Identifizierung eines Schlüsselgenmoduls, das mit pädiatrischer Pneumonie assoziiert ist, mittels WGCNA
Um Genmodule zu identifizieren, die mit der pädiatrischen Pneumonie assoziiert sind, wurde eine WGCNA an transkriptomischen Daten aus Vollblutproben von Patienten mit Pneumonie und gesunden Kontrollpersonen durchgeführt. Die Analyse der Probengruppierung zeigte keine offensichtlichen Ausreißer, was auf eine gute Datenqualität für die nachfolgende Analyse hinweist (Abbildung 1A). Die Hauptkomponentenanalyse (PCA) zeigte darüber hinaus einen klaren Trennungstrend zwischen der Pneumonie- und der gesunden Gruppe, was auf unterschiedliche transkriptomische Profile zwischen den Bedingungen hindeutet (Abbildung 1B). Um ein skalenfreies Netzwerk zu konstruieren, wurden die Gene nach ihrer mittleren absoluten Abweichung (median absolute deviation) sortiert, die 5.000 am stärksten variablen Gene für die Netzwerkkonstruktion ausgewählt, und die Soft-Schwellenleistung wurde basierend auf dem Kriterium des Skalenfreiheits-Topologie-Anpassungsindex (R2 > 0,8) auf 15 festgelegt, wobei gleichzeitig eine relativ niedrige mittlere Verknüpfung beibehalten wurde (Abbildung 1C). Mit diesem Schwellenwert identifizierte die hierarchische Clusterung mehrere Genmodule mit unterschiedlichen Expressionsmustern (Abbildung 1D). Die Analyse der Beziehung zwischen Modulen und Merkmalen ergab, dass mehrere Module signifikant mit klinischen Phänotypen korrelierten. Insbesondere das blaue Modul zeigte eine starke Korrelation sowohl mit dem Krankheitsstatus (Pneumonie vs. gesund) als auch mit der ätiologischen Klassifizierung, was auf eine mögliche Rolle bei der Krankheitsprogression und der Wirtsantwort hindeutet (Abbildung 1E).
Darüber hinaus zeigte die Streudiagrammanalyse der Modulzugehörigkeit im Vergleich zur Gen-Signifikanz innerhalb des blauen Moduls eine starke positive Korrelation (cor = 0,6, p = 2,1e−35), was darauf hinweist, dass Gene, die innerhalb des Moduls stark vernetzt sind, auch eng mit dem klinischen Merkmal assoziiert waren (Abbildung 1F).
Assoziation des blauen Moduls mit der Ätiologie der bakteriellen Pneumonie
Um genexpressionsbezogene Unterschiede zwischen den verschiedenen Pneumonie-Ätiologien weiter zu untersuchen, wurde eine WGCNA unter Verwendung mehrerer klinischer Klassifikationen durchgeführt, einschließlich der Kontrollgruppe (C), definitiv bakteriell (DB), definitiv viral (DV), wahrscheinlich bakteriell (PB), wahrscheinlich viral (PV) und unbekannt (U). Die Analyse der Modul-Merkmal-Beziehungen zeigte, dass mehrere Module signifikante Korrelationen mit bestimmten ätiologischen Subtypen aufwiesen. Insbesondere das blaue Modul wies die stärkste positive Korrelation mit der DB-Gruppe auf, was auf eine mögliche Beteiligung an den Wirtsantworten spezifisch für bakterielle Infektionen hindeutet (Abbildung 2A).
Das Gen-Clustering-Dendrogramm und die entsprechende Modulzuordnung bestätigten weiterhin die Robustheit der Modulkonstruktion und die klare Trennung der Gencluster (Abbildung 2B). Innerhalb des blauen Moduls zeigte die Analyse der Modulmitgliedschaft im Vergleich zur Genbedeutung eine signifikante positive Korrelation (Kor = 0,41, p = 7,8e−14), was darauf hindeutet, dass stark vernetzte Gene in diesem Modul auch stark mit dem ätiologischen Merkmal assoziiert waren (Abbildung 2C).
