Identifizierung überlappender Gene, Anreicherungsanalyse und Konstruktion des PPI-Netzwerks
Aus dem GSE54837-Datensatz wurden 3.371 DEGs identifiziert, darunter 1.675 hochregulierte und 1.696 herunterregulierte DEGs. Die 10 Gene mit der stärksten Hoch- und Herunterregulierung sind in Abbildung 1A dargestellt. Eine hierarchische Clusteranalyse der GSE54837-Daten wurde durchgeführt (ergänzende Abbildung 1A), und eine Soft-Thresholding-Potenz von 10 wurde angewendet, um eine skalenfreie Netzwerktopologie sicherzustellen (Abbildung 1B). Gen-Koexpressionsmodule wurden mithilfe der dynamischen Baumzerlegungsmethode mit einer minimalen Modulgröße von 50 Genen konstruiert, und jedes Modul erhielt eine eigene Farbe (ergänzende Abbildung 1B). Module mit Eigenvektorkorrelationen > 0,75 wurden anschließend zusammengelegt (ergänzende Abbildung 1C, Abbildung 1C), was zu 14 verschiedenen Modulen führte. Basierend auf der Pearson-Korrelationsanalyse zwischen den Modul-Eigenvektoren und klinischen Merkmalen zeigte das MEsalmon-Modul (bestehend aus 5.226 Genen) die stärkste positive Korrelation mit COPD (r = 0,35, p = 7 × 10⁻8, Abbildung 1D). Eine Venn-Analyse identifizierte 160 gemeinsame Gene unter den 3.371 DEGs, den 5.226 MEsalmon-Modulgenen und den 2.118 ac4C-RGs (Abbildung 1E). Die funktionelle Anreicherungsanalyse dieser 160 Gene ergab, dass signifikante GO-Terme die Bindung an einzelsträngige RNA, die Regulation des mRNA-Stoffwechselprozesses und den RIG-I-Signalweg umfassten (Abbildung 1F). Zusätzlich zeigte die KEGG-Analyse, dass diese Gene hauptsächlich in der Fc-Gamma-R-vermittelten Phagozytose, dem mRNA-Überwachungsweg und der fokalen Adhäsion angereichert waren (Abbildung 1G). Das PPI-Netzwerk der überlappenden Gene enthielt 118 Knoten und 196 Kanten (Abbildung 1H).
Identifizierung von sechs Schlüsselgenen bei COPD
Um potenzielle Schlüsselgene unter den 160 überlappenden Kandidaten weiter zu identifizieren, wurden drei maschinelle Lernalgorithmen angewandt. Zunächst wurde eine LASSO-Regression mit Kreuzvalidierung durchgeführt, um den optimalen Strafparameter (λ) ≈ 0,091 zu bestimmen (Abbildung 2A). Das Koeffizienten-Profil-Diagramm zeigte, dass 17 Gene beim optimalen λ-Wert beibehalten wurden (Abbildung 2B). Die XGBoost-Analyse identifizierte die 30 Gene mit dem höchsten Gewinn, wobei PTRF, WBP11 und LDOC1L einen hohen Vorhersagewert aufwiesen (Abbildung 2C). Der RF-Algorithmus bewertete die 30 wichtigsten Gene entsprechend ihren Gini-Wichtigkeitsscores, wobei PTRF, RFX5 und PRKCDBP zu den aussagekräftigsten gehörten (Abbildung 2D). Die Schnittmengenanalyse der Gene, die von den drei Methoden ausgewählt wurden, ergab sechs wesentliche überlappende Gene: PTRF, PRKCDBP, UPP1, TOR3A, FAM168B und B4GALT2 (Abbildung 2E).
