Mikrochirurgische Präparation frischer menschlicher Mastektomiepräparate zur Visualisierung der fazialen und ligamentären Stützstrukturen der Brust

Zusammenfassung

Diese Studie beschreibt die mikrochirurgische Präparation faszialer und ligamentöser Stützstrukturen in Brustgewebe, das während einer prophylaktischen Mastektomie entfernt wurde. Die Ergebnisse stellen eine wertvolle Ressource für Chirurgen und Anatomieexperten dar, die die weibliche menschliche Brustanatomie untersuchen.

Zusammenfassung

Ligamentöse und fasziale Stützstrukturen wie die Cooper’schen Ligamente und das oberflächliche Fasziensystem sind wichtige strukturelle Bestandteile der weiblichen Brust, die zur Brustform, mechanischen Stabilität und Definition der chirurgischen Ebenen während brustchirurgischer Eingriffe beitragen. Obwohl frühere Studien diese Strukturen mittels Sektion an Leichen, intraoperativer Beobachtung und biomechanischer Analysen untersucht haben, liegen bisher keine Berichte über ihre Beziehungen vor, die mittels mikrochirurgischer Präparation frischen menschlichen Brustgewebes beschrieben wurden. In dieser Studie wurden frische, nicht fixierte Brustgewebeproben von Patientinnen, die einer prophylaktischen Mastektomie unterzogen wurden, von einer Brustpathologin in 2 cm dicke sagittale Schnitte geteilt. Die mikrochirurgische Präparation jedes Schnittes erfolgte unter etwa 5×–10× Vergrößerung, um Cooper’sche Ligamente und die oberflächliche Schicht der oberflächlichen Faszie (SLSF) sowie die tiefe Schicht der oberflächlichen Faszie (DLSF) zu visualisieren und zu untersuchen. Mithilfe dieses Protokolls wurden mikrochirurgische Präparationen an 24 Brustgewebeproben durchgeführt, wodurch die beobachtete strukturelle Kontinuität zwischen den Cooper’schen Ligamenten, der SLSF, der Dermis, der DLSF und der Brustfaszie sichtbar wurde. Insbesondere wurden die Cooper’schen Ligamente beobachtet, wie sie sich durch die SLSF in die Dermis erstrecken und nach posterior durch die DLSF in Richtung der Faszie über dem Musculus pectoralis major verlaufen. Dieses Protokoll ermöglicht die direkte Visualisierung des faszio-ligamentösen Stütznetzwerks der Brust und Erleichterung des anatomischen Verständnisses der Beziehungen zwischen diesen Strukturen. Diese Studie und ihr Protokoll können als wertvolle Lehr- und Forschungsressourcen für Brustchirurgen, plastische Chirurgen und fächerübergreifende Forscher dienen, die ein besseres Verständnis der faszio-ligamentösen Stützstrukturen der Brust anstreben.

Einleitung

Die Anatomie der Brust war schon immer ein Thema des Interesses sowohl in der klinischen Praxis als auch in der anatomischen Forschung, insbesondere aufgrund ihrer Bedeutung für ästhetische Brustchirurgie und die Behandlung von Brustkrebs. Eine der wichtigsten, jedoch noch wenig erforschten Komponenten der Brustanatomie sind die Cooper’schen Ligamente, ein Netzwerk aus faserigem Bindegewebe, das sich durch die Brust zieht und strukturelle Unterstützung bietet. Erstmals beschrieben von Sir Astley Cooper in seinem Buch aus dem 19. Jahrhundert,  On the Anatomy of the Breast, spielen die Cooper’schen Ligamente eine entscheidende Rolle bei der Aufrechterhaltung der Form und Position der Brust, indem sie die Haut mit der darunterliegenden Brustfascia verankern¹. Ihre Bedeutung für chirurgische und ästhetische Eingriffe hat zugenommen, insbesondere da sich die Brustchirurgie stetig weiterentwickelt. In den 1990er-Jahren betonte Ted Lockwood die Bedeutung des oberflächlichen faszialen Systems, insbesondere im Kontext von Brust- und Körpermodellierungsoperationen. Seine Arbeit unterstrich die Wichtigkeit dieser faszialen Schicht für die Erhaltung der Brustform, die Verteilung mechanischer Kräfte während des Eingriffs und die Bereitstellung einer chirurgischen Ebene für Verfahren wie Bruststraffungen (Mastopexie) und Brustrekonstruktionen^2,3. Seitdem hat sich die Aufmerksamkeit auf die Brustanatomie intensiviert, wobei verschiedene Studien die Cooper’schen Ligamente und das oberflächliche fasziale System mittels Sektion an Leichen^4,5,6, histologischer Charakterisierung⁷, Bildgebung⁸, Endoskopie⁹, intraoperativer Befunde⁴ und biomechanischer Untersuchungen^7,10,11 erforscht haben. Insgesamt haben diese Untersuchungen das aktuelle Verständnis der strukturellen Organisation des faszialen Brustsystems erweitert und die Vielfalt der in der Literatur berichteten anatomischen Befunde verdeutlicht.

