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Die Studie wurde gemäß den Leitlinien für Basis- und klinische Pharmakologie sowie Toxikologie für experimentelle und klinische Studiendurchgeführt. Alle Tierversuchsprotokolle wurden vom Tierethikkomitee des Zweiten Angeschlossenen Krankenhauses, Zhejiang Universität Medizinische Fakultät (Genehmigungsnr. 20230102) genehmigt, und alle Experimente wurden gemäß den Richtlinien des Tierethikausschusses durchgeführt. Die Studie wurde im Einklang mit den ARRIVE-Richtlinien durchgeführt.
Screening von Schlüsselkomponenten und Zielen mittels Netzwerkpharmakologie
Aktive Bestandteile von Fritillaria cirrhosa D. Don, Lonicera japonica Thunb., Glehnia littoralis F. Schmidt ex Miq. und Adenophora stricta Miq. wurden aus der Traditional Chinese Medicine Systems Pharmacology Database (TCMSP; abgerufen am 12. März 2024) abgerufen. Kandidaten wurden nach folgenden ADME-Kriterien getestet: orale Bioverfügbarkeit (OB) ≥ 30 %, Arzneimittelähnlichkeit (DL) ≥ 0,18 und Caco-2-Permeabilität ≥ −0,425. Verbindungen, die alle drei Kriterien erfüllten, wurden als mögliche Wirkstoffe für spätere Analysen beibehalten.
Die kanonische Simplified Molecular Input Line Entry System (SMILES)-Struktur von β-Sitosterol wurde von PubChem (abgerufen am 18. März 2024) gewonnen und in SwissTargetPrediction (Zugriff am 21. März 2024) zur Zielvorhersage importiert. Homo sapiens wurde als Zielart ausgewählt. Potenzielle Ziele wurden anhand der strukturellen 2D- und 3D-Ähnlichkeit zwischen β-Sitosterol und bekannten Liganden in der Datenbank vorhergesagt. Vorhergesagte Ziele mit einer Wahrscheinlichkeit größer als 0 wurden beibehalten und doppelte Einträge entfernt.
COPD-assoziierte Gene wurden aus der Therapeutic Target Database (TTD; abgerufen am 25. März 2024) und der Comparative Toxicogenomics Database (CTD; abgerufen am 28. März 2024) mit dem Schlüsselwort "chronisch obstruktive Lungenerkrankung" abgerufen. Nach der Entfernung duplizierter Gene wurden die COPD-assoziierten Gene mit den vorhergesagten β-Sitosterol-Zielen gekreuzt, um potenzielle Kandidatenziele zu identifizieren, die potenziell an den therapeutischen Wirkungen von β-Sitosterol gegen COPD beteiligt sind.
Molekulare Andockung von β-Sitosterol und Generativer Relativität
Die dreidimensionale Struktur von β-Sitosterol im SDF-Format wurde aus der PubChem-Datenbank abgerufen (abgerufen am 2. Juni 2026), während die Kristallstruktur des Glukokortikoidrezeptors (GR) aus der Research Collaboratory for Structural Bioinformatics Protein Data Bank (RCSB PDB; abgerufen am 3. Juni 2026) entnommen wurde. Nach der standardmäßigen Vorbereitung der Liganden- und Rezeptorstrukturen wurde das molekulare Andocken über die CB-Dock2 Online-Plattform durchgeführt (abgerufen am 3. Juni 2026). Die vorbereiteten Ligand- und Rezeptordateien wurden auf die Plattform hochgeladen, und Andockberechnungen wurden mit den Standardparametern durchgeführt.
Funktionelle Anreicherungsanalyse der Genontologie (GO) und der Kyoto-Enzyklopädie der Gene und Genome (KEGG)
Alle vorhergesagten Zielgene von β-Sitosterol wurden der funktionellen Anreicherung von GO und KEGG-Signalweg-Anreicherungsanalysen unterzogen. Anreicherungsergebnisse, darunter signifikant angereicherte biologische Prozesse, zelluläre Komponenten, molekulare Funktionen und Signalwege, wurden sortiert und in Supplementary File 1 für die spätere bioinformatische Analyse gespeichert.