Konstruktion des diagnostischen Modells und Expressionsanalyse der Schlüsselgene
Unter Verwendung von 70 % des GSE54837-Datensatzes als Trainingsmenge wurde ein logistisches Regressionsmodell erstellt, das die sechs Schlüsselgene umfasst. Die ROC-Kurvenanalyse zeigte eine moderate diagnostische Leistungsfähigkeit mit AUC-Werten von 0,766 (95 % KI: 0,691–0,8417), 0,759 (95 % KI: 0,6368–0,8817) und 0,723 (95 % KI: 0,6085–0,8596) für die Trainings-, interne Test- und externe Validierungsmenge, jeweils (Abbildung 3A–C). Die Kalibrationsanalyse bestätigte eine hohe Zuverlässigkeit, und die DCA zeigte einen klaren klinischen Nutzen über einen breiten Bereich von Schwellenwahrscheinlichkeiten sowohl in den Trainings- (Abbildung 3D–E) als auch in den Validierungsmengen (Abbildung 3F–G). Ein Nomogramm wurde erstellt, um den Beitrag jedes Gens zu veranschaulichen und die individuelle Risikoeinschätzung zu erleichtern (Abbildung 3H). Die Expressionsanalyse ergab, dass B4GALT2, PRKCDBP und UPP1 in COPD-Proben signifikant hochreguliert waren, während FAM168B, PTRF und TOR3A herunterreguliert waren (Abbildung 3I).
Regulatorisches Netzwerk und funktionelle Analyse von Schlüsselgenen bei COPD
Mithilfe der GeneMANIA-Analyse wurde ein funktionelles Interaktionsnetzwerk erstellt, das die 20 Gene umfasst, die am stärksten mit den identifizierten Hub-Genen verwandt sind (Abbildung 4A). Physikalische Interaktionen machten den Großteil der Verbindungen aus, gefolgt von Ko-Expressions-Korrelationen und gemeinsamen Protein-Domänen. Die funktionelle Annotation zeigte eine signifikante Anreicherung in Prozessen wie dem katabolen Prozess von Nukleobasen enthaltenden kleinen Molekülen, dem katabolen Prozess von Nukleosiden und dem Raft der Plasmamembran. Die posttranskriptionelle Regulation wurde durch den Vergleich von miRNA-Vorhersagen aus den Datenbanken DIANA-microT und miRanda untersucht, wodurch acht überlappende miRNAs identifiziert wurden (Abbildung 4B). Anschließend wurde eine lncRNA-miRNA-mRNA-regulatorische Achse konstruiert. Laut dem Sankey-Diagramm wurden für zwei der identifizierten miRNAs, die beide mit der Regulation von FAM168B assoziiert sind, sieben lncRNAs als Zielvorhersagen ermittelt; für die übrigen fünf Hub-Gene wurden keine derartigen regulatorischen Interaktionen gefunden (Abbildung 4C). Die transkriptionelle Regulation wurde weiterhin mit Hilfe der ChEA3-Plattform untersucht, die upstream liegende Transkriptionsfaktoren (TFs) für B4GALT2, UPP1, FAM168B und TOR3A vorhersagte. Die jeweils zehn führenden TFs für jedes Gen wurden ausgewählt, um ein TF-Ziel-Regulationsnetzwerk aufzubauen (Abbildung 4D). GSEA wurde durchgeführt, um die biologischen Funktionen der sechs Schlüsselgene zu untersuchen. UPP1 war signifikant angereichert in biologischen Prozessen wie dem Stoffwechselprozess von Diacylglycerol und dem biosynthetischen Prozess von Purinnukleosidtriphosphat sowie in Wegen wie dem Proteasom und dem Metabolismus von Xenobiotika durch Cytochrom P450 (Abbildung 4E–F). Die Anreicherungsergebnisse für die übrigen fünf Schlüsselgene sind in Ergänzende Abbildung 2A–J dargestellt.
