Ethische Erklärung:
Alle Teilnehmer wurden umfassend über den Zweck unseres Experiments informiert und unterzeichneten das Einwilligungsformular. Diese Studie wurde von dem Ethikkomitee des Ersten Angegliederten Krankenhauses Longyan der Medizinischen Universität Fujian genehmigt (Genehmigungsnummer. LYREC2023-k007-01). Alle Verfahren wurden gemäß den einschlägigen Richtlinien, Vorschriften und der Deklaration von Helsinki durchgeführt.
Teilnehmerrekrutierung, Ein- und Ausschlusskriterien sowie Probenentnahme
Insgesamt 211 Personen mit Diagnose einer allergischen Rhinitis (AR) und 180 gesunde Teilnehmer (ohne AR) wurden von der HNO-Ambulanz des Ersten Angegliederten Krankenhauses Longyan der Medizinischen Universität Fujian zwischen Januar 2023 und Mai 2025 rekrutiert. Die Diagnosekriterien für AR orientierten sich an den Leitlinien der Chinesischen Gesellschaft für Allergologie zur Diagnose und Behandlung der allergischen Rhinitis17. Die Patienten mussten mindestens zwei klinische Symptome der AR aufweisen, darunter Juckreiz in der Nase, Niesreiz, verstopfte Nase oder laufende Nase. Zusätzlich musste die nasale Schleimhautuntersuchung Blässe und Ödeme zeigen, und entweder das Ergebnis des Pricktests (Skin Prick Test, SPT) oder der serumgebundene IgE-Test musste positiv sein. Der Pricktest wurde durch geschultes Personal im allergologischen Testraum der Ambulanz durchgeführt, um Genauigkeit und konsistente Ergebnisse sicherzustellen. Alle AR-Patienten absolvierten den Rhinoconjunctivitis Quality of Life Questionnaire (RQLQ) sowie die Bewertung des Total Nasal Symptom Score (TNSS) mit Unterstützung des medizinischen Personals, und die erzielten Werte wurden für die anschließende Analyse dokumentiert.
Gesunde Freiwillige, die sich im Krankenhaus einer routinemäßigen körperlichen Untersuchung unterzogen, wurden als Nicht-AR-Gruppe rekrutiert. Teilnahmeberechtigt waren Personen ohne persönliche oder familiäre Vorgeschichte von AR, ohne Asthma- oder andere allergische Erkrankungen, ohne chronische Sinusitis oder andere entzündliche Erkrankungen der Nasenhöhle sowie ohne Infektion der Atemwege im letzten Monat. Zusätzlich wurden Personen mit Vorerkrankung schwerer Herzerkrankungen, Leber-, Lungen- oder Nierenerkrankungen oder bösartigen Tumoren von der Studie ausgeschlossen.
Es wurden periphere venöse Blutproben von zwei Gruppen von Freiwilligen gesammelt. Ein Teil des antikoagulierten venösen Blutes wurde zur DNA-Extraktion und zur Extraktion von Plasma-RNA verwendet. Ein weiterer Teil des venösen Blutes wurde separiert, um Serum zu gewinnen, das für den Nachweis serumbezogener Faktoren (Immunglobulin E (IgE), Interleukin-4 (IL-4), IL-6 und IL-10) verwendet wurde.
DNA-Extraktion:
200 µL peripherer venöser Blutproben wurden zur DNA-Gewinnung unter Verwendung eines Kits zur genomischen DNA-Extraktion aus Vollblut verwendet (siehe Tabelle der Materialien). Die Blutproben wurden in Röhrchen mit Lithiumheparin als Antikoagulans gesammelt, anschließend aliquotiert und bei -20 °C eingefroren. Die spezifischen Arbeitsabläufe sind streng gemäß den Anweisungen des Kits durchzuführen. Abschließend wurden 100 µL Elutionspuffer verwendet, um die DNA zu eluieren. Die Reinheit der extrahierten DNA-Probe wurde mittels Nukleinsäure-/Proteinanalyzer (Spektrophotometer) bestimmt (das Verhältnis OD₂₆₀/OD₂₈₀ lag zwischen 1,8 und 2,0). Die DNA-Proben wurden nach der Analyse bei -20 °C für spätere Genotypisierungsexperimente aufbewahrt.
