Name: Vaccinia Virus Infection and Temporal Analysis des Virus Gene Expression: Teil 3 (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-04-13T00:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Erfahren Sie die Markierung von antisense-RNA aus Vaccinia-Virus-infizierten HeLa-Zellen mittels Aminoallyl-Kopplung für Microarray-Analysen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Genexpressionsprofilen.

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Teil 1: aRNA Etikettierung: Aminosäuren Allyl-Kupplung der Farbstoffe <ol><li> Add 1 g der Proben in 1,5 ml aRNA Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> Vacuum trocknen die Proben auf geringe oder gar keine Hitze, bis sie vollständig trocken sind. Cap jedes Rohr, sobald es trocken ist - nicht übertrocknen! </li><li> Add 9μl Kupplungspuffer zu und die Dynabeads der aRNA durch vorsichtiges Vortexen für 1 Minute. Kurz zentrifugieren, um die Probe in den Boden des Röhrchens zu sammeln, und dann lassen Sie die Probe auf Eis zu sitzen. </li><li> Add 22μl hochwertige DMSO in jedes Röhrchen von Cy3 oder Cy5-Farbstoff. Ein Rohr von Farbstoff ist genug für 2 Proben. Der Cy3-Farbstoff wird zur Kennzeichnung Ihrer Referenzproben und die Cy5 Farbstoff zur Kennzeichnung Ihrer Proben. </li><li> Vortex die Farbstoffe zu durchmischen. Halten Sie die Farbstoffe in der Dunkelheit bis zur Verwendung. Bereiten Sie nicht Farbstoff früher als 1 Stunde vor dem Gebrauch. Achten Sie darauf, kein Wasser in den Farbstoff / DMSO-Mix zu jedem Zeitpunkt. </li><li> Fügen Sie 11μl der vorbereiteten DMSO / Cy Farbstoff zu jeder Probe. Gut mischen durch Vortexen sanft. </li><li> Inkubieren für 30-45 Minuten bei Raumtemperatur. Decken Sie die Proben mit Alufolie oder halten sie in einer Schublade, um Lichteinwirkung zu minimieren. </li><li> Nach der Inkubationszeit, fügen 4.5μl hydroxlyamine zu jeder Probe, um die Reaktion zu stillen. Gut mischen durch Vortexen sanft. </li><li> Inkubieren für weitere 15 Minuten bei Raumtemperatur. Decken Sie die Proben mit Alufolie oder halten sie in einer Schublade, um Lichteinwirkung zu minimieren. </li></ol> Teil 2: Labeled aRNA clean-up <ol><li> Vortex die RNA-Bindung Perlen kurz, um eine gleichmäßige Mischung vor Gebrauch zu erhalten. </li><li> Bereiten Sie die aRNA Binding Mix bei Raumtemperatur. (Tabelle 1) </li><li> Gut mischen durch Vortexen. </li><li> Aliquot die aRNA Elutionspuffer in ein 1,5 ml Röhrchen und inkubieren bei 50-60 ° C für mindestens 10 Minuten. </li><li> Fügen Sie 70μl der aRNA verbindliche Mix zu jeder Probe und mischen Sie gut durch Auf-und Abpipettieren 3-4 mal. </li><li> Übertragen Sie die Proben aus der PCR-Platte, eine 96-Well-Rundboden-Platte. </li><li> Add 50 ul 100% Isopropanol zu jeder Probe und mischen Sie gut durch Auf-und Abpipettieren 3-4 mal. </li><li> Schütteln Sie die Platte auf einem Schüttler für mindestens 2 Minuten gründlich mischen der Proben. </li><li> Bewegen Sie die Platte zu einem magnetischen stehen, um die magnetischen Kügelchen zu erfassen. Lassen Sie die Platte auf dem Stand, bis die Mischung wird transparent und die Bindung Perlen haben pelletiert. </li><li> Vorsichtig absaugen der Überstand mit einem Vakuum-Sauger, ohne die magnetischen Kügelchen. Alternativ vorsichtig den Überstand mit einer Pipette und den Überstand verwerfen. Der Überstand sollte entweder ein helles rosa oder hellblau an dieser Stelle aufgrund der Personengesellschaft Farbstoffmoleküle werden. </li><li> Die Platte aus dem magnetischen stehen. </li><li> Add 100 &amp;mgr; aRNA Waschlösung in jede Kavität der Platte für 1 Minute auf dem Schüttler bei mäßiger Geschwindigkeit. Perlen können nicht vollständig in diesem Schritt zu zerstreuen. </li><li> Bewegen Sie die Platte zu einem magnetischen stehen, um die magnetischen Kügelchen zu erfassen. </li><li> Vorsichtig absaugen der Überstand mit einem Vakuum-Sauger, ohne die magnetischen Kügelchen. Alternativ vorsichtig den Überstand mit einer Pipette und den Überstand verwerfen. </li><li> Die Platte aus dem magnetischen stehen. </li><li> Wiederholen Sie die Wäsche ein 2. Mal mit 100 &amp;mgr; aRNA Waschlösung. </li><li> Nach dem 2. waschen, trocknen die Kügelchen durch Schütteln der Platte für 1 Minute auf dem Schüttler bei maximaler Geschwindigkeit. Nicht übertrocknen Proben! </li><li> Eluieren aRNA von den Perlen, indem 20 &amp;mgr; l vorgewärmten aRNA Elutionspuffer zu jeder Probe. </li><li> Kräftig schütteln, die Platte auf dem Schüttler für 3 Minuten, dann überprüfen Sie, ob die magnetischen Beads vollständig verteilt sind. Wenn nicht, weiter zittern. </li><li> Nachdem die magnetischen Beads vollständig zerstreut haben, bewegen Sie die Platte zu einem magnetischen stehen, um die magnetischen Kügelchen zu erfassen. Der Überstand enthält die aufgeräumt, etikettiert aRNA Proben, und sollte entweder ein hellrosa oder hellblaue werden. </li><li> Sorgfältig Übertragung der eluierten aRNA einen neuen PCR-Platte (oder PCR-Röhrchen). </li><li> (Optionaler Schritt) Überprüfen Sie die RNA-Konzentration und der Menge an Farbstoff in den Proben durch die Messung 1.5μl auf einem NanoDrop Spektralphotometer mit der Microarray-Modul. </li><li> Unmittelbar hybridisieren die markierten aRNA auf einem Mikroarray-Plattform Ihrer Wahl, oder alternativ können Sie die markierten aRNA bei -80 ° C lagern, bis Sie bereit für die Hybridisierung sind. </li></ol> Tabelle 1 aRNA Binding Mix <table border="1"><tbody><tr><td> Reagens </td><td> Betrag für 1-Reaktion </td></tr><tr><td> RNA Binding Perlen * </td><td> 10 &amp;mgr; l </td></tr><tr><td> Bead Resuspension Solution * </td><td> 4μl </td></tr><tr><td> 100% Isopropanol ** </td><td> 6μl </td></tr><tr><td> aRNA Binding Buffer Concentrate </td><td> 50 ul </td></tr></tbody></table> * Mix der RNA-Bindung Perlen mit dembead Resuspension Lösung zunächst ** Fügen Sie das Isopropanol und gut mischen, bevor Sie die aRNA Bindungspuffer konzentrieren.

