Vorhersageergebnisse von PLB- und Prostatakrebs-Zielen
Die PubChem-CID von PLB ist 10205, mit dem IUPAC-Namen: 5-Hydroxy-2-methylnaphthalin-1,4-dion, SMILES: CC1=CC(=O)C2=C(C1=O)C=CC=C2O, InChIKey: VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N, InChI: InChI=1S/C11H8O3/c1-6-5-9(13)10-7(11(6)14)3-2-4-8(10)12/h2-5,12H,1H3, molare Masse: 188,18, Summenformel: C11H8O3, CAS-Nummer: 481-42-5. Nach Entfernung von Duplikaten wurden in dieser Studie mithilfe der Datenbanken SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP und HERB 500 potenzielle PLB-Ziele vorhergesagt (Zusätzliche Tabelle S1). Nach Entfernung von Duplikaten wurden mithilfe der Datenbanken GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD und HERB 1.199 potenzielle Ziele für Prostatakrebs vorhergesagt (Zusätzliche Tabelle S2).
Wirkmechanismus von PLB bei Prostatakrebs, vorhergesagt mittels Netzwerkpharmakologie
Ein Venn-Diagramm wurde zur Analyse des Zusammenspiels der Zielstrukturen erstellt, wobei sich 151 überlappende Zielstrukturen ergaben (Abbildung 1). Anschließend wurde für diese gemeinsamen Gene ein Protein-Protein-Interaktionsnetzwerk (PPI) aufgebaut (Abbildung 2) und anhand des Knotengrads visualisiert, wobei dunkleres Rot und größere Knoten auf einen höheren Grad hinweisen (Abbildung 3). Mit der Cytoscape-Software wurden die zentralen Zielgene (die 20 höchsten) unter den gemeinsamen Genen analysiert, wobei TP53 den höchsten Grad mit 112 aufwies, gefolgt von AKT1 mit einem Grad von 111 (Abbildung 4).
Anschließend wurden die gemeinsamen Gene in die DAVID-Datenbank für die Genontologie (GO) und KEGG-Pfadwege-Anreicherungsanalysen hochgeladen. Die GO-Analyse ergab 4.156 biologische Prozesse (ergänzende Tabelle S3), 292 zelluläre Komponenten (ergänzende Tabelle S4) und 562 molekulare Funktionen (ergänzende Tabelle S5). Die jeweils 10 signifikantesten angereicherten Terme in jeder Kategorie wurden dargestellt (Abbildung 5A-C). Laut der KEGG-Analyse waren 187 Signalwege signifikant angereichert (ergänzende Tabelle S6), wobei die 10 wichtigsten in Abbildung 5D dargestellt sind. Dazu gehörten Signalwege, die mit Prostatakarzinom, Hepatitis B, Proteoglykanen beim Krebs, Resistenz gegen EGFR-Tyrosinkinase-Inhibitoren, Lipidstoffwechsel und Arteriosklerose, humaner Zytomegalievirus-Infektion, kolorektalem Karzinom, endokriner Resistenz, dem AGE-RAGE-Signalweg bei diabetischen Komplikationen und dem PI3K-Akt-Signalweg assoziiert sind.
Kernziele von PLB bei der Behandlung von Prostatakrebs
Die Netzwerkpharmakologie-Analyse identifizierte 151 gemeinsame Gene zwischen PLB und Prostatakarzinom. Basierend auf dem PPI-Netzwerk筛选ten wir die 20 potenziellen zentralen Zielgene mit der höchsten Verknüpfung: Tumorprotein p53 (TP53), AKT-Serin/Threonin-Kinase 1 (AKT1), Signaltransduktor und Aktivator der Transkription 3 (STAT3), Östrogenrezeptor 1 (ESR1), BCL2-Apoptoseregulator (BCL2), Interleukin 6 (IL6), epidermaler Wachstumsfaktor-Rezeptor (EGFR), Katenin beta 1 (CTNNB1), Tumornekrosefaktor (TNF), Phosphatase und Tensin-Homolog (PTEN), Caspase 3 (CASP3), Mitogen-aktivierte Proteinkinase 3 (MAPK3), Hitzeschockprotein 90 alpha Familie Klasse A Mitglied 1 (HSP90AA1), SRC-Protonkogen, nichtrezeptorgebundene Tyrosinkinase (SRC), Peroxisom-Proliferator-aktivierter Rezeptor Gamma (PPARG), mechanistisches Zielprotein der Rapamycin-Kinase (MTOR, Hitzeschockprotein 90 alpha Familie Klasse B Mitglied 1 HSP90AB1), Glykogensynthasekinase 3 Beta (GSK3B), Prostaglandin-Endoperoxid-Synthase 2 (PTGS2und Matrix-Metallopeptidase 9 (MMP9). TP53 zeigten die höchste Konnektivität auf, gefolgt von AKT1, was darauf hindeutet, dass diese möglicherweise Schlüsselziele darstellen.