Tiermodellierung und -gruppierung
Die Stichprobengröße wurde auf sechs Tiere pro Gruppe festgelegt, basierend auf einer früheren Studie, die eine a priori Power-Analyse mit G*Power-Software (α = 0,05, Leistung = 0,80) durchführte und zeigte, dass n = 6 ausreichend ist, um biologisch relevante Unterschiede unter vergleichbaren experimentellen Bedingungenzu erkennen. Männliche C57BL/6 Mäuse im Alter von 6–8 Wochen (20 ± 2 g) wurden zufällig fünf Gruppen zugeteilt: Kontrollgruppe, COPD-Modellgruppe, COPD + Dexamethason (DEX) Gruppe, COPD + β-Sitosterol Gruppe und COPD + DEX + β-Sitosterol Gruppe. Die Mäuse wurden unter standardmäßigen Laborbedingungen (25 °C, 12 Stunden Hell/Dunkel-Zyklus) untergebracht, mit freiem Zugang zu normalem Futter und Wasser, und durften sich eine Woche vor den Experimenten akklimatisieren.
Für das COPD-Modell wurden die Mäuse in eine Ganzkörper-E-Zigarettenrauch-Expositionskammer (63 cm × 55 cm × 45 cm) gesetzt und 12 Wochen lang dem üblichen Zigarettenrauch ausgesetzt. Jede Zigarette enthielt 10 mg Teer, 0,9 mg Nikotin und 10 mg Kohlenmonoxid. Die Rauchexposition erfolgte zweimal täglich (5 Tage pro Woche) um 9:30 Uhr und 15:00 Uhr, wobei Rauch aus 18 Zigaretten erzeugt wurde, die jeweils 90 Minuten proSitzung in die Kammer gebracht wurden.
Um die therapeutischen Wirkungen der Interventionen zu bewerten, wurde nach 8 Wochen Zigarettenrauchexposition die Medikamentenverabreichung eingeleitet und für die restlichen 4 Wochen fortgesetzt. Ab Woche 9 erhielten die Mäuse in den jeweiligen Behandlungsgruppen täglich intragastrische Verabreichung von DEX (1 mg/kg)28 oder β-Sitosterol (50 mg/kg)29,30 1 Stunde vor der Zigarettenrauchexposition. Frühere pharmakokinetische Studien berichteten eine orale Bioverfügbarkeit von etwa 4 % für β-Sitosterol bei Nagetieren31. Außerdem haben mehrere Mausstudien Dosen von 20 bis 50 mg/kg32 verwendet. Daher wurde eine Dosis von 50 mg/kg gewählt, um eine ausreichende systemische Exposition zu gewährleisten und dabei im üblicherweise in präklinischen Studien verwendeten Bereich zu bleiben.
Mäuse in der Kontrollgruppe waren der gefilterten Raumluft ausgesetzt, während Mäuse in der Modell- und Behandlungsgruppe ein gleichwertiges Volumen normaler Kochsalzlösung als Träger erhielten. Am Ende der experimentellen Phase wurden die Mäuse tief mit Isofluran betäubt, bis der Pedalreflex verloren ging, und durch Exblutination mittels Abdominal-Aortenblut eingeschläfert. Die Brusthöhle wurde sofort geöffnet, und intakte beidseitige Lungengewebe wurden sorgfältig entfernt, mit eiskaltem phosphatgepuffertem Kochsalzlösungslösungsmittel (PBS) abgespült und auf Eis gelegt. Für die Entnahme von bronchoalveolarer Spülflüssigkeit (BALF) wurde die Luftröhre kanuliert und mit kaltem, sterilem PBS abgespült, das sanft eingebracht und wiederholt entsorgt wurde, um die Lavageflüssigkeit zu sammeln. Lungengewebe und BALF-Proben wurden auf Eis aufbewahrt und anschließend für nachgelagerte Analysen verarbeitet.