<ol><li>Rubins, K. H., Hensley, L. E., Bell, G. W., Wang, C., Lefkowitz, E. J., Brown, P. O., Relman, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+viral+gene+expression+programs+during+poxvirus+infection%3A+a+transcriptional+map+of+the+vaccinia+and+monkeypox+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of viral gene expression programs during poxvirus infection: a transcriptional map of the vaccinia and monkeypox genomes.</a> PLoS ONE. 3 (7), e2628-e2628 (2008).</li>
<li>Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetic+analysis+of+a+complete+poxvirus+transcriptome+reveals+an+immediate-early+class+of+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Kinetic analysis of a complete poxvirus transcriptome reveals an immediate-early class of genes.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 105 (6), 2140-2145 (2008).</li>
<li>Satheshkumar, P. S., Moss, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poxvirus+transcriptome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Poxvirus transcriptome analysis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E62-E62 (2008).</li>
<li>Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A.+Reply+to+Satheshkumar+and+Moss%3A+Poxvirus+transcriptome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A. Reply to Satheshkumar and Moss: Poxvirus transcriptome analysis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E63-E64 (2008).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Muñoz, M., Harshman, K., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+gene+expression+survey+of+vaccinia+virus+infection+of+human+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Cellular gene expression survey of vaccinia virus infection of human HeLa cells.</a> J Virol. 77 (11), 6493-6506 (2003).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Conde, R., Pascual-Montano, A., Harshman, K., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microarray+analysis+reveals+characteristic+changes+of+host+cell+gene+expression+in+response+to+attenuated+modified+vaccinia+virus+Ankara+infection+of+human+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Microarray analysis reveals characteristic changes of host cell gene expression in response to attenuated modified vaccinia virus Ankara infection of human HeLa cells.</a> J Virol. 78 (11), 5820-5824 (2004).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Nájera, J. L., Zaballos, A., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+response+to+the+attenuated+poxvirus+vector+NYVAC%3A+upregulation+of+apoptotic+genes+and+NF-kappaB-responsive+genes+in+infected+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Host response to the attenuated poxvirus vector NYVAC: upregulation of apoptotic genes and NF-kappaB-responsive genes in infected HeLa cells.</a> J Virol. 80 (2), 985-998 (2006).</li>
<li>Guerra, S., Nájera, J. L., González, J. M., López-Fernández, L. A., Climent, N., Gatell, J. M., Gallart, T., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+gene+expression+profiling+after+infection+of+immature+human+monocyte-derived+dendritic+cells+by+the+attenuated+poxvirus+vectors+MVA+and+NYVAC%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Distinct gene expression profiling after infection of immature human monocyte-derived dendritic cells by the attenuated poxvirus vectors MVA and NYVAC.</a> 81 (16), 8707-8721 (2007).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Kritische Schritte Bei der Durchführung der Amino-Allyl-Kupplung, ist es entscheidend, um den Farbstoff in DMSO kurz (weniger als 1 Stunde) vor der Kupplung resuspendieren und sicher kein Wasser in den Farbstoff / DMSO-Mix, wie es mit der aktiven Gruppe auf den Farbstoff reagieren wird. Nicht übertrocknen RNA (kann bis auf 1-2UL anstatt völlig trocken getrocknet werden), und resuspendieren und in dem Bindungspuffer. Während der Kupplungsreaktion, halten Sie die Reaktion in der Dunkelheit, mit ...