Diese Untersuchungen haben unser Verständnis der strukturellen Dynamik der Brust und ihrer Veränderungen unter physiologischen und pathologischen Bedingungen vertieft. Sie enthalten jedoch nicht die detaillierten, feinskaligen Beobachtungen, die notwendig sind, um die Beziehungen zwischen den Geweben, wie sie während einer mikrochirurgischen Dissektion sichtbar werden, vollständig zu erfassen. Trotz der Fülle an Informationen aus makroskopischen Dissektionen und klinischen Eingriffen gibt es bisher keine Berichte über mikrochirurgische Dissektionen dieser Strukturen im menschlichen Brustgewebe. Solche Beobachtungen sind entscheidend, um ein tieferes Verständnis dafür zu gewinnen, wie diese anatomischen Systeme zusammenwirken, um die Architektur der Brust aufrechtzuerhalten. Daher besteht weiterhin eine bedeutende Wissenslücke hinsichtlich der Merkmale der Cooper’schen Ligamente und des oberflächlichen faszialen Systems. Für Chirurgen, insbesondere in der Brustonkologie und plastischen Chirurgie, ist ein detailliertes Verständnis dieser Systeme wichtig für die operative Planung und die anatomische Orientierung während Eingriffen wie Brustrekonstruktion, Mastektomie und Augmentation¹².

Die vorliegende Studie zielt darauf ab, diese Lücke zu schließen, indem detaillierte mikrochirurgische Beobachtungen der Cooper’schen Ligamente und des oberflächlichen faszialen Systems im Brustgewebe bereitgestellt werden, das aus prophylaktischen Mastektomiepräparaten gewonnen wurde. Mithilfe von Gewebeschnitten führten wir die Präparation dieser Strukturen unter Anwendung der im folgenden Protokoll beschriebenen mikrochirurgischen Dissektionsverfahren durch. Im Gegensatz zu früheren kadaverischen oder makroskopischen Studien ermöglicht dieses Protokoll die mikrochirurgische Visualisierung der Cooper’schen Ligamente und des oberflächlichen faszialen Systems in frischem menschlichem Brustgewebe.

Diese Studie liefert eindeutige, visuell dokumentierte Belege für die Beziehungen zwischen den Cooper’schen Ligamenten, dem oberflächlichen faszialen System und dem umgebenden Brustgewebe auf mikrochirurgischer Ebene. Diese anatomischen Beobachtungen könnten zukünftige anatomische und chirurgische Untersuchungen erleichtern. Die potenziellen Anwendungen dieser Ergebnisse in der onkologischen Brustchirurgie bedürfen weiterer Validierung anhand von Präparaten von Brustkrebspatientinnen. Für angehende Brust- und plastische Chirurgen sowie forschende Fachleute aus angrenzenden Disziplinen werden die hier präsentierten Befunde als Lehrmittel dienen und ihr Verständnis für die komplexen Details der faszialen und ligamentären Anatomie der Brust vertiefen.

Protokoll

Dieses Protokoll wurde am 05.06.2016 von der Institutional Review Board (IRB) des University of Texas MD Anderson Cancer Center unter der Aktenzeichen-Nummer PA16-0364 genehmigt. Gemäß den institutionellen Richtlinien wurde von allen Patienten, die Brustgewebeproben nach prophylaktischer Mastektomie bereitstellten, eine schriftliche informierte Einwilligung eingeholt.

HINWEIS: Dieses Protokoll beschreibt detaillierte Schritte zur mikrochirurgischen Präparation von Brustgewebe, um die Bänder und Faszie des strukturellen Stützsystems der Brust sichtbar zu machen und zu untersuchen. Die Brustchirurgen an der Institution, an der diese Studie durchgeführt wurde, verwenden routinemäßig die Elektrokauterisierung zur Präparation der Faszie des Musculus pectoralis major (Brustfasszie), um die Mastektomie-Präparate von der Brustwand bei einer totalen hautsparenden oder warzensparenden Mastektomie zu entfernen. Die Probenvorbereitung, Orientierung und mikrochirurgische Präparation werden in den folgenden Abschnitten ausführlich beschrieben.