Zusätzlich zeigte der Vergleich der Modul-Eigengen-Expression zwischen verschiedenen ätiologischen Gruppen signifikante Unterschiede im blauen Modul (Kruskal-Wallis-Test, p = 1,5e−13). Insbesondere wies der blaue Modul eine erhöhte Expression in den Gruppen mit bakterieller Pneumonie auf, vor allem in der DB-Untergruppe, verglichen mit anderen ätiologischen Kategorien (Abbildung 2D).
Achtzehn aus Paeonia abgeleitete, komplex gebundene in Frage kommende Gene, die mittels Integrationsanalyse mit pädiatischer Pneumonie assoziiert wurden
Um in Frage kommende Gene, die mit pädiatrischer Pneumonie assoziiert sind, sowie potenzielle mit Paeonia verknüpfte Zielstrukturen zu identifizieren, wurde zunächst eine differentielle Expressionsanalyse zwischen Patienten mit Pneumonie und gesunden Kontrollpersonen durchgeführt. Unter Anwendung dieser Kriterien wurden 1.110 differentiell exprimierte Gene (DEGs) zwischen Pneumonie- und gesunden Kontrollproben identifiziert, darunter 524 hochregulierte und 586 herunterregulierte Gene. Die 524 hochregulierten DEGs sind in ergänzender Tabelle S1 aufgeführt (siehe auch Abbildung 3A). Um Schlüsselgene weiter einzugrenzen, wurden die Pneumonie-assoziierten DEGs mit Genen, die mit dem DB-Phänotyp sowie mit vorhergesagten Zielstrukturen von Paeonia verknüpft sind, geschnitten. Diese integrative Analyse ergab 18 überlappende Gene, was auf ihre mögliche Rolle im Krankheitsverlauf und in mit Paeonia assoziierten Reaktionen hindeutet (Abbildung 3B).
Ein Wirkstoff-Wirkort-Interaktionsnetzwerk wurde erstellt, um die Beziehungen zwischen den Wirkstoffen von Paeonia und den identifizierten Kandidatengenen darzustellen, wobei eine umfangreiche Vernetzung zwischen Wirkstoffen und Zielstrukturen sichtbar wurde (Supplementary Table S2 und Abbildung 3C). Um die biologischen Funktionen dieser 18 Gene zu untersuchen, wurden Analysen zur funktionellen Anreicherung durchgeführt. Die biologischen Prozesse der GO-Anreicherung verbanden die Kandidatengene hauptsächlich mit immunen und entzündlichen Funktionen, einschließlich der Regulation von Entzündungsreaktionen, der Reaktion auf Peptidhormone, der positiven Regulation des Stoffwechsels reaktiver Sauerstoffspezies sowie der Regulation der durch Typ-II-Interferone vermittelten Signalübertragung (Abbildung 3D). Die KEGG-Analyse zeigte zudem, dass die Gene in entzündungs- und immunbezogenen Signalwegen angereichert waren, wie beispielsweise den IL-17- und NF-κB-Signalwegen, sowie in metabolischen und endokrinen Wegen, darunter die Glucagon-Signalübertragung und die Biosynthese von Steroidhormonen (Abbildung 3D).
Anreicherung von Kandidatengenen in Neutrophilen und alveolären Makrophagen in der Einzelzell-Transkriptom-Analyse
Um die zelluläre Verteilung von Kandidatengenen im Kontext einer experimentellen Pneumonie zu untersuchen, wurde der Maus-Lungen-scrNA-seq-Datensatz GSE295484 analysiert. Es wurde eine Qualitätskontrolle durchgeführt, um die Datenzuverlässigkeit zu bewerten. Die Verteilungen der nachgewiesenen Genanzahlen, UMI-Zahlen sowie die Anteile an mitochondrialen und ribosomalen Genen deuteten auf insgesamt hochwertige Einzelzell-Daten in der verarbeiteten Matrix hin (Abbildung 4A). Streudiagramme zeigten die Referenzschwellenwerte für den Gennachweis und den mitochondrialen Anteil, die bei der Visualisierung der Qualitätskontrolle verwendet wurden (Abbildung 4B).
