Name: Extraktion von High Molecular Weight genomischer DNA aus Böden und Sedimenten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-11-10T20:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 24 s
Description: Erfahren Sie die Isolierung hochmolekularer genomischer DNA aus Boden- und Sedimentproben. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung mikrobieller Diversität und metabolischer Potenziale in verschiedenen Bodenhorizonten.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wir möchten den kanadischen Stiftung für Innovation, der British Columbia Knowledge Development Fund, Genome British Columbia und der British Columbia Ministry of Forests und Range für die Unterstützung laufender Studien der Waldboden Produktivität danken. SL wurde durch ein Stipendium von der Stiftung finanziert TULA Zentrum für Mikrobielle Diversität und Evolution unterstützt.

Teil I: Die Extraktion von DNA Verfahren 1. 8 Stunden benötigt werden, für die Verarbeitung von 6 Proben ohne Quantifizierung von DNA. Bevor Sie die Extraktion zu starten, werden Sie vor Kälte Mörtel, Pistill und Spatel in einem -20 ° C Gefrierschrank oder mit flüssigem Stickstoff benötigen. Auch vor Kälte 50 ml Röhrchen mit 20 ml Chloroform Isoamylalkohol (24:1) auf Eis. Stellen Sie die Hybridisierung Backofen auf 65 ° C vorheizen. Überprüfen Sie CTAB-Lösung, wenn es warm kristallisiert wird auf 60 ° C, um die Kristalle schmelzen. Füllen Sie das Denaturierungslösung und Extraktionspuffer, indem Sie die letzten Zutaten kurz vor der Extraktion (siehe Rezept unten) beginnen. Führe alle Extraktionsverfahren in einem Abzug. 2. Bereiten Sie die Denaturierungspuffer und Extraktionspuffer. Hinweis: Um die DNA-Ausbeute zu maximieren, ist es wichtig, genau zu machen Puffer den Anweisungen folgen. 3. Platz 2 g Boden in einem vorgekühlten Mörser. Hinweis: Der Boden in dem Gebiet gesammelt haben, sollten auf Trockeneis für den Transport eingefroren und bei -80 ° C. Tauwetter und Sieb Boden mit einem 2 mm Sieb vor der DNA-Extraktion. Sie können den Grundbetrag von Boden bis zu 10 g. erhöhen 4. 1 ml der denaturierenden Lösung auf den Boden. 5. Freeze und schleifen den Boden in flüssigem N 2 mit einem Stößel, bis der Boden Partikel pulverförmigen und homogenes Aussehen anstreben. Wiederholen Sie das Einfrieren und Schleifen zweimal. Hinweis: Bewahren Sie die Bodenprobe eingefroren während des Schleifens, mit genügend flüssiger Stickstoff zur Deckung der Bodenprobe. Leichte Schmelzen während des Schleifens ist akzeptabel. 6. Übertragen Sie die in das Erdreich in einen 50 ml konischen Rohr mit einem vorgekühlten Spatel. Hinweis: Der Boden Bodenprobe kann bei -80 ° C an dieser Stelle, wenn nötig gespeichert werden. 7. Add 9 ml Extraktionspuffer. Um die Lösung und Boden, kurz vortexen bei geringer Geschwindigkeit mischen. Hinweis: Um sicherzustellen, dass die Puffer ist homogen, warm bei 60 ° C für 10-15 Minuten vor dem Gebrauch. Halten Sie den Rest der Puffer bei 60 ° C während der Extraktion. Vortex bei der Geschwindigkeit 8 (auf einer Skala, wobei 10 das Maximum). 8. Inkubieren für 40 min bei 65 ° C in einem Hybridisierungsofen. Während der Inkubation kontinuierlich drehen die Rohre bei niedrigster Drehzahl, oder durch vorsichtiges Umdrehen der Röhrchen alle 10 min. Hinweis: Legen Sie das Rohr horizontal in einem Hybridisierungsofen, damit Puffer Boden über eine große Fläche zu kontaktieren. Die Lösung kann ein wenig viskosen während der Inkubation zu suchen. 