Um endgültige Zielstrukturen für Docking- und molekulardynamische Simulationen auszuwählen, priorisierten wir Gene, die für pro-onkogene Proteine mit verfügbaren Kristallstrukturen und definierten Bindungstaschen kodieren, einschließlich AKT1, STAT3, ESR1, BCL2, IL6, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC, PPARG, MTOR, HSP90AB1, GSK3B, PTGS2 und MMP9. Umgekehrt unterdrücken Tumorsuppressorgene, einschließlich TP53, wurden ausgeschlossen, da sie nicht mit der therapeutischen Strategie der Zielinhibition übereinstimmen.
Daher wurden weitere molekulare Docking-Studien durchgeführt. Die Ergebnisse zeigten, dass PLB mit AKT1 über TRP80, SER205, LEU210, LEU264 und LYS268 interagiert, mit einer Bindungsenergie (BE) von -7,764 kcal/mol27; PLB interagiert mit STAT3 über GLU612, SER613, ARG609 und PRO639, mit einer BE von -5,149 kcal/mol28; PLB interagiert mit ESR1 über LEU346, PHE404, ALA350, LEU387 und LEU391, mit einer BE von -7,165 kcal/mol29; PLB interagiert mit BCL2 über LYS53, PHE54 und HIS50, mit einer BE von -5,564 kcal/mol30; PLB interagiert mit IL6 über GLN28, LYS27 und ARG24, mit einer BE von -4,462 kcal/mol31; PLB interagiert mit EGFR über LEU778, LEU707 und LEU789, mit einer BE von -6,255 kcal/mol32; PLB interagiert mit TNF über TYR59, GLY121 und LEU120, mit einer BE von -6,570 kcal/mol33; PLB interagiert mit MAPK3 über ALA69, VAL56, ILE48, LEU124, MET125 und LEU173, mit einer BE von -7,369 kcal/mol34; PLB interagiert mit HSP90AA1 über LEU107, PHE138, TYR139 und TRP162, mit einer BE von -8,947 kcal/mol35; PLB interagiert mit SRC über LEU276, TYR343, MET344, ALA296, LEU396 und VAL284, mit einer BE von -7,469 kcal/mol36; PLB interagiert mit PPARG über LEU330, ARG288, ILE326, MET329 und ALA292, mit einer BE von -6,538 kcal/mol37; PLB interagiert mit MTOR über ALA2073, SER2069 und HIS2024, mit einer BE von -4,672 kcal/mol38; PLB interagiert mit HSP90AB1 über TYR134, PHE133, TRP157 und LEU102, mit einer BE von -6,928 kcal/mol39; PLB interagiert mit GSK3B über VAL70, VAL135 und ALA83, mit einer BE von -6,799 kcal/mol40; PLB interagiert mit PTGS2 über VAL315, THR561, ARG311 und ILE558, mit einer BE von -5,081 kcal/mol41; PLB interagiert mit MMP9 über LEU187, ALA189, MET247, TYR248, LEU188, HIS226 und VAL223, mit einer BE von -7,101 kcal/mol42. Mit Ausnahme von IL6 und MTOR lagen die Bindungsenergien von PLB mit den übrigen Proteinen unter -5 kcal/mol, was darauf hindeutet, dass PLB möglicherweise stabil an diese Proteine bindet (Tabelle 1).