1. Herstellung von Gewebeschnitten aus Mastektomiepräparaten

1. Sammeln Sie Mastektomiepräparate.
   1. Beziehen Sie das Brustgewebe von Patientinnen, die eine prophylaktische Mastektomie durchführen lassen, nach Genehmigung des Protokolls durch die institutionelle IRB. Holen Sie eine informierte Einwilligung ein und sammeln Sie die Gewebe gemäß ethischen und klinischen Leitlinien.
2. Schneiden Sie die Mastektomiepräparate ein.
   1. Unmittelbar nach der Mastektomie das Gewebe makroskopisch untersuchen und mit der Aufarbeitung des Mastektomiepräparats beginnen. Dies erfolgt durch einen Brustpathologen. Eine schematische Darstellung der Strategie zur Präparatschnittführung ist in Abbildung 1 dargestellt.
   2. Vor dem Einbetten orientieren und das intakte Mastektomiepräparat gemäß dem standardisierten pathologischen Farbschema einfärben: rot (kranial), orange (kaudal), grün (anterior) und schwarz (posterior).
   3. Verwenden Sie eine Pathologiemesserklinge der Größe #20, um das Präparat in etwa 2 cm dicke sagittale Schnitte zu unterteilen, wobei die native anatomische Orientierung erhalten bleibt. Verwenden Sie anschließend die beibehaltenen Farbmarkierungen, um die anatomische Orientierung des Gewebeschnitts während der weiteren Handhabung und Mikrodissektion zu bewahren.
   4. Verwenden Sie einen einzelnen repräsentativen peripheren Gewebeschnitt, der vom Brustpathologen bereitgestellt wird, für die mikrochirurgische Dissektion, da die zentralen Schnitte, die die Brustwarze oder einen Teil der Brustwarze enthalten, in der Regel für die routinemäßige klinisch-pathologische Beurteilung zurückbehalten werden.
3. Transportieren und lagern Sie das Brustgewebe.
   1. Jeden Gewebeschnitt in ein mit Kochsalzlösung angefeuchtetes Papiertuch einwickeln und im verschlossenen Plastik-gefährlichkeitsbeutel verpacken. Überführen Sie den verpackten Schnitt in die institutionelle Gewebekammer (ITB), wo er bei 4 °C gekühlt wird, bis zur mikrochirurgischen Dissektion.
      HINWEIS: Die Präparate werden vor der Dissektion weder eingefroren noch aufgetaut. Die Zeit von der Mastektomie bis zur gekühlten Lagerung beträgt in der Regel 2–3 h. Die mikrochirurgische Dissektion wird typischerweise innerhalb von 6–24 h nach der Mastektomie durchgeführt. Der Einfluss der Lagerdauer auf die Gewebequalität wurde in dieser Studie nicht formal untersucht.

2. Mikrochirurgisches Setup

1. Positionieren des Mikroskops.
   1. Positionieren Sie das Operationsmikroskop und stellen Sie eine 5×–10×-Vergrößerung ein, um eine optimale Visualisierung der Gewebestrukturen für eine präzise mikrochirurgische Präparation zu gewährleisten. Verwenden Sie einen Adapter, um ein Smartphone mit dem Mikroskop zu verbinden (Abbildung 2), und stellen Sie sicher, dass das Sichtfeld korrekt ausgerichtet ist.
      HINWEIS: Die Smartphone-Ausstattung bietet eine ausreichende Bildqualität zur Visualisierung, Dokumentation und Videoaufnahme der Präparation. Alternativ kann, falls verfügbar, ein Operationsmikroskop mit integrierter Kamera verwendet werden.
2. Vorbereitung der Präparationsinstrumente.
   1. Stellen Sie alle Präparationsinstrumente, einschließlich Pinzette und Schere, auf der Präparationsplattform bereit, um während des Eingriffs einfachen Zugriff zu haben.
3. Einrichten des Vakuums und der Lösung.
   1. Verwenden Sie ein Vakuumsystem mit einem 3-mm-Frazier-Saugkanülenspitze, um die Entfernung von Gewebe während der Präparation zu unterstützen. Stellen Sie den Vakuumdruck zwischen 180 mmHg und 200 mmHg ein.
   2. Verwenden Sie physiologische Kochsalzlösung, um die Gewebeschnitte hydratisiert zu halten und Austrocknung des Gewebes während des gesamten Eingriffs zu verhindern.
      HINWEIS: Wenn ein stärkerer Sog erforderlich ist, decken Sie vorübergehend die Entlüftungsöffnung der Frazier-Saugkanülenspitze mit dem Daumen ab, um den Sog zu erhöhen. Wenden Sie den Sog vorsichtig auf das Fettgewebe auf beiden Seiten des Ligaments an und entfernen Sie nur so viel Fettgewebe, wie notwendig ist, um das Ligament freizulegen. Vermeiden Sie direktes Absaugen des Ligaments oder faszialer Strukturen. Halten Sie zusätzliche Kochsalzlösung bereit, um die Saugkanülenspitze zu spülen, falls sie verstopft oder die Saugkraft nachlässt. Dies gewährleistet eine kontinuierliche Absaugung und verhindert Unterbrechungen während der Präparation.