Immuninfiltration von UPP1 und Vorhersage von Arzneimittelzielen bei COPD
Die Infiltrationsgrade von 28 Immunzelltypen wurden in Kontroll- und COPD-Gruppen mithilfe des ssGSEA-Algorithmus bewertet. Bei COPD-Patienten wiesen Gedächtnis-B-Zellen, myeloide suppressorische Zellen und aktivierte dendritische Zellen signifikant höhere Anreicherungsscores auf. Im Gegensatz dazu zeigten T-Helferzellen vom Typ 1, aktivierte B-Zellen und unreife B-Zellen signifikant niedrigere Anreicherungsscores (Abbildung 5A). Es ist darauf hinzuweisen, dass ssGSEA relative Schätzungen der Immunzellanreicherung anhand transkriptomischer Daten liefert, anstatt direkte Messungen der Anteile von Immunzellen darzustellen. Die Korrelationsanalyse ergab, dass die sechs Schlüsselgene unterschiedliche Assoziationsmuster mit Untergruppen von Immunzellen aufwiesen. Insbesondere waren UPP1, PRKCDBP und B4GALT2 positiv mit den Infiltrationsgraden von Gedächtnis-B-Zellen, aktiven dendritischen Zellen und myeloiden suppressorischen Zellen korreliert (Spearman ρ > 0,4, p < 0,05), während PTRF, TOR3A und FAM168B negative Korrelationen mit T-Helferzellen vom Typ 1 und aktiven B-Zellen aufwiesen (Spearman ρ < −0,3, p < 0,05). Die vollständige Korrelationsmatrix ist in der Heatmap dargestellt (Abbildung 5B). Die Arzneimittelvorhersageanalyse identifizierte UPP1 als einziges Gen unter den sechs Kandidaten mit vorhergesagten Wechselwirkungen mit kleinen Molekülen. Drei Verbindungen, darunter Fluorouracil, Capecitabin und 5-Benzylacyclouridin, wurden aus der Datenbank als potenzielle UPP1-Interaktionsverbindungen identifiziert (Abbildung 5C). Diese Verbindungen werden hauptsächlich in der Onkologie oder experimentellen Anwendungen eingesetzt, und ihre Relevanz für COPD bedarf weiterer Untersuchungen. Berechnungen der Bindungsenergie ergaben, dass 5-Benzylacyclouridin die stärkste Bindungsaffinität aufwies, was auf eine relativ höhere vorhergesagte Bindungsaffinität hindeutet (Tabelle 3). Molekulare Docking-Visualisierungen für alle drei Verbindungen zeigten günstige vorhergesagte Bindungskonformationen mit UPP1, was mit computergestützten Docking-Vorhersagen und nicht mit experimenteller Validierung übereinstimmt (Abbildung 5D–F). Zusätzlich zeigte die CTD-Analyse, dass alle sechs Schlüsselgene stark mit verschiedenen Krankheitsphänotypen assoziiert waren, darunter verzögerte Effekte pränataler Exposition, Gewichtsverlust, Hepatomegalie und Entzündung (Abbildung 5G–L).
Validierung wichtiger diagnostischer Gene mittels RT-qPCR in klinischen Proben
Zur Validierung der Expressionslevel wichtiger Gene wurden Blutproben von acht COPD-Patienten und acht Kontrollpersonen gesammelt, und diese Analyse galt aufgrund der begrenzten Stichprobengröße als vorläufige Validierung. Wie in Abbildung 6A–F dargestellt, waren PTRF, TOR3A und FAM168B in COPD-Proben signifikant herunterreguliert, während PRKCDBP und UPP1 signifikant hochreguliert waren, was mit den in der bioinformatischen Analyse beobachteten Trends übereinstimmt. Im Gegensatz dazu zeigte sich kein signifikanter Unterschied in der Expression von B4GALT2 zwischen den beiden Gruppen. Diese Diskrepanz könnte auf die begrenzte Stichprobengröße oder Unterschiede in den Probentypen zwischen Datensätzen und klinischen Proben zurückzuführen sein.
ERKLÄRUNG ZUR VERFÜGBARKEIT VON DATEN:
Alle RNA-Sequenzierungsdaten wurden aus der Gene Expression Omnibus-Datenbank (GEO, https://www.ncbi.nlm.nih.gov) bezogen, wobei GSE54837 als Trainingsset und GSE112811 als Validierungsset ausgewählt wurden. Der in dieser Analyse verwendete Code kann unter https://doi.org/10.5281/zenodo.21771476 abgerufen werden.