Genotypdetektion
Ein TaqMan SNP-Genotypisierungs-Kit stand zur Bestimmung der Verteilung der miR-146a rs2910164-Genotypen zur Verfügung. Die Kit-Informationen wurden in die Verbrauchsmittelliste eingetragen. Das Gesamtvolumen der PCR-Reaktion betrug 10 µL und enthielt 5 µL Master Mix, 0,5 µL Sondenprimer-Mix, 10 ng Vorlagen-DNA und RNase-freies Wasser. Die DNA-Amplifikation wurde mit dem Echtzeit-Fluoreszenz-PCR-Gerät Roche LightCycler 480 II durchgeführt. Reaktionsbedingungen: Prädenaturierung bei 95 °C für 10 min; 40 Zyklen (95 °C für 15 Sekunden, 60 °C für 1 min), wobei die FAM/VIC-Fluoreszenz bei 60 °C erfasst wurde. Nach Abschluss der Amplifikation wurden die erfassten FAM/VIC-Doppel-Fluoreszenzsignale mit der LightCycler 480-Software analysiert und die Genotypdaten statistisch ausgewertet. Ein einzelnes FAM-Signal repräsentiert einen homozygoten Genotyp, ein einzelnes VIC-Signal einen anderen homozygoten Genotyp, und das Vorhandensein beider Signale weist auf einen heterozygoten Genotyp hin. Proben mit abnormalen Signalen oder inkonsistenten Ergebnissen bei Wiederholung werden erneut getestet. Jedes Experiment wurde jeweils mit einer kontrollierten Probe ohne Vorlage-DNA und einer positiven Kontrolle zur Qualitätskontrolle durchgeführt. Alle Proben wurden in dreifacher technischer Wiederholung analysiert.
Echtzeit-PCR (RT-qPCR)
Die Gesamt-RNA aus Plasma wurde aus 100 µL Plasma mithilfe eines speziellen miRNA-Extraktionskits isoliert. Die Kit-Informationen wurden in die Liste der Verbrauchsmaterialien eingetragen. Die RNA-Konzentration wurde mittels Spektrophotometer bestimmt. Das OD₂₆₀/OD₂₈₀-Verhältnis der qualifizierten extrahierten miRNA-Proben lag zwischen 1,8 und 2,0. Für die reverse Transkription zur Synthese von cDNA wurden 200 ng RNA verwendet, und das Reaktionsverfahren erfolgte gemäß den Standardanweisungen des Kits. Die reverse Transkription wurde in einem Gesamtvolumen von 20 µL durchgeführt, einschließlich einer Inkubation bei 42 °C für 60 min und einer Inaktivierung bei 85 °C für 5 min. Die qPCR-Reaktion wurde gemäß dem etablierten Protokoll mit einem Gesamtvolumen von 20 µL vorbereitet. Die Reaktionsmischung setzte sich wie folgt zusammen: 10 µL qPCR-Vormischung, 0,4 µL Vorwärtsprimer, 0,4 µL Rückwärtsprimer, 1 µL cDNA-Vorlage und 8,2 µL RNase-freies Wasser. Es wurden spezifische Primer für miR-146a und das interne Referenzgen U6 verwendet. Die Amplifikation wurde mit dem Echtzeit-Fluoreszenz-PCR-Gerät Roche LightCycler 480 II durchgeführt. Die thermischen Zyklenbedingungen für die qPCR waren: 95 °C für 30 s zur Vor-Denaturierung, gefolgt von 40 Zyklen mit Denaturierung bei 95 °C für 5 s sowie Annealing und Extension bei 60 °C für 30 s. Alle Proben wurden in dreifacher technischer Wiederholung analysiert. Die experimentellen Daten wurden mit der LightCycler 480-Software ausgewertet. Unter Verwendung von U6 als interne Referenz zur Korrektur von interprobenbedingten Variationen wurde zunächst ΔCt (Ct-Wert von miR-146a minus Ct-Wert von U6) berechnet, anschließend ΔΔCt (ΔCt der Versuchsgruppe minus ΔCt der Kontrollgruppe) und schließlich die relative Expressionsmenge von miR-146a über 2⁻ΔΔCt ermittelt.