Nach Normalisierung und Dimensionsreduktion wurden die Zellen mithilfe von UMAP gruppiert und visualisiert. Es wurden unterschiedliche Zellpopulationen identifiziert, darunter Neutrophile, alveoläre Makrophagen, Monozyten, epitheliale Zellen sowie andere Immun- und Stromazelltypen, was die zelluläre Heterogenität der Lungen-Mikroumgebung während einer Pneumonie verdeutlicht (Abbildung 4C). Um die Aktivität der 18 Kandidatengene auf Einzelzell-Ebene zu bewerten, wurde eine AUCell-Analyse durchgeführt. Die Ergebnisse zeigten, dass die Gen-Signatur vorwiegend in Neutrophilen und alveolären Makrophagen angereichert war, wie durch höhere AUC-Werte in diesen Zellpopulationen angezeigt (Abbildung 4D).
Entzündungsfördernde Gene, die mit aus Paeonia abgeleiteten Wirkstoffzielen in einem Mausmodell der bakteriellen Pneumonie assoziiert sind
Um die Dynamik der Immunzellen im experimentellen Mausmodell der Pneumonie weiter zu untersuchen, wurden die Anteile von alveolären Makrophagen und Neutrophilen in den Gruppen Raumluft, PBS und E. coli 48 h und 96 h nach der Aspiration analysiert. 48 h nach der Infektion zeigten alveoläre Makrophagen unter E. coli-Infektion im Vergleich zu den Bedingungen Luft und PBS eine deutliche Abnahme, während Neutrophile einen erheblichen Anstieg ihres Zellanteils aufwiesen (Abbildung 5A). Ein ähnlicher Trend zeigte sich 96 h nach der Infektion, wobei die Anteile der Neutrophilen nach E. coli-Stimulation weiterhin erhöht blieben, während alveoläre Makrophagen vergleichsweise niedrigere Werte aufwiesen. Diese Ergebnisse deuten auf eine deutliche Expansion der Neutrophilen während der bakteriellen Infektion hin. Um die funktionellen Eigenschaften der Neutrophilen zu untersuchen, wurden Neutrophilen-Marker-Gene identifiziert und eine funktionelle Anreicherungsanalyse durchgeführt. Die KEGG-Anreicherung assoziierte die Neutrophilen-Marker-Gene mit entzündungsfördernden Signalwegen, darunter die TNF-, MAPK- und C-Typ-Lektin-Rezeptor-Wege (Abbildung 5B). Auch die GO-Biologischen-Prozesse waren auf immunbezogene Funktionen konzentriert, wie beispielsweise Leukozytenmigration, Leukozyten-Zell-Zell-Adhäsion, positive Regulation der Abwehrreaktion und Reaktion auf bakterielle Moleküle (Abbildung 5B). Um Schlüsselgene zu identifizieren, die Neutrophilenaktivität, Pneumonie und Paeonia-Zielstrukturen verbinden, wurden die Neutrophilen-Marker-Gene mit den zuvor identifizierten 18 Kandidatengenen überlappt. Diese Analyse ergab drei gemeinsame Gene: MMP9, PYGL und GADD45A (ergänzende Tabelle S3 und Abbildung 5C). Schließlich zeigte die Einzelzell-Genexpressionsvisualisierung, dass diese drei Gene vorwiegend in Neutrophilen-Populationen exprimiert werden (Abbildung 5D), was ihre potenzielle Rolle in neutrophilenvermittelten entzündlichen Reaktionen weiter untermauert.
