$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Hochentwickelte Charakterisierungsmethoden spielen eine entscheidende Rolle in der Halbleiterforschung, -entwicklung und -fertigung. Die Rasterkraftmikroskopie (AFM), die unter Umgebungsbedingungen, in einer Reinraumumgebung, in einer Inertgas-Handschuhbox oder unter Vakuum durchgeführt werden kann, wird in der Halbleiterindustrie weit verbreitet eingesetzt. Verfügbare AFM-Modi kombinieren die nanoskalige topografische Abbildung von Halbleitermaterialien und -bauelementen mit räumlich korrelierten elektrischen, magnetischen, mechanischen, piezoelektrischen (d. h. elektromechanischen) und thermischen Messungen, einschließlich Oberflächenpotential, elektrischer Widerstand, Dotierungsprofilierung und ortsabhängigen Strom-Spannungs-(I–V)-Messungen1,2,3,4,5. Trotz ihrer Fähigkeit, umfangreiche Informationen über Materialeigenschaften bereitzustellen, liefert die AFM jedoch keine direkten Informationen zur chemischen Zusammensetzung. Im Gegensatz dazu untersucht die Infrarot-(IR-)Absorptionsspektroskopie die in einer Probe vorhandenen chemischen Bindungen oder Phononenmoden, ist jedoch traditionell auf eine räumliche Auflösung im Mikrometerbereich begrenzt, bedingt durch die Abbe-Beugungsgrenze und die Wellenlänge des mittleren IR-Lichts (~2,5–25 µm oder 400–4.000 cm−1)6,7,8. Die Entwicklung der photothermischen AFM–IR6,7,8,9,10,11,12,13, die AFM mit Nahfeld-IR-Mikroskopie und -Spektroskopie zur chemischen Identifizierung auf Nanoskala kombiniert, behebt diese Einschränkung7,8,14,15,16. AFM–IR erreicht dies, indem eine mittleres Infrarot (MIR) emittierende Quelle auf eine typischerweise metallbeschichtete nanoskalige (~20 nm) AFM-Spitze fokussiert wird, wodurch die gleichzeitige Erfassung von AFM-Topografie- und IR-Spektroskopiedaten ermöglicht wird (Abbildung 1)6,7,8,11,15,16,17,18,19,20,21.

Abbildung 1. Schematische Darstellung der photothermischen Rasterkraftmikroskopie–Infrarotspektroskopie (AFM–IR). Ein fokussierter gepulster Infrarotstrahl (IR) regt eine lokalisierte photothermische Ausdehnung der Probenoberfläche an. Die resultierende Oszillation des Cantilevers wird mithilfe des Ablenkungslasers und einer positionsabhängigen Photodiode des Rasterkraftmikroskops detektiert, wodurch eine ko-lokalisierte Erfassung von Oberflächenstruktur und chemischen Informationen im Nanometerbereich ermöglicht wird. Übernommen mit Genehmigung aus Abbildung 1A in Dazzi und Prater7. Copyright 2017 American Chemical Society. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
Erste Implementierungen der AFM–IR nutzten eine breitbandige IR-Quelle, manchmal in Kombination mit einer speziellen thermisch empfindlichen Sonde anstelle eines Standard-AFM-Kragarmes22,23. Anschließend setzten Forscher gepulste IR-Quellen ein24, die höhere Spitzenleistungen liefern und im Fall abstimmbarer Wiederholraten eine Resonanzverstärkung (RE) der Kragarmantwort auf photothermische Anregung der Probe ermöglichen11,15,25,26, was zu Nachweisempfindlichkeiten führt, die dem monolagennahen Bereich nahekommen21. Das erste AFM–IR-System, das nanoskalige IR-Auflösung demonstrierte, verwendete einen Freie-Elektronen-Laser und eine von unten kommende evaneszente Wellenbeleuchtung durch ein IR-durchlässiges Substrat9. Kurz darauf wurde eine von oben kommende Beleuchtung27 eingeführt, die eine wellenlängenabstimmbare optische parametrische Oszillatorschaltung (OPO)24,28 oder eine kompakte Laserquelle wie einen Quantenkaskadenlaser (QCL)11,21 nutzt10. Diese Konfiguration bildet die Grundlage der meisten derzeit verfügbaren kommerziellen AFM–IR-Systeme, da die Beleuchtung von oben die Probenvorbereitung vereinfacht, indem sie die Notwendigkeit eines IR-durchlässigen Substrats entfallen lässt, und die Analyse dickerer Proben ermöglicht7,8,15,16. Spätere Entwicklungen ermöglichten die Aufnahme von IR-Spektren an ausgewählten Stellen der Probenoberfläche sowie die chemische Abbildung spezifischer Schwingungsmodi6,7,8,9,15,24,29,30,31,32. Infolgedessen wurde AFM–IR in einer breiten Palette von Bereichen angewandt, darunter Biologie und Arzneimittelfreisetzung6,25,33,34,35,36,37, Polymercharakterisierung6,12,26,38,39, Identifizierung von Nanopartikeln26,40,41,42,43 und Halbleiterforschung7,44,45,46,47,48,49, wobei laufende Arbeiten auf die Erweiterung des zugänglichen Wellenlängenbereichs und damit auf die Vielfalt untersuchbarer Schwingungsmodi und Materialsysteme abzielen8,28,50.
