Auswahl eisenabhängiger Todesweg-bezogener Gene und genetischer Instrumente
Insgesamt wurden 483 Eisensterbe-bezogene Gene aus FerrDb V2 abgeleitet (Abbildung 1). Davon konnten 315 Gene dem eQTLGen-Datensatz zugeordnet werden und wiesen mindestens einen Kandidaten für einen cis-Expressionsquantitativmerkmal-Locus (cis-eQTL) auf. Nach der Kopplungsungleichgewichtsbereinigung verblieben für 250 Gene mindestens drei unabhängige kandidatenbasierte Instrumente. Nach Durchführung der Outcome-Variante-Suche, der Allel-Harmonisierung und der Qualitätskontrolle ergaben sich für 226 Gene valide inverse-varianzgewichtete (IVW) Schätzungen, die in die entdeckungsphasenbasierte Mendelsche Randomisierungsanalyse (MR) einbezogen wurden (Zusätzliche Datei 1). Alle 3.578 in der Entdeckungsphase beibehaltenen Instrumente wiesen F-Statistiken >10 auf (Minimum: 29,72; Median: 70,76), was auf keinen Hinweis auf eine Verzerrung durch schwache Instrumente hindeutet. Unter den 34 Kandidatengenen der Entdeckungsphase betrug die mediane F-Statistik 67,22, mit einem Minimum von 29,72.
MR im Entdeckungsstadium identifiziert eisenabhängige Todesarten-bezogene Gene, die mit der Anfälligkeit für GBM assoziiert sind
Unter den 226 Genen, die gültige IVW-Schätzungen ergaben, erfüllten 34 die vorab festgelegten Kriterien der Entdeckungsphase mit einem IVW P < 0,05 und einer Benjamini–Hochberg-Falsch-Entdeckungsrate (BH-FDR) < 0,20, darunter 19 inverse und 15 positive Assoziationen mit der GBM-Anfälligkeit (Abbildung 2A). Die stärksten statistischen Hinweise ergaben sich für RPTOR (OR = 0,809, 95 % KI 0,737–0,887; P = 7,02 × 10⁻6; BH-FDR = 0,0012) und PLA2G6 (OR = 1,568, 95 % KI 1,281–1,920; P = 1,08 × 10⁻5; BH-FDR = 0,0012). Die bayesschen gewichteten Mendelschen Randomisierungsschätzungen (BWMR) waren für alle 34 Kandidatengene nominal signifikant und stimmten hinsichtlich der Richtung mit den IVW-Schätzungen überein (Abbildung 2A). MR-Egger-Intercept-Tests ergaben keine Hinweise auf gerichtete horizontale Pleiotropie. Cochran’s Q-Test wies nur bei MAP1LC3A Heterogenität nach (P = 0,043), während die globalen MR-PRESSO-Tests bei den 33 auswertbaren Genen keine signifikante Ausreißerverzerrung identifizierten. Für SLC7A11 konnte MR-PRESSO nicht durchgeführt werden, da nur drei Instrumente verfügbar waren (Zusätzliche Datei 1). Gen-spezifische Leave-One-Out-Analysen, Methodenvergleichsdiagramme und Einfallsdiagramme für die vier anschließend replizierten Gene sind in Zusätzliche Abbildung 1 dargestellt. Die 34 Kandidaten der Entdeckungsphase wurden anschließend mithilfe eines unabhängigen eQTL-Datensatzes evaluiert. Davon verfügten 26 über ausreichende Instrumente für die MR-Replikationsphase, und vier erfüllten die vorab festgelegten Replikationskriterien.
Unabhängige MR-Replikation stützt vier Kandidaten aus der Entdeckungsphase
Von den 34 Kandidaten im Entdeckungsstadium hatten 26 mindestens ein geeignetes cis-eQTL-Instrument im GTEx V10-Ganzenblut und wurden in die MR-Analyse im Replikationsstadium einbezogen. Dreizehn Gene wurden durch ein einzelnes Instrument repräsentiert und mittels Wald-Quotienten analysiert, während die verbleibenden 13 Gene zwei oder mehr Instrumente aufwiesen und mittels IVW analysiert wurden. Vier Gene erfüllten die vorab festgelegten Replikationskriterien von P < 0,05, BH-FDR < 0,20 und einer Wirkungsrichtung, die mit der Schätzung im Entdeckungsstadium übereinstimmte (Abbildung 2B; Zusatzdatei 1).