BEAS-2B-Zellkultur
BEAS-2B menschliche bronchiale Epithelzellen wurden in Dulbeccos Modified Eagle Medium/F12 (DMEM/F12) erhalten, das 10 % fetales Rinderserum (FBS) und 1 % Penicillin/Streptomycin unter 5 % CO₂ bei 37 °C enthält.
CSE-Präparation und Beas-2B-Zellexposition
BEAS-2B-Zellen wurden mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung gewaschen und in 24-Bohrloch-Platten in dreifacher Schicht mit einer Dichte von 5 × 104-Zellen pro Bohrloch ausgesaat. Nach 12 Stunden Kultur erreichten die Zellen etwa 60 % Konfluenz und wurden dann CSE ausgesetzt. CSE wurde wie zuvor beschrieben frisch vorbereitet, mit geringfügigen Änderungen33. Kurz darauf wurde eine ungefilterte kommerzielle Zigarette kontinuierlich verbrannt, und der übliche Rauch wurde mit einer Vakuumpumpe bei konstanter Durchflussrate von 1,05 L/min (ca. −11 kPa Unterdruck) für etwa 5 Minuten in 10 mL serumfreies Medium geblasen, bis die Zigarette vollständig verbrannt war. Die gewonnene Lösung wurde zunächst einer Vorfiltration unterzogen, um große partikelhaltige Verunreinigungen zu entfernen, und anschließend mit einem 0,22 μm sterilen mikroporösen Filter sterilisiert, um Restpartikel zu eliminieren; die resultierende Aktienlösung wurde als 100 % CSE definiert. Alle frisch vorbereiteten CSE wurden unmittelbar nach der Filtration ohne Lagerung für die Zellbehandlung verwendet. Die Zellen wurden mit einem Medium stimuliert, das 2,5 % CSE enthielt. Nach 24 Stunden CSE-Behandlung wurden die Kultursupernatanten gesammelt und bei -40 °C für die anschließende Analyse34 gelagert.
Quantitative Echtzeit-Polymerase-Kettenreaktion (RT-qPCR)
Die Gesamt-RNA wurde aus BEAS-2B-Zellen mit einem Gesamt-RNA-Extraktionskit extrahiert und gemäß den Anweisungen des Herstellers rückwärts in cDNA transkribiert. RT-qPCR wurde anschließend mit einem Echtzeit-PCR-Detektionssystem und einem SYBR Green-basierten qPCR-Mastermix durchgeführt. Alle RT-qPCR-Experimente wurden mit drei biologischen Replikaten und drei technischen Replikaten pro Probe durchgeführt, um die Datenzuverlässigkeit sicherzustellen.
Jede qPCR-Reaktion wurde in einem Gesamtvolumen von 20 μL durchgeführt, das 10 μL SYBR Green qPCR-Mastermischung, 0,4 μL Forward Primer, 0,4 μL Reverse Primer, 2 μL verdünnte cDNA-Vorlage und 7,2 μL RNase-freies Wasser enthielt. Die Verstärkungsbedingungen waren wie folgt: erste Denaturierung bei 95 °C für 3 Minuten, gefolgt von 40 Denaturationszyklen bei 95 °C für 10 Sekunden und Glühen/Verlängerung bei 60 °C für 30 Sekunden. Die relativen Genexpressionsniveaus wurden mit der 2−ΔΔCt-Methode berechnet, wobei GAPDH als internes Referenzgen diente. Die in dieser Studie verwendeten Primer-Sequenzen sind in Ergänzungstabelle 1 aufgeführt.
Analyse intrazellulärer reaktiver Sauerstoffspezies (ROS)
Die intrazelluläre ROS-Produktion in BEAS-2B-Zellen wurde mit der fluorogenen Sonde 2′,7′-Dichlordihydrofluorescein-Diaacetat (DCFH-DA) bewertet und mittels Durchflusszytometrie analysiert. Während der Durchflusszytometrie-Erfassung wurde eine standardmäßige Vorwärtsstreuung (FSC) und Seitenstreuung (SSC) Anwendung verwendet, um Zellreste auszuschließen und intakte Einzelzellen auszuwählen. Insgesamt wurden für jede Probe 10.000 gültige zelluläre Ereignisse erfasst. Die Anregungs- und Emissionswellenlängen wurden auf 488 nm bzw. 525 nm eingestellt. Flusszytometrische Daten wurden anschließend analysiert, um die intrazelluläre ROS-Fluoreszenzintensität zu quantifizieren.