3. Dissektionsprozess

HINWEIS: Frisches menschliches Brustgewebe gemäß den institutionellen Biosicherheitsvorschriften behandeln. Während der Probennahme und mikrochirurgischen Dissektion stets Einweghandschuhe, einen Laborkittel und eine chirurgische Maske tragen. Das abgesaugte Material über das institutionelle Wandabsaugsystem sammeln, wobei ein Einweg-Sammelbehälter mit Überlaufsicherung verwendet werden muss, um ein unbeabsichtigtes Eindringen von Flüssigkeiten und Absaugrückständen in das Wandvakuumsystem zu verhindern. Scharfe Gegenstände, Gewebeproben, abgesaugtes Material und andere biohazardöse Materialien gemäß den institutionellen Biosicherheitsvorschriften entsorgen.

1. Bestätigen Sie die Gewebeorientierung.
   1. Befolgen Sie die Orientierung, die vom Pathologen gekennzeichnet ist (Abbildung 3).
   2. Vor der mikroskopischen Präparation orientieren Sie die Gewebeschnitte routinemäßig so, dass die posteriore (mit schwarzer Tinte markierte) Fläche dem Präparierenden zugewandt ist und die Hautoberfläche dem Assistenten zugewandt ist.
      HINWEIS: Diese standardisierte Orientierung stellt die Brustfascia dem Präparierenden am nächsten und ermöglicht eine systematische Identifizierung der oberflächlichen Schicht der oberflächlichen Fascia (SLSF), Cooper’scher Ligamente und der tiefen Schicht der oberflächlichen Fascia (DLSF) in einer konsistenten anatomischen Reihenfolge während der Präparation.
   3. Überprüfen Sie die Orientierung erneut unter geringer Vergrößerung, indem Sie wichtige anatomische Orientierungspunkte identifizieren, wie Epidermis, Dermis, subkutanes Gewebe und Brustfascia.
2. Identifizieren Sie das oberflächliche Fasziensystem.
   1. Lokalisieren und beobachten Sie das oberflächliche Fasziensystem, wobei Sie besonders auf dessen Verbindung mit der Haut und Integration in das subkutane Fettgewebe sowie tiefere Schichten achten.
   2. Lokalisieren Sie die oberflächliche Schicht der oberflächlichen Fascia (SLSF):
      1. Identifizieren Sie die SLSF-Schicht, die typischerweise als eigenständige, dünne, leicht durchscheinende Fascia-Schicht unterhalb der Haut und des subkutanen Fettgewebes erscheint.
      2. Unter 5×–10× Vergrößerung erscheint sie als relativ kontinuierliche lineare Membran, die parallel zur Dermis verläuft und sich vom umgebenden Fettgewebe abhebt. Die Fascia weist oft ein Fettlobul auf, das die Fascia durchzieht und dabei eine „Lücke“ in der Fascia erzeugt. Verfolgen Sie diese Ebene während der Präparation sorgfältig, um die Identität der Fascia zu bestätigen und deren Verbindungen zu benachbarten Strukturen sichtbar zu machen (Abbildung 4A,A’).
   3. Lokalisieren Sie die tiefe Schicht der oberflächlichen Fascia (DLSF):
      1. Identifizieren Sie die DLSF als leicht durchscheinende Fascia-Schicht, die unmittelbar oberflächlich zur Brustfascia liegt und sich quer über die Brustwand erstreckt. Sie verläuft parallel zur Brustfascia und bildet bei vorsichtiger Präparation eine kontinuierliche Fascia-Ebene.
      2. Verfolgen Sie diese Struktur während der Präparation sorgfältig, um die Identität der Fascia zu bestätigen und die angrenzenden anatomischen Strukturen sichtbar zu machen (Abbildung 5A,A’).