Anschließend wurden Molekulardynamik-Simulationen durchgeführt, um die Wechselwirkungen von PLB mit diesen Zielproteinen weiter zu analysieren und die Bindungsstabilität zu überprüfen. Obwohl einige Verbindungen in den Docking-Scores hoch eingestuft wurden, zeigten vorläufige Molekulardynamik-Simulationen einen frühen Ligandenabdrift oder schwere konformationelle Verzerrungen in mehreren Systemen. Daher schlossen wir diese instabilen Komplexe aus und behielten nur jene bei, die nach der anfänglichen Relaxation konsistente Bindungspositionen beibehielten, und setzten sie als Kandidaten für erweiterte Molekulardynamik-Simulationen fort. Die endgültig beibehaltenen Zielstrukturen waren AKT1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S1), ESR1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S2), BCL2 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S3), EGFR (Supplementary File 1—Supplementary Figure S4), TNF (Supplementary File 1—Supplementary Figure S5), MAPK3 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S6), HSP90AA1 (Supplementary File 1—Supplementary Figure S7), SRC (Supplementary File 1—Supplementary Figure S8) und PPARG (Supplementary File 1—Supplementary Figure S9). Nach 200 ns Simulation stabilisierte sich der RMSD der Komplexstrukturen von PLB mit AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC und PPARG im Verlauf der Simulation allmählich (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel A). Gleichzeitig stabilisierten sich im Laufe der Simulation allmählich auch Parameter wie Rg (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel B), die mittlere quadratische Fluktuation (RMSF) (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel C), der Abstand zwischen Protein und Ligandenbindungsstelle (Dockstelle-Ligand) (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel D), die vergrabene lösungsmittelzugängliche Oberfläche (Buried SASA) (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel E) sowie die Überlagerung der Bindungskonformation (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel F). Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass die Protein-Ligand-Komplexe während der gesamten Simulationen strukturell stabil blieben. RMSD, Rg, RMSF, Protein-Ligand-Abstand und vergrabene SASA erreichten nach und nach stabile Werte, was auf einen kompakten Komplex mit begrenzten atomaren Fluktuationen und anhaltender Ligandenbesetzung innerhalb der Bindungstasche hindeutet. Zusätzlich blieb die Kontaktfläche zwischen Plumbagin und dem Protein über die Zeit hinweg relativ konstant. Van-der-Waals-, hydrophobe und elektrostatische Wechselwirkungen zeigten ebenfalls stabile Verläufe während der gesamten Simulationen, was die Gesamtstabilität der Protein-Plumbagin-Komplexe weiter untermauert (siehe Supplementary File 1—Supplementary Figure S1-S9, Panel G).
Unter Berücksichtigung der Solvatationsenergie und einer umfassenden Bewertung von RMSD, Rg, Distanz, verborgener SASA sowie Interaktionsenergien wurden stabile Komplex-Trajektorien ausgewählt, um mittels der MM-PBSA-Methode (Molecular Mechanics-Poisson Boltzmann Surface Area) bindungsenergiebezogene Terme zu berechnen. Um Vertrauensmaße für die angegebenen Affinitätsränge bereitzustellen, werden alle Bindungsenergien als Mittelwert ± Standardfehler des Mittelwerts (SEM) angegeben, berechnet aus Snapshots, die aus den equilibrierten MD-Trajektorien extrahiert wurden (Tabelle 2). Von diesen wies AKT1 die stärkste negative Bindungsenergie auf, gefolgt von ESR1, HSP90AA1, SRC und PPARG, was darauf hindeutet, dass PLB stabil an diese Zielproteine binden könnte.
