (Verdünnung 1:400) bei Zimmertemperatur 50 Minuten lang inkubiert. Nach sechs weiteren Waschgängen mit TBST-Puffer wurden die Zellkerne mit einer 4′,6-diamidino-2-phenylindol (DAPI) Arbeitslösung für 5 Minuten bei Raumtemperatur gekontert. Die Bilder wurden unter identischen Belichtungs- und Hintergrundeinstellungen mit einem Fluoreszenzmikroskop aufgenommen. Repräsentative Bilder wurden verwendet, um SYN- und p-Akt-Expressionsmuster im motorischen Kortex über verschiedene Gruppen hinweg zu bewerten.
Statistische Analyse
Statistische Analysen wurden mit GraphPad Prism 10.1.2 und IBM SPSS Statistics 25 durchgeführt. Die Daten werden als Mittelwert ± Standardabweichung (SD) dargestellt. Verhaltensdaten, die zu mehreren Zeitpunkten erhoben wurden, darunter der Zea-Longa-Score, der modifizierte Neurologische Schwerewert und die modifizierte Ashworth-Skala, wurden mit einer zweiseitigen wiederholten ANOVA analysiert, bei der die Gruppe als Zwischen-Proben-Faktor und die Zeit der Faktor innerhalb der Probanden war. Wenn signifikante Haupteffekte oder Wechselwirkungen festgestellt wurden, wurde Sidaks Mehrfachvergleichstest für die Post-hoc-Analyse verwendet. Weitere Daten wurden mittels Einweg-ANOVA analysiert, gefolgt von Sidaks Mehrfachvergleichstest für Post-hoc-Vergleiche. Ein zweiseitiger p. < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen. In Balkendiagrammen wird die statistische Signififikanz durch Sternchen angegeben, wie sie in den entsprechenden Abbildungslegenden definiert sind.