Eine höhere genetisch vorhergesagte Expression von ATG7 (OR = 0,523, 95 % KI 0,330–0,831; P = 0,0061; BH-FDR = 0,0976), RPTOR (OR = 0,718, 95 % KI 0,563–0,915; P = 0,0075; BH-FDR = 0,0976) und MAP1LC3A (OR = 0,830, 95 % KI 0,717–0,959; P = 0,0117; BH-FDR = 0,1012) war mit einer verringerten Anfälligkeit für GBM assoziiert. Im Gegensatz dazu war eine höhere genetisch vorhergesagte Expression von CHMP6 mit einer erhöhten Anfälligkeit verbunden (OR = 1,378, 95 % KI 1,032–1,838; P = 0,0295; BH-FDR = 0,1916). Die Wirkrichtungen für alle vier Gene waren konsistent mit denen aus der Entdeckungsanalysen. Bei den Genen, für die Cochran’s Q berechnet werden konnte, wurde keine signifikante Heterogenität festgestellt (Supplementary File 1). Da die meisten Replikationsschätzungen nur auf ein oder zwei Instrumenten basierten, waren formelle Tests auf horizontale Pleiotropie und Ausreißerverzerrung nur auf einen begrenzten Teil der Gene anwendbar (Supplementary File 1). Entsprechende Diagnoseplots für MAP1LC3A, RPTOR und CHMP6 sind in Supplementary Figure 2 dargestellt. ATG7 war für multivariate Instrumentendiagnoseanalysen nicht geeignet, da seine Replikationsschätzung aus einem einzelnen Instrument-Wald-Quotienten abgeleitet wurde.
Die transkriptomische Analyse über Kohorten hinweg priorisiert MAP1LC3A
Die vier Gene, die durch die MR-Analysen sowohl im Entdeckungs- als auch im Replikationsstadium unterstützt wurden, wurden anhand von drei unabhängigen transkriptomischen Kohorten bewertet, die verschiedene Expressionsplattformen repräsentieren (Abbildung 3; Tabelle 2; ergänzende Abbildung 3; ergänzende Datei 1). Die Expression von MAP1LC3A war in Tumorgewebe in allen drei Kohorten durchgängig verringert: GSE196533 (log₂FC = −1.553, transkriptomweite FDR = 3,21 × 10⁻8), GSE4290 (log₂FC = −1,243, FDR = 3,55 × 10⁻12) und GSE116520 Tumorkern im Vergleich zu nicht-neoplastischem Kontrollgewebe (log₂FC = −1,204, FDR = 9,78 × 10⁻8). In GSE116520 war die Expression von MAP1LC3A ebenfalls im peritumoralen Gewebe niedriger als in den nicht-neoplastischen Kontrollen (log₂FC = −1,056, FDR = 2,85 × 10⁻6) mit einem signifikanten abnehmenden Trend vom Kontrollgewebe über das peritumorale Gewebe bis hin zum Tumorkern (Trendkoeffizient = −0,531, FDR = 8,59 × 10⁻6).
Die Metaanalyse mit Zufallseffekten bestätigte eine signifikant niedrigere Expression von MAP1LC3A im Tumorgewebe (gepoolter log₂FC = −1,273, 95 % KI von −1,625 bis −0,920; Hartung–Knapp P = 0,0041; BH-FDR = 0,016), ohne Hinweise auf Heterogenität zwischen den Studien (I2 = 0 %; Zusätzliche Datei 1). Die Expression von RPTOR war in allen drei Kohorten einheitlich niedriger und erreichte genomweite Signifikanz in GSE4290, obwohl die gepoolte Schätzung statistisch nicht signifikant war (log₂FC = −0,258, 95 % KI von −0,655 bis 0,139; BH-FDR = 0,196; I2 = 42,3 %). Die Expression von CHMP6 war im Tumorgewebe durchgängig höher und erreichte Signifikanz in GSE4290, während die gepoolte Schätzung weiterhin nicht signifikant blieb (log₂FC = 0,150, 95 % KI von −0,130 bis 0,431; BH-FDR = 0,196; I2 = 52,0 %). ATG7 zeigte geringe, inkonsistente Unterschiede in der Richtung über die Kohorten hinweg und keine signifikante gepoolte Assoziation (log₂FC = 0,036, 95 % KI von −0,073 bis 0,146; BH-FDR = 0,291; I2 = 0 %). Somit zeigte MAP1LC3A unter den vier MR-replizierten Genen die stärksten und konsistentesten Hinweise auf eine tumorassoziierte differentielle Expression.
