Screening der Kandidatenbestandteile, Abruf der Zielstrukturen und Schnittmenge der Zielstrukturen
Der Arbeitsablauf zur Identifizierung von potenziellen Überlappungszielen zwischen Verbindungen und Krankheiten ist in Abbildung 1A zusammengefasst. Sieben potenzielle Verbindungen von C. sinensis erfüllten die vorab festgelegten Screening-Kriterien von OB ≥30 % und DL ≥0,18, darunter Arachidonsäure, Linoleylacetat, β-Sitosterol, Peroxyergosterol, Cerevisterol, Cholesterinpalmitat und CLR (Tabelle 2). Parallel dazu wurden 1.134 mit Glomerulonephritis assoziierte Gene aus GeneCards, DisGeNET, PharmGKB und TTD abgerufen, und deren Verteilung über die vier Datenbanken hinweg ist in Abbildung 1B dargestellt. Eine Schnittmengenanalyse zwischen der menge der verbindungsassoziierten Ziele und der menge der krankheitsassoziierten Gene ergab 23 gemeinsame Ziele (Tabelle 1, Abbildung 1C). Das entsprechende Netzwerk aus Verbindungen und gemeinsamen Zielstrukturen ist in Abbildung 1D dargestellt und veranschaulicht die Beziehungen zwischen repräsentativen potenziellen Verbindungen, überlappenden Zielgenen und CGN. Zu diesen überlappenden Zielstrukturen gehörten mehrere Gene, die mit der Regulation von Entzündungen, Apoptose und vaskulären Signalwegen assoziiert sind, wie beispielsweise PTGS2, CASP3, MAPK1, PPARG, TNFRSF1A und NOS3.
Funktionelle Anreicherung und Protein-Protein-Interaktionsanalysen
Um die biologische Bedeutung der 23 überlappenden Zielstrukturen zu untersuchen, wurden GO- und KEGG-Pfad-Anreicherungsanalysen durchgeführt. Die Ergebnisse zeigten, dass diese Zielstrukturen signifikant in mehreren entzündungs- und stoffwechselbezogenen Wegen angereichert sind.
Die GO-Analyse klassifizierte die Zielstrukturen in die Kategorien biologischer Prozess (BP), zelluläre Komponente (CC) und molekulare Funktion (MF). Zu den am stärksten angereicherten BP-Termen gehörten die Reaktion auf Lipopolysaccharid, die Reaktion auf Moleküle bakteriellen Ursprungs und die Regulation von Muskel-System-Prozessen. Auf zellulärer Ebene waren die Zielstrukturen in Membranrafts, Caveolen und alpha-Granula der Thrombozyten angereichert, während MF-Terme wie Oxidoreduktase-Aktivität und nukleare Rezeptorbindung weitere Hinweise auf Funktionen im oxidativen Stress und in der transkriptionellen Regulation lieferten (Abbildung 2A).
Die KEGG-Analyse ergab, dass der Stoffwechselweg für Lipide und Atherosklerose (hsa05417) am stärksten angereichert war (q-Wert <1 × 10−6), zusammen mit Wegen wie der AGE–RAGE-Signalübertragung bei diabetischen Komplikationen, der TNF-Signalübertragung, der IL-17-Signalübertragung und der HIF-1-Signalübertragung (Abbildung 2B). Bemerkenswerterweise waren im Stoffwechselweg für Lipide und Atherosklerose 10 der 23 Zielstrukturen beteiligt, darunter CASP3, MAPK1, PPARG, NOS3 und TNFRSF1A.
Insgesamt zeigen diese Anreicherungsergebnisse, dass die überlappenden Zielstrukturen funktionell mit entzündlichen, stressbedingten und endothelbezogenen biologischen Prozessen assoziiert sind, die für CGN von Relevanz sind.