Darüber hinaus analysierte diese Studie die wechselwirkenden Reste zwischen PLB und den Zielstrukturen (im Detail in Tabelle 3 dargestellt) und fand heraus, dass PLB hauptsächlich über Wasserstoffbrückenbindungen (siehe Zusatzdatei 1—Zusatzabbildung S1–S9, Panel I), hydrophobe Wechselwirkungen und van-der-Waals-Kräfte stabil an die Zielproteine bindet. Durch die Analyse des Beitrags der Aminosäure-Bindungsenergien (siehe Zusatzdatei 1—Zusatzabbildung S1–S9, Panel H) sowie der Protein-PLB-Wechselwirkungen zeigte sich Folgendes: Bei AKT1 sind die Schlüsselaminosäuren für die PLB-Bindung TRP80 und LEU264, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei ESR1 sind die Schlüsselaminosäuren LEU346 und LEU525, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle, hydrophobe Wechselwirkungen eine sekundäre Rolle und elektrostatische Wechselwirkungen eine unterstützende Rolle spielen; bei BCL2 sind die Schlüsselaminosäuren TYR108 und PHE104, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei EGFR sind die Schlüsselaminosäuren MET1002 und TYR998, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei TNF-α sind die Schlüsselaminosäuren TYR59 und HIE15, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei MAPK3 sind die Schlüsselaminosäuren TYR53 und LEU173, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei HSP90AA1 sind die Schlüsselaminosäuren PHE138 und LEU107, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei SRC sind die Schlüsselaminosäuren LEU276 und LEU396, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen; bei PPARG sind die Schlüsselaminosäuren LEU330 und ILE326, wobei van-der-Waals-Kräfte die Hauptrolle spielen und elektrostatische sowie hydrophobe Wechselwirkungen eine untergeordnete Rolle einnehmen.
Alle in dieser Studie verwendeten Proteinkristallstrukturen, mit Ausnahme von BCL2, wurden zusammen mit bekannten Inhibitoren kovalent kristallisiert. Um die Zuverlässigkeit unseres Docking-Ansatzes und das Bindungspotential von PLB weiter zu überprüfen, definierten wir die aktiven Bindungstaschen basierend auf den ursprünglichen Bindungsstellen der Inhibitoren. Sowohl PLB als auch die jeweiligen nativen Inhibitoren wurden in dieselben Taschen gedockt, und ihre freien Bindungsenergien wurden berechnet und verglichen. Für jedes Target wurden nur die Docking-Posen des nativen Inhibitors für den Energievergleich berücksichtigt, die die kristallographische Bindungskonformation genau reproduzierten. Wie in Tabelle 4 dargestellt, waren die freien Bindungsenergien von PLB in allen acht Targets vergleichbar mit denen der jeweiligen nativen Inhibitoren, was darauf hindeutet, dass PLB eine ähnliche Affinität zur Taschenbindung wie diese validierten aktiven Verbindungen aufweist. Dieses Ergebnis legt nahe, dass PLB als neuartiges Gerüstmolekül eine aussichtsreiche chemische Vorlage für die Entwicklung neuer Wirkstoffe gegen Prostatakrebs darstellen könnte, die auf diese onkogenen Zentren abzielen.
Prognostischer Wert von Zielgenen beim Prostatakarzinom
Als repräsentative Zielstrukturen untersuchten wir die prognostische Bedeutung von SRC und MAPK3 beim Prostatakarzinom anhand von TCGA-Datensätzen. Bei SRC zeigte die Gradientenverteilungsanalyse, dass ein höherer SRC-Expressionsgrad mit einer erhöhten Mortalität und signifikant kürzeren Überlebenszeiten während der Nachbeobachtung assoziiert war (Abbildung 6A). Die Kaplan-Meier-Überlebensanalyse (Abbildung 6B) bestätigte, dass die Gruppe mit hoher Expression ein deutlich schlechteres Gesamtüberleben aufwies als die Gruppe mit niedriger Expression (Log-Rank-P = 0,0317, HR = 9,708, 95 % KI: 1,22–77,234). Die kumulativen Hazard-Kurven wiesen auf eine höhere Sterbewahrscheinlichkeit zu jedem Zeitpunkt in der Kohorte mit hoher Expression hin und identifizierten SRC somit als Risikofaktor für eine ungünstige Prognose. Zeitabhängige ROC-Kurven (Abbildung 6C) zeigten AUC-Werte von 0,99, 0,878 und 0,829 nach 1, 3 bzw. 5 Jahren, alle über 0,7 liegend, was auf eine hervorragende Vorhersageleistung für kurz- und langfristiges Überleben hindeutet. Insgesamt legen diese Ergebnisse nahe, dass ein hoher SRC-Expressionsgrad als unabhängiger molekularer Marker für eine ungünstige Prognose beim Prostatakarzinom dienen könnte.