Virtueller Einzelzell-Knockout zeigt reproduzierbare, zielgerichtete transkriptionelle Störungen
Die vier MR-replizierten Gene wurden in 4.916 in Frage kommenden malignen Zellen aus 20 adulten IDH-wildtyp-GBM-Tumoren in GSE131928 untersucht. ATG7, RPTOR, MAP1LC3A und CHMP6 wurden in jeweils 42,78 %, 45,89 %, 46,89 % und 31,90 % der in Frage kommenden malignen Zellen nachgewiesen, was deren Einbeziehung in die virtuelle Knockout-Analyse unterstützt (Supplementary Figure 4; Supplementary File 1). Um Ungleichgewichte in der Patientenrepräsentation zu minimieren, wurden aus jedem Tumor zufällig 120 Zellen ausgewählt, wodurch ein patientenbalancierter Datensatz aus 2.400 malignen Zellen entstand. Jedes Zielgen wurde über fünf unabhängig angesetzte Durchläufe hinweg evaluiert, was insgesamt 20 virtuelle Knockout-Analysen ergab.
Unter Verwendung des vorgegebenen Kriteriums BH-FDR < 0,05 in mindestens drei von fünf Durchläufen identifizierte der virtuelle Knockout drei robuste downstream Gene für ATG7, 15 für RPTOR, vier für MAP1LC3A und sieben für CHMP6 (Abbildung 4A; ergänzende Abbildung 5). Die Konsensmenge für RPTOR umfasste RND3, NKAIN4, CHI3L1, CDKN1A, BCAN, PDGFRA, OLIG1, LHFPL3, ENO2, HILPDA, LGALS3, ANXA1, CNTN1, NAMPT und SCRG1. Die Konsensmenge für MAP1LC3A enthielt RND3, CD24, BCAN und S100B, während die Konsensmengen für ATG7 und CHMP6 jeweils drei und sieben Gene umfassten. Die Anwendung des strengeren Signifikanzkriteriums in mindestens vier von fünf Durchläufen reduzierte die Konsensmengen auf zwei mit ATG7 assoziierte Gene, neun mit RPTOR assoziierte Gene, ein mit MAP1LC3A assoziiertes Gen und vier mit CHMP6 assoziierte Gene. Insgesamt identifizierten diese Analysen reproduzierbare, zielgerichtete transkriptionelle Störungen innerhalb des rekonstruierten regulatorischen Netzwerks maligner Zellen.
Funktionelle Anreicherungs- und gemeinsame Netzwerkanalysen identifizieren konvergente, adhäsionsbezogene Reaktionen
Die vier zielgruppenspezifischen Konsenssätze umfassten 17 eindeutige downstream Gene. Die Netzwerkanalyse identifizierte RND3 als einziges Gen, das von allen vier virtuellen Knockouts geteilt wurde, während BCAN, CD24 und NKAIN4 jeweils von drei der vier virtuellen Knockouts geteilt wurden. CHI3L1, LHFPL3 und PDGFRA wurden von zwei Zielgruppen geteilt, während die verbleibenden zehn Gene zielgruppenspezifisch waren (Abbildung 4B,C). Die größte absolute paarweise Überschneidung ergab sich zwischen RPTOR und CHMP6, die sechs downstream Gene teilten. Basierend auf der Jaccard-Ähnlichkeit wurde die größte proportionale Überschneidung zwischen ATG7 und CHMP6 beobachtet (Jaccard-Index = 0,429), gefolgt von RPTOR–CHMP6 und MAP1LC3A–CHMP6 (jeweils 0,375).
Die Genontologie-Analyse des gepoolten 17-Gen-Konsenssatzes ergab nach Korrektur nach Benjamini–Hochberg zehn signifikant angereicherte Terme (Abbildung 4D; Abbildung S6). Angereicherte biologische Prozess-Terme umfassten Zelladhäsion (BH-FDR = 0,0028), positive Regulation der Zellpopulationproliferation (BH-FDR = 0,0028), Entzündungsreaktion (BH-FDR = 0,0139), positive Regulation der ERK1/ERK2-Kaskade (BH-FDR = 0,0165) und Zell-Zell-Adhäsion (BH-FDR = 0,0196). Signifikante zelluläre Komponenten-Terme umfassten Zelloberfläche, extrazellulären Bereich, Plasmamembran und extrazelluläre Matrix, während Kohlenhydratbindung der einzige signifikant angereicherte molekulare Funktionsterm war. Die Zelladhäsion blieb signifikant angereichert, wenn die Analyse auf Gene beschränkt wurde, die von mindestens zwei Targets gemeinsam genutzt wurden, sowie bei Anwendung des strengeren Konsenskriteriums „vier von fünf Läufen“. Kein KEGG- oder Reactome-Pfad blieb nach BH-Korrektur signifikant.