Abbildung 1: Identifizierung überlappender Gene, Anreicherungsanalyse und Konstruktion des PPI-Netzwerks. (A) Volcano-Plot der DEGs im GSE54837-Datensatz. (B) Soft-Threshold-Auswahl. (C) Modul-Clustering-Dendrogramm (nach dem Zusammenführen). (D) Wärmekarte der Korrelation zwischen Modulen und Merkmalen. (E) Venn-Diagramm zur Identifizierung überlappender Gene. (F) Maulbeerdiagramm der GO-Anreicherungsanalyse, das die wichtigsten Anreicherungsergebnisse der Schnittmengengene in MF, CC und BP zeigt. (G) Lollipop-Diagramm der KEGG-Signalweg-Anreicherungsanalyse, wobei die Blasengröße die Anzahl der angereicherten Gene repräsentiert. (H) PPI-Netzwerk der überlappenden Gene; Knoten repräsentieren Proteine und Kanten repräsentieren Protein-Protein-Interaktionen. Abkürzungen: DEGs = differentiell exprimierte Gene; PPI = Protein-Protein-Interaktion; GO = Genontologie; MF = molekulare Funktion; CC = zelluläre Komponente; BP = biologischer Prozess; KEGG = Kyoto-Enzyklopädie der Gene und Genome; ac4C-RGs = N4-Acetylcytidin-bezogene Gene. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 2: Identifizierung von sechs Schlüsselgenen bei COPD. (A) LASSO-Kreuzvalidierungskurve. (B) Pfaddiagramm der LASSO-Regressionskoeffizienten. Mit steigendem λ konvergieren die Koeffizienten unwichtiger Gene gegen 0. (C) Rangfolge der Merkmalswichtigkeit nach XGBoost. Die x-Achse zeigt den Gewinnwert (gain), die y-Achse den Gennamen und die Farbintensität stellt die Wichtigkeit dar. (D) Rangfolge der Merkmalswichtigkeit nach RF (Random Forest). Die x-Achse zeigt die mittlere Abnahme des Gini-Koeffizienten. (E) Das Venn-Diagramm der überlappenden Gene, die durch die Kreuzanalyse der drei Algorithmen ermittelt wurden. Abkürzungen: LASSO = least absolute shrinkage and selection operator; XGBoost = extreme gradient boosting; RF = random forest. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Ansicht dieser Abbildung einzusehen.

Abbildung 3: Erstellung eines diagnostischen Modells und Expressionsanalyse von Schlüsselgenen. (A) ROC-Kurve der Trainingsstichprobe. (B) ROC-Kurve der internen Teststichprobe. (C) ROC-Kurve der externen Validierungsstichprobe. (D) Kalibrationskurve der Trainingsstichprobe. (E) DCA der Trainingsstichprobe. (F) Kalibrationskurve der externen Validierungsstichprobe. (G) DCA der externen Validierungsstichprobe. (H) Nomogramm von sechs Schlüsselgenen. Zur Vorhersage des individuellen COPD-Risikos erhält jedes Gen eine entsprechende Punktzahl. (I) Expressionsanalyse der sechs Schlüsselgene in COPD- und Kontrollproben des GSE54837-Datensatzes. Abkürzungen: ROC = receiver operating characteristic; AUC = area under the curve; DCA = decision curve analysis; COPD = chronische obstruktive Lungenerkrankung. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4: Regulatorisches Netzwerk und funktionelle Bedeutung zentraler Gene bei COPD. (A) Ergebnisse der GeneMANIA-Analyse für 6 zentrale Gene. Die Farbe der Linien zeigt die Korrelation zwischen den Genen an, die Farbe der Knoten zeigt unterschiedliche funktionelle Kategorien. (B) Venn-Diagramm der Kreuzanalyse der Datenbanken DIANA-microT und miRanda. (C) Maulbeer-Diagramm des ceRNA-Regulationsnetzwerks. (D) Potentielles regulatorisches Netzwerk von Transkriptionsfaktoren. Blaue Knoten repräsentieren Transkriptionsfaktoren, orangefarbene Knoten repräsentieren Zielgene. (E) Einzelgen-GSEA-Anreicherungsanalyse von UPP1, einschließlich GO. (F) Einzelgen-GSEA-Anreicherungsanalyse von UPP1, einschließlich KEGG. Abkürzungen: GO = Genontologie; KEGG = Kyoto-Enzyklopädie der Gene und Genome. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 5: Immuninfiltration von Schlüsselgenen und Vorhersage von Arzneimittelzielen bei COPD. (A) Unterschiede in der Häufigkeit von Immunzellen zwischen den Gruppen. (B) Heatmap der Korrelation zwischen Immunzellen und Schlüsselgenen. (C) Interaktionsnetzwerk zwischen Schlüsselgenen und vorhergesagten Arzneimitteln. (D) Molekulares Docking von Fluorouracil mit UPP1. (E) Molekulares Docking von Capecitabin mit UPP1. (F) Molekulares Docking von 5-Benzylacyclouridin mit UPP1. Bei jeder Verbindung zeigt das linke Bild die gesamte Docking-Konformation und das rechte Bild die lokalen Bindungsinteraktionen. (G) CTD-Analyse von B4GALT2. (H) CTD-Analyse von FAM168B. (I) CTD-Analyse von PRKCDBP. (J) CTD-Analyse von PTRF. (K) CTD-Analyse von TOR3A. (L) CTD-Analyse von UPP1. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 6: RT-qPCR-Validierung der Expression wichtiger Gene in COPD- und Kontrollproben. (A) Relative Expression von PTRF. (B) Relative Expression von PRKCDBP. (C) Relative Expression von UPP1. (D) Relative Expression von TOR3A. (E) Relative Expression von FAM168B. (F) Relative Expression von B4GALT2. ns = nicht signifikant, p > 0,05; * p < 0,05; ** p < 0,01; *** p < 0,001; **** p < 0,0001. Abkürzung: RT-qPCR = reverse Transkriptions-quantitative Polymerase-Kettenreaktion. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
Erweiterte Abbildung 1: Proben des GSE54837-Datensatzes und Genmodul-Clustering. (A) Probendendrogramm des GSE54837-Datensatzes. (B) Modul-Clustering-Dendrogramm vor dem Zusammenführen. Gene wurden mithilfe der dynamischen Baumabschneidemethode gruppiert, um unterschiedliche Module zu identifizieren. (C) Dendrogramm der hierarchischen Clusterung von Moduleigenen. Module mit ähnlichen Expressionsmustern wurden basierend auf der Ähnlichkeit ihrer Eigenene gruppiert.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Abbildung 2, Zusatzmaterial: GSEA-Anreicherungsanalyse. (A) GO-Analyse von PRKCDBP. (B) KEGG-Analyse von PRKCDBP. (C) GO-Analyse von PTRF. (D) KEGG-Analyse von PTRF. (E) GO-Analyse von TOR3A. (F) KEGG-Analyse von TOR3A. (G) GO-Analyse von FAM168B. (H) KEGG-Analyse von FAM168B. (I) GO-Analyse von B4GALT2. (J) KEGG-Analyse von B4GALT2. Abkürzungen: GO = Genontologie; KEGG = Kyoto-Enzyklopädie der Gene und des Genoms.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
| Datensatz | Kontrollen | Patienten | Sequenzierplattform |
| GSE54837 | 90 | 136 | GPL570 |
| GSE112811 | 44 | 20 | GPL570 |
Tabelle 1: Genexpressions-Datensätze, die in der Studie verwendet wurden. Merkmale der Datensätze GSE54837 und GSE112811, die zur Modellentwicklung/inneren Testung bzw. zur externen Validierung verwendet wurden.
| Patient | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| Geschlecht (w/m) | M | M | M | F | M | M | M | M |
| Alter (Jahre) | 69 | 72 | 75 | 73 | 68 | 70 | 69 | 71 |
| Raucherstatus | Ja | Ja | Aufgehört zu rauchen (2 Jahre) | Nein | Ja | Ja | Ja | Aufgehört zu rauchen (5 Jahre) |
| Packungsjahre | 20 pro Tag / 30 Jahre | 15 pro Tag / 35 Jahre | 20 pro Tag / 50 Jahre | | 20 pro Tag / 40 Jahre | 30 pro Tag / 40 Jahre | 15 pro Tag / 40 Jahre | 20 pro Tag / 30 Jahre |
| COPD-Gruppe | 2 | 3 | 3 | 2 | 2 | 3 | 2 | 3 |
Tabelle 2: Baseline-Charakteristika der Studienteilnehmer. Baseline-Demografika und klinische Charakteristika der COPD-Patienten und gesunden Kontrollen, die in die RT-qPCR-Validierung eingeschlossen wurden.
| Molekularer Name | Gen | Bewertung (kcal/mol) |
| 5-Benzylacyclouridin | UPP1 | -9.6 |
| Capecitabin | UPP1 | -6.1 |
| Fluorouracil | UPP1 | -5.5 |
Tabelle 3: Ergebnisse der molekularen Docking-Analyse für UPP1 und Kandidatenverbindungen.
Vorhergesagte Ergebnisse der molekularen Docking-Analyse für die Wechselwirkung von UPP1 mit Fluorouracil, Capecitabin und 5-Benzylacyclouridin, einschließlich ihrer Bindungsaffinitäten.