Analysen von Protein-Protein-Interaktionsnetzwerken
Ein Protein-Protein-Interaktionsnetzwerk (PPI) für die 23 überlappenden Zielstrukturen wurde mittels STRING erstellt und ergab ein Netzwerk mit 23 Knoten und 102 Kanten (Abbildung 3A). Die topologische Analyse mit CytoNCA identifizierte neun stark vernetzte Hub-Zielstrukturen: PTGS2, MAPK1, PPARG, CASP3, EGF, JUN, PECAM1, BCL2 und PRKCA (Abbildung 3B). Unter diesen Zielstrukturen wies PTGS2 eine hervorragende Netzwerkzentralität auf und wurde daher für die anschließende molekulare Docking-Analyse ausgewählt. Diese Ergebnisse unterstreichen eine Teilmenge netzwerkbasierter Kandidatenregulatoren, die möglicherweise für den Schnittbereich zwischen Verbindung und Krankheit relevant sind.
Molekulares Docking und Validierung des Redockings
Um die strukturelle Plausibilität der durch Netzwerkanalyse identifizierten PTGS2-assoziierten Kandidatenbeziehungen weiter zu bewerten, wurde eine molekulare Docking-Analyse unter Verwendung einer Celecoxib-gebundenen COX-2-Struktur durchgeführt. Die Kristallstruktur mit der PDB-ID 3LN1 wurde ausgewählt, da sie Celecoxib gebunden an die aktive Stelle von COX-2 enthält und somit eine experimentell definierte Liganden-Bindungsstelle für die Validierung des Docking-Verfahrens bereitstellt. Der ko-kristallisierte Celecoxib-Ligand wurde zunächst extrahiert und anschließend erneut in dieselbe Bindungsstelle gedockt. Die neu gedockte Celecoxib-Konformation reproduzierte die kristallographische Konformation sehr genau mit einer Wurzel-des-mittleren-quadratischen-Abweichung (RMSD) von 0,876 Å und einer vorhergesagten Bindungsaffinität von -12,3 kcal/mol (Abbildung 4A). Dieses Ergebnis zeigte, dass das Docking-Protokoll in der Lage war, die bekannte Liganden-Bindungskonformation unter den gewählten Docking-Bedingungen zu reproduzieren.
Unter Verwendung desselben Rezeptors, der Gitterbox und derselben Docking-Parameter wurde β-Sitosterol in die durch Celecoxib definierte COX-2-Bindungsregion eingedockt. β-Sitosterol zeigte eine vorhergesagte Bindungsaffinität von -7,2 kcal/mol (Abbildung 4B). Die eingedockte Pose befand sich innerhalb der vordefinierten COX-2-Docking-Region, und die Aminosäurereste, die die eingedockte β-Sitosterol-Pose umgaben, umfassten ASN567, ASP333, GLN178, GLN336, GLY340, HIS337, HIS80, PRO500, THR79 und TYR341.
Linoleylacetat wurde ebenfalls als sekundärer rechnergestützter Kandidat bewertet, da es in der Liste der Kandidatenbestandteile enthalten war und in der Netzwerkanalyse mit PTGS2 verknüpft wurde. Unter denselben Docking-Bedingungen zeigte Linoleylacetat eine vorhergesagte Bindungsaffinität von -7,5 kcal/mol, was geringfügig günstiger war als die von β-Sitosterol (Abbildung 4C). Die vorhergesagte Bindungsposition lag nahe dem Referenzliganden Celecoxib innerhalb der Docking-Region. Zu den Aminosäureresten, die Linoleylacetat umgaben, gehörten ALA502, ALA513, ARG106, ARG499, GLN178, GLY512, HIS75, ILE503, LEU338, LEU345, LEU517, MET508, PHE504, SER339, SER516, TRP373, TYR371, VAL102, VAL335 und VAL509.