Vorhergesagte Bindungsaffinität von Catechin an ausgewählte Proteine in der molekularen Docking-Analyse
Um mögliche Wechselwirkungen zwischen Catechin und Proteinen weiter zu untersuchen, wurde eine molekulare Docking-Analyse zwischen den ausgewählten Proteinen (MMP9, PYGL und GADD45A) und Catechin, einer aus Paeonia stammenden Wirkverbindung, durchgeführt. Die Kristallstrukturen von GADD45A, MMP9 und PYGL wurden der Protein Data Bank entnommen, und die 3D-Struktur von Catechin wurde aus der PubChem-Datenbank bezogen. Die Docking-Ergebnisse deuten darauf hin, dass Catechin an Bindungsstellen aller drei ausgewählten Proteine binden kann, mit Bindungsenergien von −6,3 kcal/mol für GADD45A, −7,6 kcal/mol für MMP9 und −8,0 kcal/mol für PYGL (Abbildung 6). Unter diesen ausgewählten Proteinen zeigte Catechin die stärkste vorhergesagte Bindungsaffinität zu PYGL, gefolgt von MMP9 und GADD45A, was auf eine mögliche bevorzugte Interaktion mit einem stoffwechselbezogenen Protein hindeutet.
Auf molekularer Ebene bildete Catechin mehrfache Wasserstoffbrückenbindungen und hydrophobe Wechselwirkungen mit Schlüssel-Aminosäureresten in jedem Protein aus. Bei GADD45A wechselwirkte Catechin mit Resten wie GLN33 und TRP135. Bei MMP9 wurde eine stabile Wasserstoffbrückenbindung mit Resten wie GLN227, TYR248 und HIS236 beobachtet. Ebenso bildete Catechin bei PYGL mehrfache Wasserstoffbrückenbindungen mit Resten wie LYS554 und ASN631, was zur Bindungsstabilität beitrug. Zusätzlich zu den Wasserstoffbrückenbindungen zeigte die Interaktionsanalyse van-der-Waals-Kräfte und π-bezogene Wechselwirkungen auf, was auf ein mehrfach wirksames Bindungsmuster hinweist, das die Stabilität der vorhergesagten Ligand-Protein-Komplexe verstärkt. Insgesamt legen diese Ergebnisse nahe, dass Catechin stabile vorhergesagte Komplexe mit MMP9, PYGL und GADD45A bilden kann. Die therapeutische Relevanz dieser Wechselwirkungen bedarf jedoch weiterer experimenteller Validierung.
Vorhergesagte stabile Wechselwirkungen zwischen Catechin und ausgewählten Proteinen
Basierend auf den aus dem molekularen Docking erhaltenen Docking-Konformationen wurden 100 ns lange Molekulardynamik-Simulationen durchgeführt, um die Stabilität der Catechin-Protein-Komplexe weiter zu bewerten. Die RMSD-Analyse zeigte, dass alle drei Protein-Ligand-Komplexe während des Simulationszeitraums ein Gleichgewicht erreichten. Dabei wiesen die PYGL–Catechin- und MMP9–Catechin-Komplexe relativ stabile RMSD-Schwankungen auf, während der GADD45A–Catechin-Komplex leicht höhere Schwankungen zeigte, diese jedoch im akzeptablen Bereich blieben (Abbildung 7A). Die Rg-Analyse zeigte, dass alle Komplexe während der gesamten Simulation eine stabile strukturelle Kompaktheit beibehielten, mit minimalen zeitlichen Variationen (Abbildung 7B). Ebenso demonstrierte die SASA-Analyse stabile Expositionsgrade für alle Komplexe, was deren strukturelle Stabilität weiter untermauert (Abbildung 7C). Die Wasserstoffbrücken-Bindungsanalyse zeigte anhaltende Wechselwirkungen zwischen Catechin und den ausgewählten Proteinen. Der PYGL–Catechin-Komplex wies im Vergleich zu MMP9 und GADD45A über die Zeit eine höhere Anzahl an Wasserstoffbrückenbindungen auf, was auf stärkere und stabilere Bindungswechselwirkungen hindeutet (Abbildung 7D).