9. Zentrifuge bei 1800 x g, 10 min bei 10 bis 14 ° C. Transfer in die vorgekühlte 50 ml konische Röhrchen mit 20 ml Chloroform-Isoamylalkohol (24:1) den Überstand auf Eis zu halten. Hinweis: Wenn Sie Überstand zu übertragen, darauf achten, nicht die organische Schicht (untere Schicht) zu stören. Lassen Sie 1-2 ml Überstand, wenn es um nur saubere Überstand sammeln notwendig ist. Oft sehen Sie eine beige Schicht (ca. 1-3 mm dick) auf der Oberseite des Überstandes. Bitte nicht stören diese Schicht bei der Erhebung der Überstand. Versuchen Sie, die Spitze entlang der Rohrwand slide zu einem Bruch dieser beige Schicht zu verhindern. Wenn der Überstand zu trübe ist, wiederholen Sie die Chloroform-Isoamylalkohol-Extraktion ein weiteres Mal auf den Überstand. Verwenden Sie keine Einweg-Kunststoff-Pipetten bei der Übertragung von Chloroform, wie Chloroform wird die Kunststoffschmelze. Verwenden Sie eine Glaspipette oder einem Glas-Messzylinder, oder gießen Chloroform direkt in 50 ml konische Röhrchen. 10. Auszug des Bodens Pellets 2 weitere Male; 10.1. 5 ml Extraktionspuffer in den Boden Pellets, vorsichtig mischen mit 1 ml Spitze von kurzen Vortexen bei niedriger Geschwindigkeit an. Hinweis: Shake und mischen Sie die Puffer vor dem Gebrauch. 10.2. Inkubation bei 65 ° C für 10 min in Hybridisierungsofen. Zentrifuge bei 1800 x g, 10 min bei 10 bis 14 ° C. Überstand in die Röhre bei Schritt 9 fort. Halten Sie das Röhrchen mit gesammelten Überstand und Chloroform-Isoamylalkohol auf Eis während der Extraktion. Hinweis: Achten Sie darauf, fügen Sie den Überstand in das gleiche Rohr ohne Kreuz Vermischung zwischen den Proben. 10.3. Wiederholen 9.1 und 9.2 noch einmal. 11. Mit einem Drehteller, sehr sanft Rock die Röhre, die die gesammelten Überstand (14-19 ml) und Chloroform-Isoamylalkohol bei 1,25 min für 10 min enthält. Hinweis: Schließen Sie den Deckel sehr fest, um ein Auslaufen zu verhindern. Legen Sie ein Papiertuch auf dem schaukelnden Platte, bevor Sie das Rohr so ​​eventuelle Lecks leicht erkannt werden kann Platz. 12. Zentrifuge bei 1800 x g, 20 min bei 10 bis 14 ° C. 13. Transfer wässrige Phase in ein neues Röhrchen. Hinweis: Bitte nicht stören der Interphase zwischen der wässrigen Phase (obere Schicht) und die organische Schicht (untenSchicht), wenn Sie den Überstand zu übertragen. Lassen Sie ca. 1,5 bis 2 ml Überstand Sammlung nur saubere Überstand zu gewährleisten. 14. Stellen Sie die DNA mit Isopropanol (Schritt 15.a - 21.a). Alternativ können Sie Amicon ® Ultra-15 Zentrifugalfilter Devices (Schritt 15.b - 21.b), wenn Sie sehr geringe Menge an Biomasse in Ihrer Probe, die kaum sichtbare Pellet durch Isopropylalkohol Niederschläge, die nur schwer wieder erholen wird produzieren erwarten. 15.a Setzen Sie den Überstand in ein neues Röhrchen Ultrazentrifuge. 16.a. Add Isopropylalkohol, um die gesammelten Überstand bei einem Volumenverhältnis von 0,6:1. Kehren Sie die Röhren vorsichtig ein paar Mal zu mischen. 17.a Inkubieren für 30 min bei Raumtemperatur. 18.a. Zentrifugation bei 16000 x g, 20 min bei 20 bis 25 ° C. Sicherstellen, dass die Gewichte aller Röhren sind gut vor dem Zentrifugationsschritt ausgeglichen. Hinweis: Markieren Sie die Richtung der Zentrifugalkraft auf die Tube, so kann man das DNA-Pellet leichter erkennen, wenn die DNA-Ausbeute ist gering. 