Für MAPK3 zeigte die Gradientenverteilung, dass eine erhöhte Expression mit stärkerem Tumorfortschritt und kürzerem progressionsfreiem Überleben assoziiert war, was vorläufig MAPK3 als potenzielles Risikogen nahelegt (Abbildung 7A). Die Kaplan-Meier-Analyse des progressionsfreien Überlebens (Abbildung 7B) ergab, dass die Gruppe mit hoher Expression ein signifikant kürzeres progressionsfreies Überleben aufwies als die Gruppe mit niedriger Expression (Log-Rank-P = 0,0298, HR = 1,581, 95 % KI: 1,046–2,391), wobei die mediane Dauer des progressionsfreien Überlebens in der Gruppe mit hoher Expression lediglich 5,8 Jahre betrug. Kumulative Hazard-Kurven bestätigten weiterhin eine höhere Progressionswahrscheinlichkeit zu jedem Zeitpunkt. Zeitabhängige ROC-Kurven (Abbildung 7C) zeigten jedoch AUC-Werte von nur 0,568, 0,563 und 0,574 nach 1, 3 bzw. 5 Jahren, alle deutlich unter 0,7, was darauf hinweist, dass MAPK3 allein einen begrenzten unabhängigen Vorhersagewert für das Risiko der Prostatakrebsprogression besitzt. Insgesamt korreliert ein hoher MAPK3-Expressionsgrad zwar mit einem schlechteren progressionsfreien Überleben beim Prostatakarzinom, seine Eignung als alleiniger prognostischer Indikator ist jedoch aufgrund der mäßigen Vorhersagegenauigkeit eingeschränkt.
Datennutzungsrichtlinie
Die in dieser Studie vorgestellten ursprünglichen Beiträge sind in dem Artikel oder den Zusatzmaterialien enthalten.

Abbildung 1: Schnittmenge von Plumbagin- und Prostatakrebs-Zielen. Blau stellt die Anzahl der Plumbagin-Ziele dar, Gelb die Anzahl der Prostatakrebs-Ziele.

Abbildung 2: Protein-Protein-Interaktionsnetzwerk der 151 überlappenden Zielstrukturen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 3: Visualisierung der 151 Kernziele basierend auf dem Knotengrad im Protein-Protein-Interaktionsnetzwerk. Größere Kreise und intensivere Farben repräsentieren höhere Gradwerte im Netzwerk. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4: Gradwerte der 20 wichtigsten Kernziele. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 5: Anreicherungsanalyse der 151 Kernziele. (A) Die 10 wichtigsten Terme in der Kategorie biologische Prozesse der GO-Analyse, (B) die 10 wichtigsten Terme in der Kategorie zelluläre Komponente der GO-Analyse und (C) die 10 wichtigsten Terme in der Kategorie molekulare Funktion der GO-Analyse. (D) Die 10 am stärksten angereicherten KEGG-Pfade der 151 Kernziele. Abkürzungen: GO = Genontologie; KEGG = Kyoto-Enzyklopädie der Gene und des Genoms. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 6: Prognostische Analyse von SRC beim Prostatakarzinom (TCGA). (A) Gradientenverteilung der SRC-Expression in Abhängigkeit vom Überlebensstatus und Nachbeobachtungszeitraum. (B) Kaplan-Meier-Gesamtüberlebenskurven für Gruppen mit hoher bzw. niedriger SRC-Expression (Log-Rank-P = 0,0317, HR = 9,708, 95 % KI: 1,22–77,234). (C) Zeitabhängige ROC-Kurven nach 1, 3 und 5 Jahren (AUC = 0,990, 0,878 und 0,829). Abkürzungen: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = Hazard Ratio; KI = Konfidenzintervall; ROC = receiver operating characteristic; AUC = Fläche unter der Kurve. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 7: Prognoseanalyse von MAPK3 beim Prostatakarzinom (TCGA). (A) Gradientenverteilung der MAPK3-Expression nach Progressionsstatus und progressionsfreier Zeit. (B) Kaplan-Meier-Kurven der progressionsfreien Überlebenszeit für Gruppen mit hoher bzw. niedriger MAPK3-Expression (Log-Rank-P = 0,0298, HR = 1,581, 95 % KI: 1,046–2,391). (C) Zeitabhängige ROC-Kurven nach 1, 3 und 5 Jahren (AUC = 0,568, 0,563 und 0,574). Abkürzungen: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = Hazard Ratio; KI = Konfidenzintervall; ROC = receiver operating characteristic; AUC = Fläche unter der Kurve. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