Die zielgerichtete Anreicherung war am ausgedehntesten für RPTOR, dessen Konsensmenge aus 15 Genen für vier biologische Prozessbegriffe und vier zelluläre Komponentenbegriffe angereichert war (ergänzende Abbildung 7). Die Konsensmenge von MAP1LC3A war angereichert für Zelladhäsion (BH-FDR = 8,74 × 10⁻4) und Entwicklung des zentralen Nervensystems (BH-FDR = 0,0364), während die Konsensmenge von CHMP6 für Zelladhäsion angereichert war (BH-FDR = 0,0075). Für die dreigenige Konsensmenge von ATG7 erreichte kein Begriff aus der Genontologie einen BH-FDR < 0,05.
VERFÜGBARKEIT VON DATEN:
Öffentliche transkriptomische Datensätze sind über die GEO unter den Zugangsnummern GSE196533, GSE4290, GSE116520 und GSE131928 verfügbar. Die Zusammenfassungsstatistiken zu den GBM-Ergebnissen sind unter kontrolliertem Zugang im European Genome-phenome Archive (EGA), Datensatz EGAD00010001657 (https://ega-archive.org/datasets/EGAD00010001657), hinterlegt. Der Zugang wird vom zuständigen Data Access Committee verwaltet und erfordert einen genehmigten Antrag sowie eine Data Access Agreement. Gemäß der geltenden Vereinbarung sind die Autoren nicht berechtigt, die Dateien weiterzugeben oder in einem öffentlichen Repository abzulegen. eQTL-Zusammenfassungsdaten sind vom eQTLGen Consortium und GTEx gemäß deren jeweiligen Zugangs- und Nutzungsbedingungen erhältlich. Die Analyse-Skripte, die diese Studie unterstützen, werden als Zusatzdatei mit Programmiercode 1 und Zusatzdatei mit Programmiercode 2 bereitgestellt.

Abbildung 1: Studiendesign und Rahmenwerk zur evidenzbasierten Integration für die genetisch fundierte Priorisierung ferroptosebezogener Gene bei Glioblastom. Ferroptosebezogene Gene, die aus FerrDb V2 zusammengestellt wurden, wurden auf eQTLGen abgebildet, auf unabhängige cis-Expression quantitative trait locus (cis-eQTL)-Instrumente untersucht und in der Entdeckungsphase mittels Mendelscher Randomisierung (MR) bewertet. Von den 483 zusammengestellten Genen wiesen 315 mindestens ein Kandidaten-cis-eQTL auf, 250 behielten nach LD-Klumpung (linkage disequilibrium, LD) mindestens drei unabhängige Instrumente, und 226 ergaben gültige inverse-varianzgewichtete (IVW) Schätzungen nach Outcome-Varianten-Suche und Allel-Harmonisierung. Vierunddreißig Gene erfüllten die Kriterien der Entdeckungsphase, woraufhin die bayessche gewichtete Mendelsche Randomisierung (BWMR) zur Beurteilung der Robustheit eingesetzt wurde. Anschließend konnten 26 Gene in der Replikationsphase mittels GTEx V10 Ganzblut-cis-eQTLs mittels MR evaluiert werden. Vier Gene (ATG7, RPTOR, MAP1LC3A und CHMP6) erfüllten die Replikationskriterien und wurden anschließend in drei unabhängigen transkriptomischen Kohorten sowie durch virtuelle Störung in malignen, patientenabgeleiteten Zellen weiter untersucht. Die Integration dieser komplementären Analysen priorisierte MAP1LC3A für weitere Untersuchungen. BWMR = bayessche gewichtete Mendelsche Randomisierung; eQTL = Expression quantitative trait locus; IVW = inverse-varianzgewichtet; LD = Kopplungsungleichgewicht; MR = Mendelsche Randomisierung. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 2: Robustheit in der Entdeckungsphase und unabhängige Reproduktion genetisch vorhergesagter Effekte von eisenabhängigen Zelltod (Ferroptose)-bezogenen Genen auf das Glioblastom-Risiko. (A) Paarweise dargestellte Wald-Plots zum Vergleich der Schätzungen nach der Methode des inversen Varianzgewichts (IVW) und der bayesschen gewichteten Mendelschen Randomisierung (BWMR) für die 34 Gene, die die Kriterien der Entdeckungsphase erfüllten (IVW P < 0,05 und Benjamini–Hochberg-Falsch-Entdeckungsrate (BH-FDR) < 0,20). Vor den Genbezeichnungen stehende Quadrate kennzeichnen Gene, die anschließend in der unabhängigen Reproduktionsanalyse