19.a. Entfernen Sie Isopropylalkohol durch Dekantieren oder Vakuum abgesaugt. Achten Sie darauf, das DNA-Pellet stören. Hinweis: Entfernen Sie Isopropylalkohol sobald Zentrifugation abgeschlossen ist. Seien Sie sehr vorsichtig, nicht auf die DNA-Pellet zu verlieren. Die Größe der DNA-Pellet kann stark variieren in Abhängigkeit von der Bodenart, von einer deutlich sichtbaren (~ 9 mm Durchmesser) kaum sichtbar. Es wird empfohlen, den Rückstand von Isopropylalkohol durch Absaugen an der Wand des Röhrchens vorsichtig, um nicht zum Saugen aus der DNA-Pellet entfernen. 20.a. Dry DNA-Pellet bei Raumtemperatur für 5 bis 20 min. Hinweis: Nicht über trockene DNA-Pellet, sonst wird es schwierig sein, die DNA wieder auflösen. 21.a. Resuspendieren DNA-Pellet in 200 ul TE. Mix it durch leichtes Klopfen. Übertragen Sie die DNA-Lösung in 1,5 ml-Tube. Halten Sie das Röhrchen bei 4 ° C über Nacht, um sich vollständig auflösen DNA. Hinweis: Je nach Größe der Pellets, können Sie die Lautstärke des TE passen hinzuzufügen. In der Regel 200 bis 400 ul TE funktioniert gut. * Alternativ folgen Sie den Schritten 15.b - 21.b. 15.b. Vorwäsche einer Amicon ® Ultra-15 Zentrifugalfilter Devices; 15 ml TE an das Gerät und Zentrifuge bei 3500 x g für 10 min. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. 16.b. Legen Sie die DNA-Lösung aus Schritt 13 an den pre-washed Amicon-Filter. Zentrifuge bei 3500 x g, bis die DNA auf 200 reduziert wird - 500 ul. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. 17.b. Waschen Sie die DNA mit TE zweimal, 10 ml TE zum Amicon-Filter-Geräte. Zentrifuge bei 3500 x g, bis die DNA-Menge auf etwa 200 ul reduziert wird. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. Wiederholen Sie noch einmal. 18.b. Übertragen Sie die DNA-Lösung auf dem Filter in ein neues 1,5-ml-Tube. 19.b. Zugabe von 40 ul TE zum Amicon-Filter. Wash beiden Seiten der Filtermembranen durch Auf-und Abpipettieren, um etwaige DNA Rückstand auf dem Filter zu erholen. Fügen Sie diese Waschlösung auf das Rohr in Schritt 18.b. 20.b. Falls erforderlich, kann die DNA weiter konzentriert werden, indem Microcon ® Ultracel YM-30 Zentrifugalfilter Unit; Vorwäsche des Filters durch Zugabe von 200 ul TE und Zentrifugieren bei 10000 x g für 7 Minuten. Fügen Sie die DNA-Lösung auf dem Filter und Zentrifuge bei 5000 x g für 1 min. Wiederholen Sie die Zentrifugation bis die Menge der DNA-Lösung auf dem Filter reduziert auf 50 ul rund. Hinweis: Der maximale Probenvolumen für Microcon Filter 500 ul. Nicht bei Geschwindigkeiten über 14000 x g. Zentrifuge Nicht über Zentrifuge, bis die Membran vollständig trocknet. Stellen Sie sicher, dass etwas Flüssigkeit bedeckt die Filter nach dem Zentrifugieren. Wenn Sie über zentrifugiert und die Membran trocken ist, fügen Sie dann 15 ul TE leicht bewegen für 30 Sekunden, und fahren Sie mit Schritt 21.b. 21.b. Platzieren Sie die Filtereinheit kopfüber in eine neue Microcon Rohr und Zentrifuge bei 1000 xg für 3 min, um die DNA zu erholen. 22. Quantifizierung der DNA durch TAE-Gel (0,8%, 0.5xTAE, 50 V für 4 Stunden) und durch Nanodrop Spektralphotometer oder Pico-Grün-Test und Platten-Lesegerät. Hinweis: DNA-Menge kann durch den Vergleich der Probe-Band um den Marker Band mit bekannter Konzentration (High molekulare DNA-Marker oder λHindIII) auf dem Gel abgeschätzt werden. 