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Die Studie wurde gemäß der Erklärung von Helsinki durchgeführt, und das Protokoll wurde im November 2024 vom Ethikausschuss des Dritten Krankenhauses der Hebei Medizinischen Universität (W2025-065-1) genehmigt. Von allen an der Studie beteiligten Probanden wurde eine informierte Zustimmung eingeholt.
Datenquelle und Vorverarbeitung
RNA-Seq-Daten, die mit HF assoziiert sind, wurden gewonnen, darunter zwei Mikroarray-Datensätze aus dem Gene Expression Omnibus (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/). Es wurden zwei periphere Blutmikroarray-Datensätze ausgewählt: GSE59867 (34 HF-Proben und 30 Kontrollen) wurde als Trainingsdatensatz verwendet; GSE57338 (177 HF-Proben und 136 Kontrollgruppen) wurde als Validierungsdatensatz verwendet. Klinische Informationen, die für GSE57338 verfügbar sind, einschließlich Alter, Geschlecht und Krankheitsstatus, wurden aus GEO entnommen und sind in ergänzender Tabelle 1 zusammengefasst. Zusätzlich wurden insgesamt 3.893 SUMOylationsbezogene Gene (SRGs) aus der dbPTM-Datenbank (https://awi.cuhk.edu.cn/dbPTM/index.php) gewonnen (Ergänzende Tabelle 2), während 2.030 mitochondrienbezogene Gene (MRGs) auf Basis einer früheren Studie24 (Ergänzende Tabelle 3) gesammelt wurden. Anschließend wurde das R-Paket GEOquery (v 2.72.0)25 verwendet, um Datensätze aus der GEO-Datenbank herunterzuladen, die Ausdrucksmatrix zu extrahieren und die Beispielphänotypinformationen zu erhalten. Die Annotation erfolgte, indem die Annotationsdatei abgebildet und die Gen-IDs abgeglichen wurden. Ungültige Gen-IDs wurden entfernt, und die am stärksten exprimierten Sonden wurden beibehalten.
Wichtige Genselektion mittels maschinellem Lernen
Ein mehrstufiger Ansatz wurde verwendet, um die Gene zu selektieren, die mit der HF, SUMOylation und Mitochondrien verwandt sind. Erstens wurden die gemeinsamen Gene zwischen dem Trainingsdatensatz, den SRGs und den MRGs mittels Schnittanalyse identifiziert. Die potenzielle Funktion gemeinsamer Gene wurde durch die Gene Ontology (GO) und die Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) Anreicherungsanalyse mit dem R-Paket ClusterProfiler (v 4.12.6)26 identifiziert. Anschließend wurden drei Machine-Learning-Ansätze eingesetzt, nämlich LASSO-Regression, XGBoost und Random Forest (RF), um die Gene weiter zu filtern. Bei der LASSO-Regression wurde der optimale Regularisierungsparameter λ mittels Kreuzvalidierung ausgewählt, um die genetischen Merkmale mit dem höchsten Prädiktionswert zu identifizieren. Die nicht null liegenden Koeffizientengene wurden für die nachfolgende Analyse ausgewählt. Anschließend wurden XGBoost- und RF-Algorithmen verwendet, um die Feature-Importance Scores zu berechnen und die Top 20 Gene zu screenen.
Aufbau und Bewertung diagnostischer Modelle
Ein diagnostisches Modell wurde mit logistischer Regression auf Basis des GSE59867 Datensatzes erstellt. Das Modell wurde dann angewendet, um den Krankheitsstatus vorherzusagen und Wahrscheinlichkeitswerte zu berechnen. Zur Validierung des Modells wurden dieselben Schlüsselgene aus dem GSE57338-Datensatz extrahiert, an den Trainingsdatensatz angepasst und für externe Vorhersagen verwendet. Die Modellleistung wurde anhand von Receiver Operating Characteristic (ROC)-Kurven, Confusion Matrix, Calibration Curve und Decision Curve Analysis (DCA) bewertet.
Gen-Satz-Anreicherungsanalyse (GSEA) und subzelluläre Lokalisierung
Die Spearman-Korrelationsanalyse wurde verwendet, um korrelierte Gene für jedes Schlüsselgen zu identifizieren. Die GSEA-Analyse wurde mit dem R-Paket ClusterProfiler (v 4.12.6) an den verwandten Genen der Schlüsselgene durchgeführt. Um die genaue subzelluläre Lokalisierung der Schlüsselgene innerhalb der Zelle zu bestimmen, wurde ihre subzelluläre Lokalisierung mithilfe der GeneCards-Datenbank (https://www.genecards.org/) bestimmt.