         HINWEIS: Die DLSF liegt nahe an der Brustfascia und kann in manchen Präparaten schwer unterscheidbar sein. Im Vergleich zur oberflächlichen Schicht ist die tiefe Schicht schwieriger zu identifizieren und erfordert meist mehr Zeit und sorgfältige Präparation, um sie zu lokalisieren und zu bestätigen. Falls die erwartete kontinuierliche Fascia-Ebene nicht eindeutig identifiziert werden kann, kehren Sie zur geringen Vergrößerung zurück, um die Fascia-Ebene erneut zu lokalisieren, bevor Sie die Präparation fortsetzen.
3. Verfolgen Sie Cooper’sche Ligamente und präparieren Sie Fettgewebspockets.
   1. Erkennen Sie Cooper’sche Ligamente als glatte, durchscheinende Faserbündel, typischerweise weniger als 1 mm dick, die annähernd senkrecht zur Dermis, SLSF, DLSF und Brustfascia verlaufen. Sie bleiben eng mit den umgebenden Fettlobuli und Brustgangsystemen verbunden. Verfolgen Sie die Ligamente kontinuierlich unter sanfter Zugbelastung.
   2. (Ausnahme) Die Präparation von Cooper’schen Ligamenten kann bei Proben mit dichtem Drüsengewebe nicht durchführbar sein. Identifizieren Sie sorgfältig eine potenzielle ligamentöse Struktur und verfolgen Sie sie sowohl in oberflächlicher als auch in tieferer Richtung, wobei Sie deren Beziehungen zu den umgebenden Geweben bewahren.
      1. Dokumentieren Sie den beobachteten anatomischen Verlauf, einschließlich, ob das Ligament endet, verzweigt, mit benachbarten faszialen Strukturen verschmilzt oder während der Präparation unterbrochen wird.
      2. Manipulieren Sie ligamentöses Gewebe vorsichtig mit Mikrozangen, um Schäden an der Fascia zu vermeiden. Cooper’sche Ligamente bestehen aus Kollagenfasern, die überwiegend in einer einheitlichen Richtung orientiert sind, während gewöhnliche faserige Septen aus Kollagenfaserbündeln bestehen, die in mehreren Richtungen angeordnet sind.
   3. Während der Präparation schneiden Sie die ligamentöse Hülle benachbarter Fettgewebspockets auf, um das Fettgewebe für die Präparation freizulegen.
      1. Bei Schnittpräparaten mit freigelegtem Fettgewebe wird vorsichtig Absaugung auf das Fettgewebe auf beiden Seiten des Ziel-Ligaments angewendet, um nur so viel Fettgewebe zu entfernen, dass die Kante des Ligaments sichtbar wird und dessen mikrochirurgische Präparation (mittels Skalpell- oder Scherenpräparation) erleichtert wird. Vermeiden Sie direkte Absaugung am Ligament oder an faszialen Strukturen. Das Fettgewebe ist in Lobuli organisiert, die eng mit den umgebenden Cooper’schen Ligamenten verbunden bleiben.
      2. Entfernen Sie das Fettgewebe sorgfältig, um das ligamentöse Gerüst freizulegen und die Visualisierung der anatomischen Beziehungen zwischen Cooper’schen Ligamenten, dem oberflächlichen Fasziensystem und dem umgebenden Fettgewebe zu erleichtern (Abbildung 6).
   4. Erhalten Sie die Hydratation durch Spülung mit Kochsalzlösung.
      1. Verwenden Sie während des gesamten Verfahrens Kochsalzlösung zur Spülung, um Austrocknung des Gewebes zu verhindern.
      2. Führen Sie die Spülung nach Bedarf durch, basierend auf dem Erscheinungsbild des Gewebes, anstatt nach einer vorgegebenen Flussrate oder Gesamtvolumen.
      3. Passen Sie die Absaugung nach Bedarf an, um das Präparationsfeld von überschüssiger Flüssigkeit und Geweberesten freizuhalten und eine ungehinderte Beobachtung sowie präzise Präparation jedes einzelnen Ligaments sicherzustellen.