Verwandte Techniken wie die IR-Streutyp-Scanning-Nahfeld-Optische Mikroskopie (IR s-SNOM)14,51,52,53,54,55,56,57,58,59,60,61 und die spitzerverstärkte Raman-Streuung (TERS)62,63,64,65,66 detektieren jeweils elastisch oder inelastisch gestreutes Licht. Im Gegensatz dazu nutzt AFM–IR den AFM-Sondencantilever, um die photothermische Ausdehnung der Probenoberfläche nach IR-Anregung durch den Gütefaktor (Q-Faktor) der Cantilever-Resonanz zu transduzieren und zu verstärken6,7,8,14,15,16,31,67. Die resultierende Sondenschwingung wird durch Messung der Bewegung des AFM-Ablenkungslasers erfasst, der von der Rückseite des Cantilevers reflektiert wird, auf dem positionsabhängigen Detektor (Abbildung 1). Da dieser Detektionspfad auch zur Messung von Änderungen der Probenoberflächentopographie verwendet wird, erfordert AFM–IR eine Methode zur Trennung der topographischen und der IR-Absorptionsantworten. Diese Trennung wurde ursprünglich mithilfe der Kontaktmodus-AFM erreicht. Nach Anregung der Probe durch einen IR-Impuls klingt die Sondenantwort auf die photothermische Ausdehnung der Probe rasch auf einer Zeitskala von Nanosekunden bis Mikrosekunden ab, was wesentlich schneller ist als die millisekundenskalige effektive Verweilzeit der Sonde, die mit der AFM-Datenerfassung bei einigen Kilohertz verbunden ist6,8,15,16,50,67. Das resultierende zeitabhängige optische Signal, oder „Ringdown“, an jedem Datenpunkt (d. h. AFM-Bildpixel) kann durch ein Frequenzbandpassfilter, das um die Kontaktresonanzfrequenz des Cantilevers zentriert ist, gefiltert und einer Fourier-Transformation unterzogen werden. Die resultierende Amplitude ist proportional zur lokalisierten photothermischen Antwort der Probe (Abbildung 2A, 2B)6,7,8,15,31,67,68. Variationen in der Probensteifigkeit können jedoch die Kontaktresonanzfrequenz der Sonde verschieben, was das Signal der photothermischen Ausdehnung mit Variationen im mechanischen Verhalten der Probenoberfläche überlagern kann. Um die Empfindlichkeit der Kontaktmodus-AFM–IR zu verbessern, wurde die resonanzverstärkte (RE) AFM–IR entwickelt. In diesem Modus wird die Wiederholrate der Laserpulse so abgestimmt, dass sie mit einer Kontaktresonanzfrequenz der Sonde übereinstimmt, wodurch eine phasengleiche Verstärkung der mechanischen Cantilever-Resonanz erfolgt und der Ringdown-Abklingvorgang in eine kontinuierliche Schwingung umgewandelt wird (Abbildung 2C, 2D)7,8,11,15,21. Dieser Ansatz verbessert das Signal-Rausch-Verhältnis (S:R) erheblich, proportional zum Q-Faktor der Cantilever-Resonanz8,15,16,21. Die Einbindung einer Phasenregelschleife (PLL) ermöglicht es, die Cantilever-Resonanz kontinuierlich zu überwachen und die Laserpulswiederholrate an die sich ändernde Resonanzfrequenz anzupassen, während die Probenantwort bei einer ausgewählten IR-Wellenzahl kartiert wird. Dies trägt dazu bei, sicherzustellen, dass das gemessene RE-AFM–IR-Signal proportional zum IR-Absorptionskoeffizienten des Schwingungsmodus bleibt, unabhängig von Variationen in den mechanischen Eigenschaften und somit der Kontaktresonanzfrequenz über die Probenoberfläche hinweg8,15,16,37,69.