Malondialdehyd-(MDA)-Level-Bestimmung
Der intrazelluläre MDA-Gehalt wurde gemäß den Anweisungen des Herstellers mit einem Lipidperoxidations-Testkit gemessen. Kurzzeitig wurden behandelte BEAS-2B-Zellen entnommen und lysiert, dann bei niedriger Temperatur zentrifugiert, um das Supernatant zu sammeln. Anschließend wurde die kolorimetrische Reaktion der Thiobarbitursäure (TBA) durchgeführt, und die Absorptionsfähigkeit wurde bei 532 nm mit einem Mikroplattenmesser gemessen. Die relativen MDA-Werte wurden nach der Standardkurve berechnet.
Zellseneszenzbewertung
Die zelluläre Seneszenz wurde mittels eines Seneszenz-Nachweistests auf Basis der seneszenzassoziierten β-galactosidase (SA-β-gal) Aktivität untersucht. SA-β-gal-positive Zellen wurden mittels Durchflusszytometrie quantifiziert. Parallel dazu wurden die mRNA-Expressionsniveaus der seneszenzassoziierten Marker p53 und p21 durch RT-qPCR bestimmt.
Zellproliferations-Assay
Die Zellproliferation wurde mit einem kolorimetrischen Zell-Vitalitätstest untersucht. Die Absorption wurde mit 450 nm mittels eines Mikroplattenlesers gemessen.
GR Knockdown-Assay
Die Zelltransfektion wurde mit einem lipidbasierten Transfektionsreagenz durchgeführt. Folgende Oligonukleotide wurden transfektiert: Glukokortikoidrezeptor-zielende kleine interferierende RNA (si-GR) und negative kontrollierende kleine interferierende RNA (si-NC). Kandidaten-siRNA-Sequenzen, die auf GR abzielen, wurden mit der Online-Bioinformatikplattform siDirect 2.0 entwickelt. Nach der Transfektion wurden die Zellen 48 Stunden lang kultiviert, und alle siRNAs wurden bei einer Endkonzentration von 50 nM verwendet. Die Knockdown-Effizienz wurde durch Messung der GR-mRNA-Expression mittels RT-qPCR bestätigt.
Vehikelkontrollgruppen wurden sowohl in β-Sitosterol-Behandlungs- als auch in Transfektionsexperimenten einbezogen. Bei der β-Sitosterol-Intervention dienten Zellen, die ausschließlich mit Vehikellösungsmittel behandelt wurden, als Kontrollgruppe für das Vehikel (bezeichnet als CSE+0). Statistische Analysen bestätigten, dass keine signifikanten Unterschiede zwischen der Fahrzeugkontroll- und der Blankkontrollgruppe beobachtet wurden.
Statistische Analyse
Alle quantitativen Ergebnisse wurden als Mittelwert ± Standardabweichung von drei biologisch unabhängigen In-vitro-Experimenten angegeben. Statistische Analysen wurden mit Statistiksoftware durchgeführt. Der Shapiro–Wilk-Test wurde verwendet, um die Normalität der Datensatzverteilung vor statistischen Tests zu untersuchen; Die Bonferroni-Post-hoc-Korrektur wurde eingeführt, um P-Werte für mehrere Vergleiche nach Varianzanalyse (ANOVA) anzupassen. Vergleiche zwischen zwei Gruppen wurden durch einen ungepaarten Student's t-Test bewertet, während für Multigruppenvergleiche Einweg- oder Zwei-Wege-ANOVA eingesetzt wurde. Ein p-Wert ≤ 0,05 galt als statistisch signifikant.