23. Überprüfen Sie die Integrität der DNA mit hohem Molekulargewicht mit Pulsed Field Gel-Elektrophorese (PFGE) mit 1%, 1xTAE Gel (Für weitere Details siehe Step II, part2 bei <a href="https://www.jove.com/index/details.stp?id=1387">https://www.jove.com/index/details.stp?id = 1387</a> , doi: 10.3791/1387 durch Taupp et al 2009).. Hinweis: Sie können regelmäßig Agarosegel für diese QC Zweck anstelle von niedrig schmelzenden Agarose verwenden. Kurz gesagt, sind Elektrophorese-Bedingungen wie folgt: 2-250 kb, 6 Volt, erste Schaltzeit: 5 Sek., letzte Schaltzeit: 15 sec, für 12 Stunden bei 14 ° C betrieben SYBR Gold-Färbung für eine Stunde, um die DNA auf dem Gel sichtbar zu machen. 24. Wenn die Molekulargewichte der extrahierten DNA zufriedenstellend sind, dann an den folgenden CsCl-Gradienten Zentrifuge Schritt fort. Alternativ können DNA bei -20 ° C oder -80 ° C gelagert werden, bevor die CsCl Zentrifuge. Die mittlere Größe der DNA sollte das gleiche sein oder mehr als 36 Kb, wenn Sie eine große einfügen metagenomische DNA-Bibliothek aufbauen wollen. Part II. DNA-Aufreinigung mittels Cäsiumchlorid-Ultrazentrifugation Vorbereitung der Zentrifuge: 1,5 - 2 Stunden Zentrifugationsschritt: 18 Stunden Entfernen Ethidiumbromid (EtBr) und die Konzentration DNA nach Zentrifugation: 3 Stunden Verfahren Weitere Informationen hierzu finden Wright et al. . 2009 <a href="https://www.jove.com/index/details.stp?id=1352">https://www.jove.com/index/details.stp?id=1352</a> , doi: 10.3791/1352 Repräsentative Ergebnisse / Outcome Der Gesamtbetrag von genomischer DNA aus 2 g Waldboden organischen (O-Horizont) und mineralischen Horizonte (Ae, AB, und Bt-Horizonte) (abgetastet aus dem Long Term Soil Productivity (LTSP) Website unter Skulow See, BC, Kanada isoliert und wird von BC Ministry of Forests und Range) reichten von 10 mg bis 180 mg. Die mittlere Größe der isolierten DNA wurde in der Regel zwischen 40 bis 60 kb (Abbildung 1). Das Verhältnis der Absorption bei 260 nm nm/280 wurde zwischen 1,3 bis 1,6, und es gab einen Peak bei 230 nm, die Huminsäure Kontamination oft in Bodenproben beobachtet hinweisen können. Die CsCl-Gradienten-Zentrifugation drastisch reduziert diese Verunreinigung und erhöhte auch das Verhältnis von 260/280 auf 1,8 bis 1,9, wie in Abbildung 2a und 2b gezeigt. <img src="files/ftp_upload/1569/1569fig1.jpg" alt="Abbildung 1" /> Abbildung 1. PFGE Bilder von der extrahierten genomischen DNA vor CsCl Ultrazentrifugation. lane1: 1 kb-Marker 100 ng, Spur 2: λHind III Marker 100 ng, Spur 3: λHind III Marker 250 ng, Spur 4: λHind III Marker 500 ng, lane5: Fosmid 36 kb Marker 100 ng, Spur 6 und 7: genomische DNA aus dem Mineralboden Horizont Ae, Spur 8 und 9 isoliert: genomische DNA aus dem Mineralboden Horizont AB an der LTSP Website befindet Skulow See, BC isoliert <img src="/files/ftp_upload/1569/1569fig2tmb.jpg" alt="Abbildung 2" border="0" /> Abbildung 2. Chromograms von genomischer DNA von Spektralphotometer, bevor erkannt (A) und nach CsCl Ultrazentrifugation (B). Beachten Sie die Reduzierung der Extinktionswert bei der 230 nm Wellenlänge nach CsCl Ultrazentrifugation, die Verbesserung in der genomischen DNA Qualität zeigt. Bitte <a href="http://jove.com/files/ftp_upload/1569/1569fig2.jpg">klicken Sie hier,</a> um eine größere Version der Abbildung 2 zu sehen.

