1. Versuchstiere
Diese Forschung wurde vom Tierethikkomitee des Ganzhou People's Hospital (Genehmigungsnr. 20230789) genehmigt und in strikter Übereinstimmung mit dem NIH-Leitfaden für die Pflege und Nutzung von Labortieren durchgeführt. SPF-grade weibliche SD-Ratten (6–8 Wochen alt, 180–230 g) wurden in dieser Studie verwendet. Die Ratten wurden mit freiem Zugang zu Nahrung und Wasser unter kontrollierten Bedingungen von 22 °C ± 3 °C und einem 12-Stunden-Hell/Dunkel-Zyklus untergebracht. Die Tiere durften sich vor dem Experiment sieben Tage akklimatisieren. Die im Protokoll verwendeten Chemikalien, Reagenzien und Geräte sind in der Materialtabelle aufgeführt.
2. Etablierung des in vivo ICH-Modells
Zur Erstellung des experimentellen intracerebralen Blutungsmodells (ICH) wurde 0,23 U des Typ-VII-Kollagenases in 1 μL steriler physiologischer Kochsalzlösung gelöst. Die Ratten wurden mit intraperitonealem Pentobarbitalnatrium (50 mg/kg) betäubt, danach wurde die Kollagenaselösung stereotaktisch mit 0,5 μL/min (0,2 mm hinter dem Frontalpunkt, 3,0 mm lateral zur Mittellinie und 6 mm tief in der Schädeloberfläche) in das Striatum eingebracht. Die Tiere in der Kontrollgruppe unterzogen sich demselben Verfahren, erhielten jedoch eine gleiche Menge physiologisches Kochsalzmittel statt Kollagenase. Ein schematischer Überblick über das experimentelle Design findet sich in ergänzender Abbildung 1.
Ergänzende Abbildung 1: Diagramm des Tierversuchsdesigns. Ratten wurden zufällig in zwei Gruppen eingeteilt: Eine Gruppe verwendete 0,23U Typ VII Kollagenase, um ein ICH-Modell zu konstruieren; Eine Gruppe verwendete physiologische Kochsalzlösung als Kontrollgruppe. Die Modellgruppenratten wurden zufällig in zwei Gruppen eingeteilt, um die Rolle von FGD5-AS1 in der ICH und den synergistischen Effekt der FGD5-AS1/miR-93-5p-Achse zu analysieren. Eine Stunde nach der ICH-Induktion wurde das Transfektionsreagenz in das Rattenhirn injiziert. Bewertung der neurologischen Funktion von Ratten mittels mNSS an den Tagen 0, 1, 3 und 7; Sammelt das Hirngewebe nach der Einleitung von ICH für 7 Tage. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Die Ratten wurden zufällig in zwei Gruppen eingeteilt. Eine Gruppe wurde verwendet, um die Rolle von FGD5-AS1 in ICH zu analysieren und weiter in vier Untergruppen unterteilt: Kontroll, ICH, ICH + Lentivirus (LV)-shNC und ICH + LV-shFGD5-AS1. Die andere Gruppe wurde zur Analyse der synergistischen Effekte der FGD5-AS1/miR-93-5p-Achse verwendet und in fünf Untergruppen unterteilt: ICH, ICH + LV-shNC, ICH + LV-shFGD5-AS1, ICH + LV-shFGD5-AS1 + antagomir NC und ICH + LV-shFGD5-AS1 + miR-93-5p Antagomir. Jede Gruppe umfasste 12 Ratten. Eine Stunde nach der ICH-Induktion wurde das Transfektionsreagenz mit einer Dosis von 2 mg/kg in das Rattenhirn injiziert.
3. Zellkultur und -verarbeitung
Mikrovaskuläre Endothelzellen (BMECs) im Gehirn dienen als Schlüsselmodell zur Untersuchung der Blut-Hirn-Schranke, der zugrunde liegenden Mechanismen neurologischer Erkrankungen und der Medikamentenabgabe20. Ein in-vitro-ICH-Modell wurde unter Verwendung von Sauerstoff-Glukosedeprivation (OGD)/Hemin-Behandlung in BMECs3 etabliert. BMECs wurden in glukose- und serumfreiem DMEM unter einer Gasmischung aus 5 %CO2 und 95 %N2 für 10 Minuten kultiviert. Die Zellen wurden anschließend mit Hemin (10μM) behandelt und in eine anaerobe Kammer mit 5 % CO2und 95 %N2 für 2 Stunden überführt. OGD wurde durch die Rückversetzung der Zellen in normale Kulturzustände beendet. Die Kontrollgruppe wurde unter denselben Bedingungen mit PBS behandelt.
Die Zellen wurden gemäß den Anweisungen des Herstellers transfiziert. Die Zellen wurden mit 20 nM FGD5-AS1 siRNA (si-FGD5-AS1), negativer Kontroll-siRNA (si-NC), miR-93-5p-Inhibitor oder Blankkontrollinhibitor (NC-Inhibitor) transfektiert.