Zellviabilität, entzündliche Aktivierung und profibrotische Aktivierung
β-Sitosterol wurde aufgrund der Identifizierung als PTGS2-assoziiierter Kandidat in der Netzwerkanalyse und aufgrund vorheriger experimenteller Hinweise für antiinflammatorische und antifibrotische Wirkungen für die Validierung auf Verbindungsebene ausgewählt. Zunächst wurde die Zellviabilität bestimmt, um den für nachfolgende Experimente geeigneten Konzentrationsbereich festzulegen. Die Behandlung mit β-Sitosterol bei 0,5, 1, 5 und 10 µM verringerte die Zellviabilität im Vergleich zur Kontrollgruppe nicht signifikant, während 20 µM β-Sitosterol eine leichte Abnahme verursachten. Die Exposition gegenüber LPS reduzierte die Zellviabilität, und eine gleichzeitige Behandlung mit β-Sitosterol verbesserte die Zellviabilität unter LPS-Stimulation teilweise, wobei der deutlichste Effekt bei 10 µM beobachtet wurde (Abbildung 5A). Basierend auf diesen Ergebnissen wurden 1, 5 und 10 µM β-Sitosterol in den folgenden Experimenten zur LPS-induzierten inflammatorischen Aktivierung verwendet.
Die LPS-Stimulation erhöhte die mRNA-Expression entzündlicher Gene in HBZY-1-Zellen deutlich. Im Vergleich zur Kontrollgruppe zeigte die LPS-Gruppe höhere Expressionsniveaus von Tnf, Il6 und Ptgs2 (Abbildung 5B-D). Die Behandlung mit β-Sitosterol verringerte die LPS-induzierte Hochregulation dieser Gene in konzentrationsabhängiger Weise. Der hemmende Trend war in der Gruppe mit LPS und 10 µM β-Sitosterol am deutlichsten ausgeprägt. Celecoxib, das als funktioneller COX-2-Hemmer-Kontrollstoff enthalten war, reduzierte die Expression entzündlicher Gene ebenfalls in gewissem Maße, obwohl seine Wirkung bei mehreren transkriptionellen Markern weniger ausgeprägt war als die von 10 µM β-Sitosterol (Abbildung 5B-D).
Da Ptgs2 COX-2 kodiert und PGE2 ein wichtiges downstream-Prostaglandinprodukt der COX-2-Aktivität ist, wurde die PGE2-Sekretion mittels ELISA gemessen. Die LPS-Behandlung erhöhte die PGE2-Konzentration im Kulturüberstand im Vergleich zur Kontrollgruppe. β-Sitosterol verringerte die LPS-induzierte PGE2-Produktion in konzentrationsabhängiger Weise. Celecoxib reduzierte ebenfalls die PGE2-Produktion und diente als positiver Kontrollwert für die funktionelle Hemmung der COX-2/PGE2-Achse (Abbildung 5E). Die Western-Blot-Analyse zeigte zudem, dass LPS die Menge des COX-2-Proteins erhöhte. Die Behandlung mit β-Sitosterol senkte die COX-2-Proteinmengen unter LPS-Stimulation, wobei eine stärkere Reduktion bei höherer Konzentration beobachtet wurde. Im Gegensatz dazu reduzierte Celecoxib die PGE2-Produktion, zeigte aber einen begrenzteren Effekt auf die COX-2-Proteinmenge (Abbildung 5F).
Um das durch LPS induzierte Entzündungsmodell zu ergänzen, wurde ein durch TGF-β1 induziertes profibrotisches Aktivierungsmodell verwendet, um zu prüfen, ob β-Sitosterol die Expression fibrotischer Marker in mesangialen Zellen beeinflusst. TGF-β1 erhöhte im Vergleich zur Kontrollgruppe deutlich die mRNA-Expression von Col1a1 und Acta2 (Abbildung 6A,B). β-Sitosterol verringerte den durch TGF-β1 hervorgerufenen Anstieg beider Marker, wobei die Reduktion bei 10 µM stärker ausgeprägt war als bei 5 µM (Abbildung 6A,B). Die Western-Blot-Analyse zeigte eine entsprechende Zunahme der α-SMA-Proteinexpression nach Stimulation mit TGF-β1, während die Behandlung mit β-Sitosterol die Menge des α-SMA-Proteins in TGF-β1-behandelten Zellen verringerte (Abbildung 6C).