<table><tbody><tr><td>CyDye Nachmarkierungs-Reagenz-Pack</td><td>Reagenz</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN5661</td><td>Enthält sowohl Cy3- als auch Cy5-Farbstoffe</td></tr><tr><td>NanoDrop ND-1000 UV-VIS-Spektrophotometer</td><td>Sonstiges</td><td>NanoDrop</td><td>ND-1000</td><td>Oder gleichwertiges Spektrophotometer</td></tr></tbody></table>

vaccinia virus infection &amp; temporal analysis des virus gene expression: teil 3

Vaccinia Virus Infection &amp; Temporal Analysis of Virus Gene Expression: Part 3

Die Familie<em&gt; Poxviridae</em&gt; Besteht aus großen doppelsträngigen DNA-Viren enthalten, die ausschließlich im Zytoplasma der infizierten Zellen replizieren. Die Mitglieder des<em&gt; Orthopox</em&gt; Gattung gehören Variola, dem Erreger der menschlichen Pocken, Affenpocken und Vaccinia (VAC), der prototypische Mitglied der Virus-Familie. Innerhalb der relativ groß (~ 200 kb) Vaccinia-Genom gibt drei Klassen von Genen kodiert: frühe, mittlere und spät. Während alle drei Klassen von viral-kodierten RNA-Polymerasen transkribiert werden, dient jede Klasse eine andere Funktion im Lebenszyklus des Virus. Pockenviren nutzen mehrere Strategien zur Modulation der zellulären Umgebung Host während der Infektion. Um Regulierung der Wirt und Virus Genexpression verstehen, müssen wir genomweite Ansätze genutzt werden, um Transkript Fülle von beiden Viren und Wirtszellen zu analysieren. Hier zeigen wir, zeitlicher Verlauf Infektionen von HeLa-Zellen mit Vaccinia-Virus und Sampling-RNA zu verschiedenen Zeitpunkten nach der Infektion. Beide Gastgeber und virale RNA isoliert und verstärkt für die Hybridisierung an Microarrays zur Analyse der Genexpression.

Protokoll zur Vaccinia-Infektion von HeLa-Zellen und die Analyse von Host-und virale Genexpression. Teil 3 beschreibt den Prozess der Fluoreszenzmarkierung der amplifizierten RNA aus beiden Gastgeber und virale Proben durch Amino Allyl-Kupplung von Farbstoffen.

Vaccinia Virus Infection &amp; Temporal Analysis des Virus Gene Expression: Teil 3

Die Familie Poxviridae besteht aus großen, doppelsträngige DNA enthaltenden Viren, die sich ausschließlich im Zytoplasma infizierter Zellen replizieren. Mitglieder von ...