bestätigt wurden. Das Dreieck markiert LPIN1, bei dem die IVW- und BWMR-Schätzungen unterschiedliche Wirkungsrichtungen aufwiesen. (B) Wald-Plot der 26 Gene, die im Datensatz der Reproduktionsphase ausgewertet wurden. IVW-Schätzungen sind für Gene mit mindestens zwei Instrumenten dargestellt, während Wald-Quotienten-Schätzungen für Gene mit nur einem Instrument angegeben sind. Orange gefüllte Symbole kennzeichnen ATG7, RPTOR, MAP1LC3A und CHMP6, die die Reproduktionskriterien erfüllten (P < 0,05 und BH-FDR < 0,20). Punkte und horizontale Linien stellen jeweils Odds Ratios (ORs) und 95 %-Konfidenzintervalle (CIs) dar; die vertikale gestrichelte Linie zeigt OR = 1 an. Die ORs sind auf einer logarithmischen Skala dargestellt. GBM = Glioblastom. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 3: Querschnittsweite transkriptomische Bewertung der vier MR-replizierten Gene. Expression von ATG7, RPTOR, MAP1LC3A und CHMP6 in GSE196533 (61 Gliomproben des Grades 4, als GBM in den hinterlegten Metadaten annotiert, und neun nicht-neoplastische Gehirnproben); (A) GSE4290 (77 GBM- und 23 nicht-tumoröse Gehirnproben); (B) und GSE116520 (17 Tumor-Kern-, 17 patientenangepasste peritumorale und acht nicht-neoplastische Kontrollproben); (C) Die Boxen zeigen Median und Interquartilsabstand (IQR) an, die Whisker erstrecken sich bis 1,5 × IQR, und die Punkte repräsentieren individuelle Proben. (D) Studienspezifische log₂-Fold-Changes und Random-Effects-Metaanalyse zum Vergleich von Tumor- oder Tumor-Kern-Gewebe mit nicht-neoplastischem Gehirngewebe. Die Punkte und horizontalen Linien zeigen studienspezifische Schätzungen und 95 %-Konfidenzintervalle an, während die Rauten geschätzte gepoolte Werte nach der Methode der eingeschränkten maximalen Wahrscheinlichkeit mit Hartung–Knapp-Inferenz darstellen. Positive Werte deuten auf eine höhere Expression im Tumorgewebe hin. FDR = falsche Entdeckungsrate; GBM = Glioblastom; MR = Mendelsche Randomisierung. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4: Quer-Saat-Konsens und funktionale Konvergenz von virtuellen Einzelzell-Knockouts in malignen Glioblastomzellen. (A) Anzahl der robusten downstream Gene, die für jedes Ziel unter Verwendung des vorgegebenen Signifikanzkriteriums in mindestens drei von fünf Durchläufen sowie des strengeren Sensitivitätskriteriums von vier von fünf Durchläufen identifiziert wurden. (B) Paarweiser Überlapp der robusten downstream Gene; die Zellen zeigen Überlappzahlen und Jaccard-Ähnlichkeitskoeffizienten. (C) Bipartites Netzwerk, das die vier virtuellen Knockout-Ziele (Rauten) mit den robusten downstream Genen (Kreise) verbindet. Die Farbe der Kanten kennzeichnet das gestörte Ziel, während die Größe der Kreise und die Farbintensität die Anzahl der Ziele anzeigen, die jeweils auf eine downstream-Reaktion reagieren. Die Kanten repräsentieren Assoziationen zwischen reproduzierbaren computergestützten Störungen, nicht direkte molekulare Interaktionen. (D) Signifikante Anreicherung der Gene Ontology (GO) für den gepoolten Konsenssatz aus 17 Genen. Die Balkenlänge entspricht −log10(BH-FDR), die gestrichelte Linie zeigt die Signifikanzschwelle (BH-FDR = 0,05) an, und die Farben kennzeichnen biologischen Prozess (BP), zelluläre Komponente (CC) und molekulare Funktion (MF). Für die funktionelle Anreicherungsanalyse wurde der patientengewichtete Hintergrund des regulatorischen Netzwerks mit 1.004 Genen verwendet. Kein KEGG- oder Reactome-Pfad blieb nach Benjamini–Hochberg-Korrektur signifikant. Abkürzungen: BH-FDR = Benjamini–Hochberg-Falschentdeckungsrate; BP = biologischer Prozess; CC = zelluläre Komponente; GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes; MF = molekulare Funktion. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.