Gen-Krankheits-Assoziation und Arzneimittelvorhersage
Um die klinische Relevanz der identifizierten Schlüsselgene zu bewerten, wurden systematische Krankheitsassoziations- und Arzneimittel-Interaktionsanalysen durchgeführt. Krankheits-Gen-Assoziationen wurden mit der Comparative Toxicogenomics Database (CTD; https://ctdbase.org/) untersucht, wobei die Ergebnisse sowohl nach Inferenzwerten als auch nach Referenzzählungen (die 10 berichteten Assoziationen) bewertet wurden. Gen-Arzneimittel-Interaktionsdaten für Schlüsselgene wurden aus der Drug-Gene Interaction Datenbank (DGIdb) gewonnen, und Medikamente wurden aufgrund eines Wechselwirkungsscores < 0,5 ausgeschlossen. Anschließend luden wir die 3D-Strukturen von Proteinen, die den Schlüsselgenen entsprechen, aus der PDB-Datenbank (https://www.rcsb.org/) und die molekularen Strukturen potenzieller Medikamente aus PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/) herunter. Anschließend wurde die molekulare Andockungsanalyse mit CB-Dock227 (https://cadd.labshare.cn/cb-dock2/php/index.php) durchgeführt, um die Bindungswerte zwischen den potenziellen Medikamenten und Proteinen zu berechnen. Eine geringere freie Bindungsenergie deutet auf eine stabilere Wechselwirkung hin, was darauf hindeutet, dass die Verbindung ein größeres Zielpotenzial haben könnte.
Immuninfiltrationsanalyse
Die Infiltration von Immunzellen wurde mit drei komplementären Methoden bewertet: Microenvironment Cell Populations-counter (MCP-counter)28, Zelltyp-Identifikation durch Schätzung relativer Teilmengen von RNA-Transkripten (CIBERSORT)29 und Einzelprobenanreicherungsanalyse (ssGSEA)30. MCP-Zähler und CIBERSORT-Analysen wurden mit dem R-Paket IOBR (v 0.99.0)31 durchgeführt. Der MCP-Zähler wurde verwendet, um die Häufigkeit von Immun- und Stromenzellen zu schätzen, während CIBERSORT verwendet wurde, um die relativen Anteile von 22 Immunzelltypen zu quantifizieren. ssGSEA wurde mit dem GSVA-Paket (v1.52.3)32 durchgeführt, um die probennahe Anreicherung von Immunzell-Subtypen zu evaluieren.
Aufbau des konkurrierenden endogenen RNA-(ceRNA)-Regulationsnetzwerks
Um die potenziellen regulatorischen Rollen von miRNA–lncRNA im Zusammenhang mit zuvor identifizierten Schlüsselgenen zu untersuchen, wurde ein ceRNA-Regulationsnetzwerk aufgebaut. Das R-Paket multiMiR (v 1.26.0)33 wurde verwendet, um potenzielle microRNA (miRNA)–mRNA-Interaktionen für Schlüsselgene vorherzusagen, wobei Daten aus PITA (https://omictools.com/pita-tool/) und der miRDB-Datenbank (https://mirdb.org/) integriert wurden. miRNA–mRNA-Paare mit hoher Zuverlässigkeit und Konsistenz wurden ausgewählt. Anschließend wurden lncRNA–miRNA-Interaktionen aus der StarBase-Datenbank (https://rnasysu.com/encori/) abgerufen und auf Interaktionen gefiltert, die von ≥ 10 CLIP-seq-Experimenten unterstützt und als lincRNAs kategorisiert wurden. Ein ceRNA-Netzwerk wurde durch Integration von lncRNA-miRNA-mRNA-Interaktionen aufgebaut.
qPCR-Validierung
Zur Validierung der Expression wichtiger Gene wurden Blutproben von Patienten mit HF und gesunden Kontrollgruppen aus der klinischen Kohorte (n = 6 pro Gruppe) im Dritten Krankenhaus der Hebei Medical University (W2025-065-1) unter genehmigten Protokollen und informierter Zustimmung entnommen. Die Gesamt-RNA wurde mithilfe des TRIzol-Reagens in Kombination mit Chloroform und Isopropanol isoliert. Nach der Extraktion wurde RNA in DEPC-behandeltem Wasser gelöst, und ihre Konzentration sowie Reinheit wurden mit einem NanoDrop-Spektrophotometer bewertet. Für die transkriptionelle Analyse wurde RNA rückwärts in cDNA mit dem Fast First-Strand cDNA Synthesis Mix for RT (mit dsDNase) transkribiert. Anschließend wurde quantitative PCR mit dem Fast Taq qPCR SYBR Green Mix durchgeführt. Die spezifischen Primer-Sequenzen sind in der Materialtabelle detailliert dargestellt. Die relativen Genexpressionsniveaus wurden mit der 2-ΔΔCT-Methode mit entsprechender Normalisierung berechnet.
Statistische Analyse
Alle statistischen Analysen wurden mit R-Software und GraphPad Prism durchgeführt. Statistische Vergleiche zwischen zwei unabhängigen Gruppen wurden je nach Datenverteilung entweder mit dem Student's t-Test oder dem Mann-Whitney-U-Test durchgeführt. Ein p-Wert von weniger als 0,05 wurde als statistische Signifikanz betrachtet.