4. Modifizierter neurologischer Schweregrad-Test
Nach der Etablierung des in vivo ICH-Modells wurde die neurologische Funktion mit dem modifizierten Neurologischen Schweregrad (mNSS) an den Tagen 0, 1, 3 und 7 bewertet. Die Werte wurden anhand von vier Bereichen quantifiziert: motorische Funktion, sensorische Funktion, Gleichgewicht und Reflexfunktion. Die Werte 1–4 deuteten auf eine leichte Beeinträchtigung hin, 5–9 auf eine moderate Beeinträchtigung und 10–14 auf eine schwere Beeinträchtigung.
5. Probenentnahme
7 Tage nach der ICH-Einleitung wurden die Ratten mit einer intraperitonealen Injektion von 50 mg/kg Pentobarbitalnatrium betäubt, gefolgt von einer Euthanasie durch Zervikaldislokation und Sammlung von Hirngewebe.
6. Beurteilung des Gehirnödems
Das zerebrale Ödem wurde mit der Trocken-Nassgewichtsmethode19 untersucht. Das Gehirn wurde unmittelbar nach der Entnahme gewogen, um das Nassgewicht zu erhalten. Das Gewebe wurde dann 24 Stunden in einem 100 °C Ofen getrocknet und erneut gewogen, um das Trockengewicht zu erhalten. Der Gewebewassergehalt wurde wie folgt berechnet:
[(Nasses Gewicht - Trockengewicht) / Nasses Gewicht] × 100%
7. Echtzeit-quantitative PCR
Die Gesamt-RNA wurde aus Gewebe- und Zellproben mit einem RNA-Extraktionsreagenz gemäß dem Protokoll des Herstellers isoliert. Komplementäre DNA wurde anschließend mit einem Reverse-Transkriptions-Kit synthetisiert. Die quantitative PCR-Analyse wurde anschließend mit einer Echtzeit-PCR-Plattform durchgeführt, wobei GAPDH und U6 endogene Referenzgene waren. Das Amplifikationsprotokoll bestand aus einem anfänglichen Denaturierungsschritt bei 95 °C für 10 Minuten, gefolgt von 40 Denaturierungszyklen bei 95 °C für 15 Sekunden und Glühen/Verlängerung bei 60 °C für 60 Sekunden. Die relativen Genexpressionsniveaus wurden mit der 2−ΔΔCt-Methode berechnet. Die in dieser Studie verwendeten Primer-Sequenzen sind in ergänzender Tabelle 1 aufgeführt.
Ergänzende Tabelle 1: Die Primer-Sequenzen und verwandte Reagenziensequenzen, die in dieser Studie verwendet wurden. Die Sequenzen, die an Echtzeit-qPCR-Experimenten beteiligt sind, sowie die relevanten Sequenzen der in vitro verwendeten Reagenzien. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
8. Zellproliferationstest
Transfizierte Zellen wurden in 96-Brunnen-Platten eingesät. Nach der Kultivierung für 0, 24, 48 und 72 Stunden wurden 10 μL CCK-8-Reagenz zu jedem Bohrloch hinzugefügt. Die Zellen wurden bei 37 °C für 2 Stunden inkubiert, und die optische Dichte wurde mit einem Mikroplattenleser bei 450 nm gemessen.
9. Dual-Luciferase-Reporter-Assay
Wildtyp- (WT) und mutierte (MUT) 3′-UTRs von FGD5-AS1, die die miR-93-5p-Bindungsstelle enthalten, wurden in den pGL3-Vektor geklont. Der Vektor wurde mit einem miR-93-5p-Mimik unter Verwendung eines Transfektionsreagens ko-transfiziert. Die relative Luciferase-Aktivität wurde mit einem Dual-Luciferase-Reporter-System gemessen.
10. Enzymgekoppelter Immunsorbent-Test
Hirngewebeproben (20–50 mg) wurden im eiskalten RIPA-Lysepuffer mit einem Gewebe-zu-Puffer-Verhältnis von 1:9 homogenisiert. Nach der Homogenisierung wurden die Proben bei 12.000 × g für 20 Minuten bei 4 °C zentrifugiert, und die resultierenden Supernatanten wurden zur Analyse gesammelt. BMECs jeder Versuchsgruppe wurden entnommen und bei 12.000 × g für 10 Minuten bei 4 °C zentrifugiert, danach wurden die Supernatanten zurückgehalten. Die Konzentrationen von MDA, IL-1β, IL-6 und TNF-α wurden anschließend mit den entsprechenden Prüfstellen gemäß den Anweisungen des Herstellers bestimmt.
11. Statistische Analyse
Alle Daten werden als Mittelwert ± SD dargestellt. Die Daten wurden mit statistischer Software visualisiert. Jedes Experiment wurde mindestens dreimal wiederholt. Der At-Test wurde verwendet, um zwei Gruppen zu vergleichen, und eine Einweg-Varianzanalyse, gefolgt vom Post-hoc-Test von Tukey, wurde verwendet, um mehr als zwei Gruppen zu vergleichen. Ein Wert von P < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.