4. Videodokumentation

1. Dokumentieren Sie die gesamte Präparation.
   1. Nutzen Sie das integrierte Kamerasystem des Mikroskops, um den kompletten Präparationsvorgang in Echtzeit zur Referenz und späteren Überprüfung aufzuzeichnen, wobei sichergestellt wird, dass kein Arbeitsschritt ausgelassen wird. Führen Sie die Präparation unter einer optischen Vergrößerung von 5×–10× am Operationsmikroskop durch.
2. Konzentrieren Sie sich auf wichtige anatomische Strukturen.
   1. Während der Präparation und Aufnahme zoomen Sie von niedriger auf höhere Vergrößerung an kritischen Strukturen heran, einschließlich der Ligamenta Cooperi und deren struktureller Beziehungen zum oberflächlichen faszialen System, um detaillierte Ansichten zu erhalten, die deren Beziehung zu umgebenden Geweben verdeutlichen.
3. Kennzeichnen Sie Befunde.
   1. Während der Präparation führen Sie eine mündliche Kommentierung durch. Nach der Aufnahme überprüfen Sie das Video und Audio, um im Nachhinein Textannotationen hinzuzufügen.
      HINWEIS: Diese Annotationen heben wichtige anatomische Strukturen, Verfahrensschritte und bedeutende Beobachtungen hervor und erhöhen so den pädagogischen Wert und die Klarheit des Endvideos.

Ergebnisse

Im Verlauf eines Jahres wurden mikrochirurgische Präparationen an 24 unilateralen prophylaktischen Mastektomiepräparaten durchgeführt, die von 24 Patientinnen stammten. Die Sichtbarkeit einzelner faszialer und ligamentöser Strukturen variierte zwischen den Präparaten; daher wurden die hier gezeigten repräsentativen Abbildungen ausgewählt, um den Protokollablauf, das anatomische Erscheinungsbild der faszialen und ligamentösen Strukturen sowie die beobachteten anatomischen Beziehungen zwischen den Cooper-Ligamenten, der DL...

Diskussion

Der in dieser Studie beschriebene Dissektionsprozess betont mehrere entscheidende Schritte, die notwendig sind, um eine optimale Visualisierung der Ligamente von Cooper und des oberflächlichen Fasziensystems zu erreichen. Eine korrekte sagittale Schnittführung des Brustgewebes in 2 cm dicke Scheiben unter Anleitung eines Pathologen ist entscheidend, um die anatomische Orientierung und Integrität der untersuchten Strukturen zu bewahren. Außerdem gewährleistet der Einsatz eines Operationsmikroskops mit 5×–10×-Vergrößerung ...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
0,9%ige NaCl-Lösung	Allgemeine Verwendung	N/V	Wird zur Spülung von Gewebe und periodischen Spülung der Frazier-Saugkanüle während der Dissektion verwendet.
Adapter (Smartphone und Mikroskop)	GOSKY	Standard	Smartphone-Adapter zur Befestigung der Kamera am Operationsmikroskop.
Kamera	Apple	iPhone SE (2. Generation)	Wird zur Videoaufnahme durch das Operationsmikroskop verwendet.
CDI-Gewebemarkierungsfarbe	Cancer Diagnostics, Inc.	#0727-1, #0727-3, #0727-4, #0727-6	Wird verwendet, um die intakte Mastektomieprobe vor dem Einbetten zur Orientierung einzufärben (Rot = kranial, Orange = kaudal, Grün = ventral, Schwarz = dorsal).
Pinzette	Precision Medical Devices	N/V	Wird zur mikrochirurgischen Gewebemanipulation verwendet.
Frazier-Saugkanüle	Integra Miltex	Modell nicht angegeben	3-mm-Frazier-Saugkanüle zur Gewebesaugung während der Dissektion.
Kliniksauge	N/V	N/V	An die Vakuumquelle des Operationssaals angeschlossenes Wandabsaugsystem.
Mikroschere	Precision Medical Devices	S1059 1575	Wird zur feinen mikrochirurgischen Gewebedissoziation verwendet.
Skalpellklinge Nr. 20	Swann-Morton	Beispiel	Wird zur makroskopischen Probenvorbereitung verwendet.
Nicht-resorbierbares Nahtmaterial (Seide)	Ethicon	Mersilk 4-0	Wird verwendet, um anatomische Strukturen für Fotografie und Video-Dokumentation zu markieren.
Skalpellgriff	Allgemeines chirurgisches Zubehör	N/V	Kompatibel mit Skalpellklinge Nr. 20.
Chirurgisches Mikroskop	Med Link	Z880	Operationsmikroskop für mikrochirurgische Dissektion
Gewebekulturschalen	Corning	430167	Wird verwendet, um physiologische Kochsalzlösung zur periodischen Spülung der Frazier-Saugkanüle aufzubewahren.