VERFÜGBARKEIT VON DATEN:
Die Roh- und Verarbeitungsdaten, die diese Studie unterstützen, wurden in Zenodo unter der DOI: https://zenodo.org/records/21649482 hinterlegt. Die Vollbilddarstellungen der Western Blot sind als Zusatzdatei 1 verfügbar.

Abbildung 1. Arbeitsablauf und netzwerkbasierte Identifizierung von potenziellen Wirkstoff-Zielstruktur-Überschneidungen von C. sinensis bei Glomerulonephritis. (A) Schematischer Arbeitsablauf zur Identifizierung von Wirkstoffkandidaten, Abruf und Standardisierung von verknüpften Wirkstoffzielen, Abruf von mit Glomerulonephritis assoziierten Genen, Durchführung einer Schnittmengenanalyse und Erstellung des Wirkstoff-Überschneidungsziel-Netzwerks. (B) Venn-Diagramm zur Darstellung der Verteilung der aus GeneCards, DisGeNET, PharmGKB und TTD abgerufenen mit Glomerulonephritis assoziierten Gene. (C) Venn-Diagramm zur Veranschaulichung der Überschneidung zwischen aus TCMSP abgeleiteten, mit Wirkstoffen assoziierten Zielstrukturen und krankheitsassoziierten Genen, woraus sich 23 gemeinsame Zielstrukturen ergeben. (D) Wirkstoff-Überschneidungsziel-Netzwerk. Die grüne Raute steht für C. sinensis, blaue Sechsecke repräsentieren Wirkstoffkandidaten, gelbe Kreise zeigen die überschneidenden Zielstrukturen an und das rosa Dreieck repräsentiert CGN. Kanten veranschaulichen die entsprechenden Wirkstoff-Ziel oder Krankheit-Ziel-Beziehungen. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 2. Funktionsanreicherungsanalyse der überlappenden Zielstrukturen. (A) GO-Anreicherungsanalyse der 23 überlappenden Zielstrukturen. Die oberen BP-, CC- und MF-Terme wurden identifiziert. Die Balkenlänge gibt die Genanzahl an; der Farbverlauf repräsentiert den q-Wert. (B) KEGG-Anreicherungsanalyse der 23 überlappenden Zielstrukturen. Die Signalwege sind nach Genanzahl und statistischer Signifikanz geordnet. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 3. Protein-Protein-Interaktionsnetzwerk und HUB-Ziel-Priorisierung der überlappenden Ziele. (A) PPI-Netzwerk, konstruiert aus den 23 überlappenden Zielstrukturen mittels STRING mit einer Interaktionsscore-Schwelle >0,4. (B) Die neun wichtigsten HUB-Ziele wurden durch eine netzwerktopologische Analyse auf Basis von CytoNCA priorisiert. PTGS2 zeigte eine hervorragende Netzwerkzentralität und wurde für die anschließende molekulare Docking-Analyse ausgewählt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 4. Molekulares Docking und Redocking-Validierung ausgewählter Kandidatenverbindungen mit COX-2. (A) Überlagerung der kristallographischen Celecoxib-Position und der am höchsten bewerteten redockierten Pose in der murinen COX-2-Struktur, die an Celecoxib gebunden ist (PDB-ID 3LN1). Das Redocking reproduzierte die experimentelle Bindungsorientierung. (B) Am höchsten bewertete Docking-Pose von β-Sitosterol innerhalb des durch Celecoxib definierten COX-2-Docking-Bereichs. Die kristallographische Celecoxib-Pose ist als räumliche Referenz enthalten. (C) Die am höchsten bewertete Docking-Pose von Linoleylacetat innerhalb desselben Docking-Bereichs. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 5. β-Sitosterol verringert die durch LPS induzierte entzündliche Aktivierung und die Produktion von PGE2 in mesangialen HBZY-1-Zellen. (A) Die Zellviabilität wurde mittels Cell Counting Kit-8-Assay gemessen. Die Zellen wurden 24 h lang mit β-Sitosterol in Konzentrationen von 0,5, 1, 5, 10 oder 20 µM behandelt. In den mit LPS stimulierten Gruppen wurden die Zellen vorab 2 h lang mit β-Sitosterol in Konzentrationen von 1, 5 oder 10 µM vorbehandelt, bevor sie 24 h lang 1 µg/mL LPS ausgesetzt wurden. Die Zellviabilität ist relativ zur Kontrollgruppe angegeben. (B–D) Quantitative Echtzeit-PCR-Analyse der mRNA-Expression von Tnf (B), Il6 (C) und Ptgs2 (D). Die Genexpression wurde auf Gapdh normalisiert und relativ zur Kontrollgruppe angegeben. (E) PGE2-Konzentrationen in Kulturüberständen, gemessen mittels enzymgekoppelter Immunadsorption (ELISA). Celecoxib wurde als funktionelle positive Kontrolle zur Hemmung der COX-2-abhängigen Prostaglandinproduktion hinzugefügt. (F) Repräsentative Western-Blot-Bilder von COX-2 und GAPDH in den angegebenen Behandlungsgruppen. Die Daten sind als Mittelwert ± SD aus sechs unabhängigen biologischen Experimenten dargestellt, wobei die individuellen Werte der biologischen Replikate angezeigt sind. Die Werte der technischen Replikate wurden vor der Analyse gemittelt. Der Vergleich erfolgte mittels einfaktorieller ANOVA, gefolgt vom Tukey’schen Test für multiple Vergleiche. Die Signifikanz ist in den einzelnen Abbildungsteilen durch Klammern gekennzeichnet: *P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001 und ****P < 0,0001. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 6. β-Sitosterol verringert die TGF-β1-induzierte Expression fibrogener Marker in HBZY-1-Mesangialzellen. (A–B) Quantitative Echtzeit-PCR-Analyse der mRNA-Expression von Col1a1 (A) und Acta2 (B). Die Genexpression wurde auf Gapdh normalisiert und relativ zur Kontrollgruppe angegeben. (C) Vertretende Western-Blot-Bilder von α-SMA und GAPDH in den angegebenen Behandlungsgruppen. Die Daten sind als Mittelwert ± SD aus sechs unabhängigen biologischen Experimenten dargestellt, wobei die individuellen Werte der biologischen Replikate angezeigt werden. Die Werte der technischen Replikate wurden vor der Analyse gemittelt. Der Vergleich erfolgte mittels einfaktorieller ANOVA, gefolgt vom Tukey-Mehrfachvergleichstest. Die Signifikanz ist in den einzelnen Diagrammen durch Klammern gekennzeichnet: *P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001 und ****P < 0,0001. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.

Abbildung 7. Integrierte Interpretation der mit β-Sitosterol assoziierten entzündlichen und profibrotischen Reaktionen in HBZY-1-Zellen. Netzwerk- und Docking-Analysen identifizierten PTGS2/COX-2 im Kontext eines breiteren Netzwerks, das MAPK1, JUN und PPARG umfasst. Die Behandlung mit β-Sitosterol war mit einer Verringerung der LPS-induzierten Expression von Tnf, Il6 und Ptgs2, der COX-2-Proteinmenge sowie der PGE2-Produktion verbunden, ebenso mit einer Verringerung der TGF-β1-induzierten Expression von Col1a1, Acta2 und α-SMA. Bitte klicken Sie hier, um eine vergrößerte Version dieser Abbildung anzusehen.