Hallo, ich bin Judy Y aus dem Labor von Kate Rubins am Whitehead Institute for Biomedical Research. Hier zeigen wir, wie man die Antisense-RNA-Proben, die aus sowohl Vaccinia-Virus-infizierten HeLa-Zellen als auch aus dem Virus gewonnen wurden, durch Amino-allyl-LEO-Kupplung von Farbstoffen markiert. Anschließend demonstrieren wir, wie die markierte RNA gereinigt und für die Hybridisierung zur Mikroarray-Analyse der Genexpression vorbereitet wird.In früheren JoVE-Videos wird gezeigt, wie man die Gesamt-RNA-Isolierung, RNA-Amplifikation und Amplifikationsschritte bei Virusinfektionen durchführt. Beginnen wir also. Für die RNA-Markierung zunächst ein Mikrogramm der A-RNA-Proben in 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen geben.Die Proben unter Vakuum bei geringer oder keiner Wärmezufuhr trocknen, bis sie vollständig trocken sind. Jedes Röhrchen sofort nach dem Trocknen verschließen. Es ist wichtig, die Proben nach dem Trocknen nicht übermäßig lang weiterzutrocknen.Geben Sie neun Mikroliter Kopplungspuffer zu jedem Röhrchen hinzu und resuspendieren Sie die A-RNA durch vorsichtiges Vortexen für eine Minute. Zentrifugieren Sie kurz, um die Probe am Boden des Röhrchens zu sammeln, und lassen Sie die Probe anschließend auf Eis stehen. Fügen Sie danach 22 Mikroliter hochwertiges DMSO zu jedem Röhrchen mit SCI-drei- oder S-fünf-Farbstoff hinzu – ein Röhrchen Farbstoff reicht für zwei Proben aus. Der S-SI-drei-Farbstoff dient zur Markierung Ihrer Referenzproben und der SCI-fünf-Farbstoff zur Markierung Ihrer Testproben.Vortexen Sie die Farbstoffe, um sie gründlich zu mischen. Denken Sie daran, die Farbstoffe bis zur Verwendung im Dunkeln aufzubewahren. Bereiten Sie die Farbstoffe nicht länger als eine Stunde vor der Anwendung vor und stellen Sie sicher, dass zu keinem Zeitpunkt Wasser in die Farbstoff-DMSO-Mischung gelangt.Jetzt 11 Mikroliter der hergestellten D-M-S-O-S-Farbstoffmischung zu jeder Probe geben und gut durch Vortexen mischen. Vorsichtig 30 bis 45 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren. Die Proben mit Aluminiumfolie abdecken oder in einer Schublade aufbewahren, um die Lichteinwirkung zu minimieren.Nach der Inkubation 4,5 µL Hydroxylamin zu jeder Probe hinzufügen, um die Reaktion abzubrechen, und gründlich durch Vortexen mischen. Vorsichtig weitere 15 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren. Die Proben mit Aluminiumfolie abdecken oder in einer Schublade aufbewahren, um die Belichtung durch Licht zu minimieren.Um das Etikett zu reinigen, wirbeln sie RNA, die an die RNA-Bindungsperlen bindet. Um vor der Verwendung eine gleichmäßige Mischung zu erhalten, bereiten Sie die RNA-Bindungsmischung A bei Raumtemperatur kurz vor. Mischen Sie die Bindungsmischung gründlich durch Wirbeln. Aliquotieren Sie den A RNA-Elutionspuffer in ein 1,5-Milliliter-Röhrchen und inkubieren Sie ihn für mindestens 10 Minuten bei 50 bis 60 Grad Celsius.Fügen Sie 70 µL der A-RNA-Bindungslösung zu jeder Probe hinzu und mischen Sie gut durch dreimaliges bis viermaliges Auf- und Abpipettieren. Danach überführen Sie die Proben von der PCR-Platte in eine 96-Well-Rundbodenplatte. Geben Sie anschließend 50 µL hundertprozentiges Isopropanol zu jeder Probe und mischen Sie erneut gut durch dreimaliges bis viermaliges Auf- und Abpipettieren. Schütteln Sie die Platte vorsichtig auf einem Rotationsschüttler für mindestens zwei Minuten.Um die Proben gründlich zu mischen. Das Plättchen auf einen Magnethalter bringen. Um die magnetischen Kügelchen zu erfassen.Lassen Sie die Platte auf dem Ständer, bis die Mischung durchsichtig wird und sich die Bindungskügelchen abgesetzt haben. Entfernen Sie vorsichtig den Überstand mit einem Vakuum-Aspirator, ohne die magnetischen Kügelchen zu stören. Alternativ entfernen Sie den Überstand vorsichtig mit einer Pipette