Tabelle 1: Bindungsenergien und wechselwirkende Reste von Plumbagin bei der molekularen Docking-Analyse mit wichtigen Zielmolekülen. Die angeführten Referenzen beziehen sich auf PDB-Struktureinträge (zuweisungen der kristallographischen Liganden-Bindungsstelle) und nicht auf biologische Validierungsstudien, wobei die entsprechenden PDB-IDs ausdrücklich angegeben sind. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Tabelle 2: Bindungsenergien und deren Komponenten der Plumbagin-Target-Komplexe unter stationären Bedingungen (kJ/mol). Pro Komplex wurde nur eine einzelne 200 ns lange Trajektorie mit einem einzigen Zufalls-Startgeschwindigkeitswert durchgeführt, ohne parallele Wiederholungen. Die gesamte konformationelle Stichprobe wurde aus dem im Gleichgewicht befindlichen Plateaubereich zwischen 100 und 200 ns jeder Trajektorie entnommen. ΔEele repräsentiert die elektrostatische Wechselwirkung zwischen dem kleinen Molekül und dem Protein, ΔEvdw die van-der-Waals-Wechselwirkung, ΔEpol die polare Solvatisierungsenergie, die die elektrostatische Potentialenergie darstellen kann, und ΔEnonpol die unpolare Solvatisierungsenergie, die die hydrophobe Wechselwirkung darstellen kann. ΔEMMPBSA = ΔEele + ΔEvdw + ΔEpol + ΔEnonpol. Die Gibbs-Bindungsenergie, ΔGbind = ΔEMMPBSA + -TΔS. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Tabelle 3: Schematische Darstellung der wechselwirkenden Reste aus der Molekulardynamik-Simulation von Plumbagin mit Zielproteinen. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Tabelle 4: Dockingsbindungsenergien von Plumbagin und nativ co-kristallisierten Inhibitoren für die neun Zielproteine. Bitte klicken Sie hier, um diese Tabelle herunterzuladen.
Zusatzdatei 1: Analysen von Molekulardynamik-Simulationen der Komplexe von Plumbagin mit AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF-α, MAPK3, HSP90AA1, SRC und PPARG. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Erweiterte Tabelle S1: Mögliche Zielstrukturen von PLB, vorhergesagt durch die Datenbanken SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP und HERB.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Erweiterte Tabelle S2: Potentielle Zielstrukturen des Prostatakarzinoms, vorhergesagt anhand der Datenbanken GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD und HERB.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Tabelle S3: Biologische GO-Prozesse, die für die 151 überlappenden Zielstrukturen von PLB und Prostatakrebs angereichert sind.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Tabelle S4: GO-zelluläre Komponenten, die für die 151 überlappenden Zielstrukturen von PLB und Prostatakrebs angereichert sind.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Tabelle S5: GO-molekulare Funktionen, die für die 151 überlappenden Zielstrukturen von PLB und Prostatakrebs angereichert sind.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Ergänzende Tabelle S6: KEGG-Wege, die für die 151 überlappenden Zielstrukturen von PLB und Prostatakrebs signifikant angereichert sind.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.