| Nr. | Überlappendes Target | Mit dem Target assoziierte Kandidatenverbindung(en) |
| 1 | PTGS1 | β-sitosterol; linoleyl acetate; arachidonic acid |
| 2 | PTGS2 | β-sitosterol; linoleyl acetate; arachidonic acid |
| 3 | CASP3 | β-sitosterol; arachidonic acid |
| 4 | CASP8 | β-sitosterol |
| 5 | BCL2 | β-sitosterol |
| 6 | JUN | β-sitosterol |
| 7 | PON1 | β-sitosterol |
| 8 | PRKCA | β-sitosterol |
| 9 | TGFB1I1 | β-sitosterol |
| 10 | ADRB2 | β-sitosterol |
| 11 | RXRA | linoleyl acetate; arachidonic acid |
| 12 | TNFRSF1A | arachidonic acid |
| 13 | TNFRSF1B | arachidonic acid |
| 14 | ALOX5 | arachidonic acid |
| 15 | SELP | arachidonic acid |
| 16 | C1R | arachidonic acid |
| 17 | COL1A2 | arachidonic acid |
| 18 | PPARG | arachidonic acid |
| 19 | PRKCB | arachidonic acid |
| 20 | NOS3 | arachidonic acid |
| 21 | PECAM1 | arachidonic acid |
| 22 | MAPK1 | arachidonic acid |
| 23 | EGF | arachidonic acid |
Tabelle 1: Überlappende Zielstrukturen zwischen aus TCMSP abgeleiteten, verbindungsassoziierten Zielstrukturen und glomerulonephritischen assoziierten Genen. Verbindung-Ziel-Beziehungen wurden aus TCMSP abgerufen, manuell entdoppelt und mithilfe von UniProt auf offizielle humane Gensymbole standardisiert.
| Name des Moleküls | MW | AlogP | OB (%) | Caco-2 | BBB | DL | FASA | HL |
| Arachidonsäure | 304.52 | 6.41 | 45.57 | 1.2 | 0.58 | 0.2 | 0.28 | 4.39 |
| Linoleylacetat | 308.56 | 6.85 | 42.1 | 1.36 | 1.08 | 0.2 | 0.21 | 7.48 |
| β-Sitosterol | 414.79 | 8.08 | 36.91 | 1.32 | 0.99 | 0.75 | 0.23 | 5.36 |
| Peroxyergosterol | 428.72 | 6.73 | 44.39 | 0.86 | -0.29 | 0.82 | 0.24 | 4.06 |
| Cerevisterol | 432.76 | 5.26 | 39.52 | 0.35 | -0.29 | 0.77 | 0.22 | 5.08 |
| Cholesterylpalmitat | 625.19 | 14.35 | 31.05 | 1.45 | 0.68 | 0.45 | 0.18 | 7.93 |
| Cholesterin (CLR) | 386.73 | 7.38 | 37.87 | 1.43 | 1.13 | 0.68 | 0.2 | 4.52 |
Tabelle 2: Kandidatenbestandteile von C. sinensis, extrahiert aus TCMSP mithilfe von Kriterien zur oralen Bioverfügbarkeit und Arzneimittelähnlichkeit. Verbindungen mit einer oralen Bioverfügbarkeit von mindestens 30 % und einer Arzneimittelähnlichkeit von mindestens 0,18 wurden beibehalten. MW, molekulare Masse; ALogP, vorhergesagener Oktanol-Wasser-Verteilungskoeffizient; OB, orale Bioverfügbarkeit; Caco-2, vorhergesagte Caco-2-Permeabilität; BBB, Blut-Hirn-Schranke-Penetration; DL, Arzneimittelähnlichkeit; FASA, anteilige negativ zugängliche Oberfläche; HL, Halbwertszeit.
Ergänzungstabelle 1. Primersequenzen, die für die quantitative Echtzeit-PCR in HBZY-1-Ratten-Glomerulamesangialzellen verwendet wurden. Alle Sequenzen sind in 5′-3′-Richtung angegeben.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
Zusatzdatei 1. Vollständige Aufnahmen der Western Blot-Analyse.Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.