Abbildung 2. Repräsentative Zeitbereichs- und Frequenzbereichsantworten, erhalten mit verschiedenen AFM–IR-Betriebsmodi. (A) Zeitbereichs-Ausklingverhalten des Cantilevers nach photothermischer Anregung einer Probe im Kontaktmodus-AFM–IR. (B) Schnelle Fourier-Transformation (FFT) des Ausklingsignals in (a) mit mehreren Kontaktresonanzmodi. (C) Zeitbereichsantwort, aufgezeichnet im resonanzverstärkten Kontaktmodus-AFM–IR mit einem weichen Cantilever (k = 0.3 N/m). (D) FFT des resonanzverstärkten Signals mit Verstärkung bei der gewählten Kontaktresonanz (365 kHz), entsprechend der Laserpuls-Wiederholrate. Die Peaks bei etwa 730, 1095 und 1460 kHz entsprechen höheren Harmonischen. (E) Zeitbereichs-Tapping-Modus-AFM–IR-Signal, aufgezeichnet mit einem steifen Cantilever (k = 40 N/m). (F) FFT der Tapping-Modus-AFM–IR-Antwort. Die Topographieaufnahme erfolgte über die Antriebsresonanz bei etwa 250 kHz, während die photothermische Antwort bei etwa 1,55 MHz mittels einer heterodynen Puls-Wiederholrate detektiert wurde, die der Differenzfrequenz (f₂ − f₁) von etwa 1,3 MHz entspricht. Die Panels (A, B) wurden mit Genehmigung aus Abbildung 3 in Mathurin et al.16 Copyright 2022 AIP Publishing übernommen. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
Der nächste große Fortschritt in der AFM–IR-Technologie war die Einführung der Heterodyn-Detektion70, die es ermöglichte, die Tapping-Mode-AFM mit der AFM–IR zu kombinieren, um weiche, klebrige oder schwach haftende Proben abzubilden8,15,16,25,26,37,71. Im Tapping-Modus, auch als intermittierender Kontaktmodus bezeichnet, wird die Sonde an oder nahe einer Resonanzfrequenz des Cantilevers angeregt, sodass sie intermittierend mit der Probenoberfläche in Kontakt kommt. Dadurch werden laterale Kräfte verringert und die Gefahr einer Beschädigung der Probe und/oder der Sonde minimiert. Im Vergleich zum Kontaktmodus ist der Tapping-Modus daher besonders vorteilhaft für Proben, die mechanisch weich, schwach haftend oder anfällig für Oberflächenveränderungen während der Abbildung sind8,15,16,25,26,37,71. Bei der Tapping-Mode-AFM–IR wird die Wiederholrate der Laserpulse auf die Differenz zwischen zwei Cantilever-Resonanzfrequenzen eingestellt, sodass flaser = Δf = f2 − f1 gilt. Eine Resonanzfrequenz dient der Erfassung der Probenoberfläche (ftap), während die zweite Resonanzfrequenz die photothermische Antwort (fdemod) überwacht, die durch die IR-Absorption entsteht (Abbildung 2E, 2F)8,15,16,71,72. Ähnlich wie bei der resonanzverstärkten Kontaktmodus-AFM–IR kann eine Phasenregelschleife (PLL) verwendet werden, um die Synchronisation zwischen der Laserpulswiederholrate und Δf während des Abtastens aufrechtzuerhalten und so kleine Verschiebungen der Cantilever-Resonanzfrequenzen auszugleichen, die durch Variationen des Wechselwirkungspotentials zwischen Spitze und Probe über die Oberfläche verursacht werden8,16. Die Cantilever-Antwort (Schwingungsamplitude, Z) in der Heterodyn-detektierten Tapping-Mode-AFM–IR hängt von ftap, fdemod, Δf und dem Q-Faktor der gewählten Demodulationsresonanz ab8,15,16,26,71:

Daher kann bei vergleichbaren weiteren Faktoren (z. B. ähnlichen Q-Faktoren für f1 und f2) ein verbesserter S:N erzielt werden, indem eine steifere Sonde verwendet wird, im Tapping-Modus bei der höheren Resonanzfrequenz betrieben wird (d. h. ftap = f2) und die photothermische Antwort bei der niedrigeren Resonanzfrequenz demoduliert wird (d. h. fdemod = f1). Neben der Möglichkeit, weiche, klebrige oder schwach haftende Proben zu analysieren, bietet die Tapping-Modus-AFM-IR eine verringerte Empfindlichkeit gegenüber Variationen der mechanischen Probeneigenschaften, eine etwa zweifach verbesserte laterale Auflösung (~10 nm gegenüber ~20 nm) sowie eine gegenüber Kontaktmodus-Implementierungen etwa 10- bis 20-fach verbesserte Oberflächensensitivität8,15,16,26,71.
In Zusammenarbeit mit akademischen und industriellen Partnern wurde die Tapping-Mode-AFM-IR zur Bewertung von Abscheidungs- und Materialabtragungsprozessen auf strukturierten Wafern44,45, zur Identifizierung unerwünschter Keimbildungsstellen44, zum Nachweis von rückständigem Photoresist45 sowie zur Optimierung der Verarbeitungsbedingungen für Kontaktpads in Halbleiterbauelementen mit großem Bandabstand45 eingesetzt. Das hier vorgestellte Protokoll beschreibt die heterodyne-detektierte Tapping-Mode-AFM-IR und demonstriert ihre Anwendung zum Erfassen nanoskaliger IR-Spektren an ausgewählten Stellen sowie zur Abbildung der räumlichen Verteilung chemischer Spezies durch vibrationalen Modus-Imaging bei festen IR-Wellenzahlen. Obwohl die AFM-IR auch Informationen zur molekularen Orientierung mittels polarisationsabhängiger Messungen liefern kann8,16,73,74,75,76, liegen diese Anwendungen außerhalb des Geltungsbereichs des vorliegenden Protokolls und der dargestellten repräsentativen Beispiele.