und verwerfen Sie den Überstand.Das Überstand sollte an diesem Punkt entweder hellrosa oder hellblau sein, aufgrund der nicht eingebauten Farbstoffmoleküle. Sobald der Überstand verworfen wurde, nehmen Sie die Platte vom Magnethalter. Geben Sie nun hundert Mikroliter einer RNA-Waschlösung in jedes Loch und schütteln Sie die Platte eine Minute lang auf dem Rotationsschüttler bei mittlerer Geschwindigkeit. Die Kügelchen können in diesem Schritt möglicherweise nicht vollständig dispergieren; stellen Sie die Platte erneut auf einen Magnethalter, um die magnetischen Kügelchen zu fixieren. Aspirieren Sie vorsichtig den Überstand mit einem Vakuum-Aspirator, ohne die magnetischen Kügelchen zu stören.Alternativ den Überstand vorsichtig mit einer Pipette abnehmen und verwerfen. Die Platte vom Magnethalter entfernen. Die Waschung ein zweites Mal mit 100 µL A-RNA-Waschlösung wiederholen.Nach der zweiten Waschung. Trocknen Sie die Perlen, indem Sie die Platte eine Minute lang auf dem Rüttler bei maximaler Geschwindigkeit schütteln. Trocknen Sie die Proben nicht zu stark. Eluieren Sie die A-RNA von den Perlen, indem Sie 20 Mikroliter vorgewärmten A-RNA-Elutionspuffer hinzufügen.Schütteln Sie jede Probe kräftig drei Minuten lang auf dem Rotationsschüttler. Überprüfen Sie anschließend, ob die magnetischen Partikel vollständig dispergiert sind. Falls nicht, schütteln Sie weiter.Nachdem die magnetischen Perlen vollständig dispergiert sind, bringen Sie die Platte auf einen Magnethalter, um die magnetischen Perlen zu fixieren. Der Überstand enthält die gereinigten markierten A-RNA-Proben und sollte entweder blassrosa oder blassblau sein. Übertragen Sie anschließend die angesprochene A-RNA vorsichtig in eine neue PCR-Platte oder in PCR-Röhrchen.An diesem Punkt können Sie die RNA-Konzentration und die Menge an Farbstoff in den Proben über die Messung von 1,5 Mikrolitern auf einem NanoDrop-Spektrophotometer überprüfen. Hybridisieren Sie die markierte A-RNA unmittelbar unter Verwendung des Microarray-Moduls auf einer Microarray-Plattform Ihrer Wahl. Alternativ können Sie die markierte A-RNA bei minus 80 Grad Celsius lagern, bis Sie zur Hybridisierung bereit sind.Dies ist eine repräsentative Spektralphotometer-Auslesung und OD-Kurve, die mit dem NanoDrop-Spektrophotometer generiert wurde, um die Probenkonzentration und die Farbstoffbindung zu messen. Sie können die OD-Spitzen bei 260 Nanometern zur Berechnung der Konzentration der Proben sowie die beiden Spitzen bei etwa 532 und 635 Nanometern erkennen, die jeweils die S3- und SCI5-Farbstoffe darstellen. Soeben haben wir Ihnen gezeigt, wie man amplifizierte, in RNA eingebaute Immuno-Allele für die Mikroarray-Hybridisierung fluoreszenzmarkiert.Bei diesem Verfahren ist es wichtig, daran zu denken, den Farbstoff weniger als eine Stunde vor der Kopplung in DMSO zu resuspendieren, und sicherzustellen, dass kein Wasser in die Farbstoff-DMSO-Mischung gelangt, da es mit der aktiven Gruppe des Farbstoffs reagieren würde. Ebenfalls wichtig ist es, die RNA nicht übermäßig zu trocknen, falls erforderlich. Die Proben können auf ein bis zwei Mikroliter eingeengt statt vollständig getrocknet werden und anschließend während der Kopplungsreaktion gründlich im Kopplungspuffer resuspendiert werden.Halten Sie die Reaktionen bei gelegentlichem Vorsichtigem Schwenken im Dunkeln und zentrifugieren Sie gegebenenfalls kurz. Das war's. Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.Seien Sie sicher, auch die anderen Videos dieser Reihe anzusehen, in denen wir zeigen, wie man eine Infektion mit einem Zeitverlauf mit dem Vaccinia-Virus durchführt, die RNA aus den Proben extrahiert und die lineare Amplifikation von RNA-Proben durchführt.

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Biologie

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