Die Flexibilität auf Aminosäurereste-Ebene wurde mittels RMSF bewertet. Die Ergebnisse zeigten, dass die meisten Reste geringe Fluktuationen aufwiesen, während nur wenige Bereiche höhere Flexibilität zeigten, was darauf hindeutet, dass die Ligandenbindung keine größeren strukturellen Instabilitäten in den Proteinen hervorrief (Abbildung 7E). Insgesamt legen diese Befunde nahe, dass Catechin stabile vorhergesagte Komplexe mit MMP9, PYGL und GADD45A bildet, wobei die stärkste Stabilität bei der PYGL–Catechin-Wechselwirkung beobachtet wurde. Diese Ergebnisse stützen stabile vorhergesagte Interaktionen zwischen Catechin und den ausgewählten Proteinen und liefern computergestützte Hinweise für weitere experimentelle Validierungen.
Datenverfügbarkeit:
In dieser Studie wurden öffentlich zugängliche Datensätze analysiert. Der Bulk-RNA-Seq-Datensatz ist im Gene Expression Omnibus (GEO) unter der Zugangsnummer GSE261482 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE261482) verfügbar, und der Maus-Lungen-scRNA-Seq-Datensatz ist unter der Zugangsnummer GSE295484 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE295484) abrufbar. Die im Artikel verwendeten verarbeiteten Ergebnisse werden als ergänzende Tabelle S1, ergänzende Tabelle S2 und ergänzende Tabelle S3 bereitgestellt.

Abbildung 1. Konstruktion der WGCNA und Identifizierung krankheitsassoziierter Module (A) Die Probengliederung erfolgte basierend auf den Genexpressionsprofilen, und die entsprechenden Merkmalsannotationen sind unterhalb des Dendrogramms dargestellt. (B) Die Hauptkomponentenanalyse zeigt die Verteilung der Proben entlang der ersten beiden Hauptkomponenten. (C) Die Soft-Thresholding-Potenz wurde mithilfe des scale-free-Topologie-Anpassungsindex und der mittleren Verknüpfung bewertet. (D) Gene wurden entsprechend ihrem topologischen Überlappungsmaß gruppiert, und die Modulzuordnungen sind farblich gekennzeichnet. (E) Die Korrelationen zwischen Moduleigengenen und klinischen Merkmalen sind als Wärmekarte dargestellt. (F) Die Beziehung zwischen Modulmitgliedschaft und Gen-Signifikanz ist für die Gene des blauen Moduls dargestellt. Klicken Sie bitte hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 2. WGCNA-Analyse basierend auf der Pneumonie-Ätiologie. (A) Die Korrelationen der Moduleigen Gene sind für die Ätiologiegruppen dargestellt, einschließlich Kontrolle, definitive bakterielle, definitive virale, wahrscheinlich bakterielle, wahrscheinlich virale und unbekannte Ursache. (B) Genmodule wurden dem auf topologischer Überschneidung basierenden Cluster-Dendrogramm zugeordnet. (C) Die Modulzugehörigkeit und die Gen-Signifikanz sind für das blaue Modul dargestellt. (D) Die Expression des Eigen Gens des blauen Moduls wird zwischen den Ätiologiegruppen verglichen. Abkürzungen: WGCNA = gewichtete Gen-koexpressionsnetzwerkanalyse; C = Kontrolle; DB = definitive bakterielle; DV = definitive virale; PB = wahrscheinlich bakterielle; PV = wahrscheinlich virale; U = unbekannt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 3. Identifizierung und funktionelle Analyse von Kandidatengenen. (A) Volcano-Plot zur Darstellung differentiell exprimierter Gene zwischen Pneumonie- und Kontrollproben. (B) Venn-Diagramm zur Darstellung der Überlappung zwischen differentiell exprimierten Genen bei Pneumonie (DEGs), definitiv bakterienassoziierten Genen und Paeonia-Zielgenen. (C) Interaktionsnetzwerk zwischen den aktiven Komponenten von Paeonia und den Kandidatengenen. (D) Balkendiagramme zur Darstellung der Anreicherung biologischer Prozesse nach Gene Ontology (links) und der Anreicherung von KEGG-Wegen (rechts) für die überlappenden Gene. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4. Transkriptomische Einzelzellanalyse von Pneumonie. (A) Violin-Diagramme fassen Qualitätskontrollmetriken zusammen, einschließlich nCount_RNA, nFeature_RNA, Anteil an mitochondrialen Genen und Anteil an ribosomalen Genen. (B) Streudiagramme zeigen die Zusammenhänge zwischen UMI-Zählungen, detektierten Genen pro Zelle und dem Anteil an mitochondrialen Genen. (C) UMAP-Visualisierung der Zellcluster, annotiert nach Zelltypen. (D) UMAP-Diagramm zeigt AUCell-Scores für die kandidaten Gen-Signatur über einzelne Zellen hinweg. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 5. Neutrophilendynamik und Identifizierung zentraler Gene. (A) Boxplots, die die Zellanteile von alveolären Makrophagen und Neutrophilen unter verschiedenen Bedingungen (Luft, PBS und E. coli) nach 48 h und 96 h zeigen. (B) Balkendiagramme, die die KEGG-Pfad-Enrichment (links) und die Enrichment biologischer Prozesse nach GO (rechts) für Neutrophilen-Marker-Gene zeigen. (C) Venn-Diagramm, das die Überlappung zwischen Neutrophilen-Marker-Genen und gemeinsamen Zielgenen von bakterieller Pneumonie und Paeonia darstellt. (D) UMAP-Diagramme, die die Expressionsmuster von MMP9, PYGL und GADD45A in verschiedenen Zellpopulationen zeigen. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 6. Molekulares Docking von Catechin mit ausgewählten Proteinen. Dreidimensionale Strukturen von Protein–Ligand-Komplexen, die die Bindung von Catechin an GADD45A (oben), MMP9 (Mitte) und PYGL (unten) zeigen. Vergrößerte Ausschnitte verdeutlichen die Bindungsregionen und Kontakte mit wichtigen Aminosäureresten. Die zweidimensionalen Darstellungen zeigen Wasserstoffbrückenbindungen und andere Wechselwirkungen zwischen Catechin und den ausgewählten Proteinen. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 7. Molekulardynamik-Simulationen von Protein–Ligand-Komplexen. (A) Quadratischer Mittelwert der Abweichung der Komplexe während der Simulation. (B) Änderungen des Trägheitsradius über die Zeit. (C) Oberfläche, die für das Lösungsmittel zugänglich ist, während der Simulation. (D) Anzahl der Wasserstoffbrücken zwischen Catechin und den Zielproteinen über die Zeit. (E) Quadratischer Mittelwert der Fluktuation der Proteinreste in jedem Komplex. Abkürzungen: RMSD = quadratischer Mittelwert der Abweichung; Rg = Trägheitsradius; SASA = für das Lösungsmittel zugängliche Oberfläche; RMSF = quadratischer Mittelwert der Fluktuation. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
Zusatz-Tabelle S1. Hochregulierte differentiell exprimierte Gene bei pädiatrischer Pneumonie im Vergleich zu gesunden Kontrollproben, einschließlich Gen-Symbole, log2-Fold-Changes, P-Werte, adjustierte P-Werte und verwandte limma-Statistiken. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Erweiterte Tabelle S2. Paeonia-Verbindung-Target-Interaktionstabelle, verwendet für die Netzwerkanalyse, einschließlich Verbindungsidentifikatoren, Verbindungsbezeichnungen und zugehöriger Target-Gene. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Supplementäre Tabelle S3. Einzelzell-Marker-Gen-Tabelle aus GSE295484, einschließlich P-Werte, durchschnittliche log2-Fold-Changes, Expressionsanteile, angepasste P-Werte, Zell-Cluster-Anmerkungen und Gen-Symbole. Klicken Sie hier, um die Datei herunterzuladen.