Tabelle 1: Überblick über die Datenquellen und ihre analytischen Rollen in der Studie. Die Stichprobenanzahlen repräsentieren die Beobachtungen, die in die vorliegenden Analysen einbezogen wurden. BH-FDR = Benjamini–Hochberg-Falsch-Entdeckungsrate; cis-eQTL = cis-Expressionsquantitatives Merkmal-Lokus; EGA = Europäisches Genom-Phänom-Archiv; GBM = Glioblastom; GTEx = Genotyp-Gewebe-Expression; GWAS = genomweite Assoziationsstudie; IV = instrumentelle Variable; MR = Mendelsche Zufallsstichprobe; RNA-seq = RNA-Sequenzierung. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Tabelle 2: Transkriptomische Belege über Kohorten hinweg für die vier MR-replizierten Gene. Die Werte stellen log₂-Fold-Changes für GBM- oder Tumor-Kerngewebe im Vergleich zu nicht-neoplastischem Hirngewebe dar. Poolschätzungen wurden mithilfe von Random-Effects-Modellen mit eingeschränkter Maximum-Likelihood und Hartung–Knapp-Inferenz ermittelt. CI = Konfidenzintervall; FDR = Falsch-Entdeckungs-Rate. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Abbildung 1 (zusätzlich): Sensitivitätsanalysen der Mendelschen Zufallsstichprobe im Entdeckungsstadium für die vier replizierten Gene. Jedes der Gene MAP1LC3A, ATG7, RPTOR und CHMP6 ist wie folgt dargestellt: (A) Analyse mit Auslassung einzelner Studien (Leave-one-out-Analyse); (B) Streudiagramm zum Vergleich der Methoden; und (C) Inversionsplot.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Abbildung 2, Ergänzende Informationen: Diagnoseplots zur Mendelschen Zufallsstichprobenziehung in der Replikationsphase für die drei replizierten Gene mit mehreren Instrumenten. MAP1LC3A, RPTOR und CHMP6 sind jeweils wie folgt dargestellt: (A) Streudiagramm zum Vergleich der Methoden; und (B) Einfüllplot. ATG7 wurde mithilfe eines Wald-Quotienten mit einem einzigen Instrument geschätzt und war daher nicht für Diagnoseplots mit mehreren Instrumenten geeignet.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Abbildung 3, Zusatzmaterial: Hauptkomponentenanalyse der drei unabhängigen transkriptomischen Kohorten. (A) GSE196533 RNA-Sequenzierungs-Kohorte. (B) GSE4290 Affymetrix GPL570-Kohorte. (C) GSE116520 Illumina GPL10558-Kohorte. Die Hauptkomponentenanalyse wurde anhand der 500 Gene oder Sonden mit der größten Varianz innerhalb jeder Kohorte durchgeführt. Jeder Punkt repräsentiert eine biologische Probe; die Farben kennzeichnen die Gewebegruppen; und die Achsenbeschriftungen geben die von jeder Hauptkomponente erklärte Varianz an.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Erweiterte Abbildung 4: Nachweisbarkeit der vier mittels MR replizierten Gene in adulten malignen GBM-Zellen. (A) Gesamtnachweisraten von ATG7, RPTOR, MAP1LC3A und CHMP6 unter 4.916 malignen Zellen aus 20 adulten IDH-Wildtyp-GBM-Tumoren in GSE131928/SCP393. (B) Patientenebene-Nachweisraten für dieselben Gene. Die Farbe zeigt den Prozentsatz maligner Zellen mit TPM > 0 an.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Abbildung 5, Zusatzmaterial: Reproduzierbarkeit der downstream-Signale bei Cross-Seeding in virtuellen Knockouts. (A) Die Anzahl der BH-FDR-signifikanten downstream Gene, die in fünf unabhängigen Durchläufen für jedes Ziel identifiziert wurden. Die Punkte repräsentieren zufällige Startwerte (Seeds), und die horizontalen Balken zeigen die Mediane an. (B) Downstream Gene, die in mindestens drei von fünf Durchläufen signifikant waren. Die x-Achse zeigt die Anzahl der signifikanten Durchläufe, Farben kennzeichnen das gestörte Zielgen, und die Punktgröße repräsentiert die mediane scTenifoldKnk Z-Statistik. Das Zielgen selbst wurde ausgeschlossen.