ELISA
Die Serumspiegel von IgE, IL-4, IL-6 und IL-10 wurden mithilfe von ELISA-Tests bestimmt. Die experimentellen Verfahren orientierten sich an der Bedienungsanleitung. Die spezifischen Schritte waren wie folgt: Zunächst wurde die konzentrierte Waschlösung verdünnt und die Standards stufenweise verdünnt, um Arbeitslösungen für die Standardkurve herzustellen. Anschließend wurden je 50 µL Verdünnungspuffer, Standardlösung und zu testende Probe in die Wells gegeben und 60 min bei 37 °C inkubiert. Nach der Inkubation wurden die Wells dreimal mit Waschpuffer gespült. Danach wurden je 50 µL der Arbeitslösung der enzymkonjugierten Antikörper zugegeben und die Platten 30 min bei 37 °C inkubiert. Nach Beendigung der Inkubation wurde die Flüssigkeit entfernt, die Wells erneut gespült und anschließend die chromogene Lösung hinzugefügt. Die Platten wurden 15 min bei 37 °C im Dunkeln inkubiert. Nach Zugabe der Stopplösung wurde die Extinktion bei 450 nm mit einem Mikroplatten-Reader gemessen. Die Probenkonzentrationen wurden anhand der Standardkurve berechnet. Jede Probe wurde dreifach getestet. Daten mit einem Variationskoeffizienten unter 10 % galten als gültig. Zur Qualitätskontrolle wurden während des Experiments Leer- und Kontrollwells eingerichtet. Der Nachweisbereich und die Empfindlichkeit des Kits entsprachen den Vorgaben des Herstellerhandbuchs.
Datenstatistik
Die experimentellen Daten wurden mit den Softwareprogrammen SPSS und GraphPad Prism 9 analysiert. Die Daten wurden als Mittelwert ± Standardabweichung (Mittelwert ± SD) dargestellt. Der Shapiro-Wilk-Test wurde zur Beurteilung der Normalverteilung stetiger Variablen verwendet, und der Levene-Test wurde zur Bewertung der Varianzhomogenität angewandt. Der Vergleich stetiger Variablen zwischen den beiden Gruppen wurde mittels des t-Tests für unabhängige Stichproben analysiert. Für Vergleiche zwischen mehreren Gruppen wurde eine einfaktorielle ANOVA mit anschließendem Tukey-Post-hoc-Test durchgeführt, und eine zweifaktorielle ANOVA wurde verwendet, um die Haupteffekte von zwei unabhängigen Faktoren sowie deren Wechselwirkungseffekt zu bewerten. Ausreißer wurden basierend auf der 3-Standardabweichungs-Regel identifiziert und ausgeschlossen. In dieser Studie wurden keine fehlenden Daten festgestellt. Die Receiver-Operating-Characteristic-(ROC)-Kurve wurde zur Analyse der diagnostischen Wirksamkeit von miR-146a für AR verwendet. Relevante ROC-Parameter und 95-%-Konfidenzintervalle wurden mithilfe integrierter statistischer Algorithmen berechnet. Die Pearson-Korrelationsanalyse wurde verwendet, um die lineare Korrelation zwischen der Expression von miR-146a und den Konzentrationen serumbezogener Faktoren zu ermitteln. Univariate und multivariate logistische Regressionsanalysen wurden durchgeführt, um Risikofaktoren für AR zu identifizieren. Variablen mit p < 0,05 in der univariaten Analyse wurden in das multivariate logistische Regressionsmodell einbezogen. Ein p < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.