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Abbildung 6, Zusatzmaterial: Pooled-, gemeinsame- und strikte-Schwellenwert-Analysen zur Anreicherungsempfindlichkeit. Funktionelle Anreicherung von (A) dem gepoolten Konsens, definiert durch Signifikanz in mindestens drei von fünf Durchläufen; (B) Genen, die von mindestens zwei Zielstrukturen unter dem Drei-von-fünf-Kriterium gemeinsam genutzt werden; (C) dem gepoolten strikten Konsens, definiert durch Signifikanz in mindestens vier von fünf Durchläufen; und (D) Genen, die von mindestens zwei Zielstrukturen unter dem Vier-von-fünf-Kriterium gemeinsam genutzt werden. Die x-Achse zeigt −log₁₀(nominelles P), die Punktgröße spiegelt die Überlappungsanzahl wider, und die Farben kennzeichnen die Anmerkungsdatenbank. Gefüllte Punkte erreichten ein BH-FDR < 0,05, während offene Punkte explorative Terme mit nominellem P < 0,05 darstellen. Als Hintergrund diente durchgängig ein regulatorisches Netzwerk aus 1.004 Genen.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Zusatzabbildung 7: Zielspezifische funktionelle Anreicherung robuster virtueller Knockout-Antworten. Anreicherung robuster downstream Gene nach virtuellem Knockout von (AATG7 (BRPTOR; (C) MAP1LC3A; und (D) CHMP6. Die x-Achse zeigt −log₁₀(Nominal P), wobei die Punktgröße die Überlappungshäufigkeit widerspiegelt und die Farben GO: BP, GO: CC, GO: MF, KEGG oder Reactome kennzeichnen. Gefüllte Punkte erreichten den BH-FDR < 0,05, während offene Punkte explorative Termini mit nominellem P < 0,05. Die 1.004 Gene, aus denen das patientenbasierte regulatorische Netzwerk besteht, dienten als Hintergrund für die Anreicherung.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Zusatzdatei 1: Zusatztabellen zur Unterstützung der mehrstufigen Priorisierung eisenabhängiger Zelltod-generelater Gene, die mit der Anfälligkeit für Glioblastom assoziiert sind. Diese Zusatzdatei enthält alle ergänzenden Tabellen, die die genetischen, transkriptomischen und Einzelzell-Analysen unterstützen. Dazu gehören die Screening- und Selektionsverfahren für eisenabhängige Zelltod-generelatierte Gene und genetische Instrumente; vollständige Ergebnisse der mendelschen Randomisierung aus Entdeckungs- und Reproduktionsphase sowie Sensitivitätsanalysen, einschließlich Bewertungen von Heterogenität, horizontaler Pleiotropie und MR-PRESSO; Kohortenmerkmale, Differenzialexpressionsanalysen und Metaanalysen über Kohorten hinweg für genetisch priorisierte Gene; sowie die virtuellen Einzelzell-Knockout-Analysen, Reproduzierbarkeitsbewertungen, funktionellen Anreicherungsanalysen und Ergebnisse zu gemeinsamen Netzwerken.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Zusätzliche Codierungsdatei 1: R- und Python-Skripte, die für die in dieser Studie beschriebenen Mendelschen Zufallsanalysen, transkriptomischen Analysen, virtuellen Knockout-Analysen auf Einzelzell-Ebene, funktionellen Anreicherungsanalysen und Netzwerkanalysen verwendet wurden.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Codierungsdatei 2: Unterstützende Analyse-Skripte, Plotroutinen und Workflow-Tools, die zur Erzeugung der Studienergebnisse, Abbildungen und ergänzenden Ausgaben verwendet wurden.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.