<ol><li>Hurt, R. A., Qiu, X., Wu, L., Roh, Y., Palumbo, A. V., Tiedje, J. M., Zhou, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+recovery+of+RNA+and+DNA+from+soils+and+sediments%5BTitle%5D)+AND+%22AEM%22%5BJournal%5D)">Simultaneous recovery of RNA and DNA from soils and sediments.</a> AEM. 67 (10), 4495-4503 (2001).</li>
<li>Wright, J. J., Lee, S., Zaikova, E., Walsh, D. A., Hallam, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+extraction+from+0.22+%CE%BCM+Sterivex+filters+and+cesium+chloride+density+gradient+centrifugation%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">DNA extraction from 0.22 μM Sterivex filters and cesium chloride density gradient centrifugation.</a> JoVE. , (2009).</li>
<li>Taupp, M., Lee, S., Hawley, A., Yang, J., Hallam, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+insert+environmental+genomic+library+production%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Large insert environmental genomic library production.</a> J Vis Exp. , (2009).</li>
</ol>

Rezept * Denaturierungslösung 4 M Guanidin-Isothiocyanat 10 mM Tris-HCl (pH 7,0) 1 mM EDTA 0,5% 2-Mercaptoethanol <table border="0" style="font-size:9pt; width:400px;"><tr><td colspan="2"> Denaturierenden Lösung: 10 ml in insgesamt </td></tr><tr><td> Guanidinisothiocyanat (MW 118,16) </td><td> 4,73 g </td></tr><tr><td> 1M Tris-HCl (pH 7,0) </td><td> 100 ul </td></tr><tr><td> 0,5 M EDTA </td><td> 20 pl </td></tr><tr><td colspan="2"> Fügen Sie Wasser auf 9,95 ml insgesamt. </td></tr><tr><td colspan="2"> Autoclave. </td></tr><tr><td colspan="2"> Dann werden 50 ul 2-Mercaptoethanol kurz vor Gebrauch. (5 ul 2-Mercaptoethanol pro 1 ml Denaturierungslösung) Hinweis: Halten Sie die Denaturierung Lösung bei 4 ° C. Verwenden Sie keine Puffer älter als eine Woche. Wenn möglich, machen frischem Puffer zu verwenden. </td></tr></table> ** Extraktionspuffer 100 mM Natrium-Phosphat-Puffer [pH 7,0] 100 mM Tris-HCl [pH 7,0] 100 mM EDTA [pH 8,0] 1,5 M NaCl 1% Hexadecyltrimethylammoniumbromid (CTAB) 2% SDS <table border="0" style="font-size:9pt; width:400px;"><tr><td colspan="2"> Extraktionspuffer für 1 L in insgesamt </td></tr><tr><td> 1M Natrium-Phosphat-Puffer [pH 7,0] * </td><td> 100 ml </td></tr><tr><td> 1M Tris-HCl [pH 7,0] </td><td> 100 ml </td></tr><tr><td> 0,5 M EDTA [pH 8,0] </td><td> 200 ml </td></tr><tr><td> 5 M NaCl </td><td> 300 ml </td></tr><tr><td colspan="2"> Autoclave und halten Sie sie bei Raumtemperatur. </td></tr><tr><td colspan="2"> Add 200 ml, 5% Hexadecyltrimethylammoniumbromid (CTAB, autoklaviert) und 100 ml, 20% SDS (autoklaviert) unmittelbar vor dem Gebrauch. Wenn CTAB wurde kristallisiert, schmilzt es bei 60 ° C. * 1M Natrium-Phosphat-Puffer: 57,7 ml, 1M Mononatriumphosphat (NaH 2 PO 4) und 42,3 ml, 1M Natrium dibasisch (NaH 2 PO 4). Der pH-Wert auf 7,0 Hinweis: Verwenden Sie keine 20% SDS, wenn es Niederschläge. Es ist normal, milchige Suspension sehen, wenn Sie SDS hinzu, um die Lösung. Sobald Sie fügen SDS, platzieren Sie den Extraktionspuffer bei 60 ° C, um sicherzustellen, SDS gut aufgehängt ist. </td></tr></table>

extraktion von high molecular weight genomischer dna aus böden und sedimenten

Extraction of High Molecular Weight Genomic DNA from Soils and Sediments

Der Boden Mikrobiom ist ein riesiges und relativ unerforscht Reservoir von genomischer Diversität und metabolische Innovation, die eng mit Nährstoff-und Energieflüsse innerhalb terrestrische Ökosysteme verbunden ist. Anbau-unabhängigen Umweltgutachter genomische, auch als Metagenom bekannt, versprechen Ansätze beispiellosen Zugang zu diesen genetischen Informationen in Bezug auf Weg Wiederaufbau und funktionelles Screening für hochwertige therapeutische und Umwandlung von Biomasse-Prozesse. Doch der Boden Mikrobiom immer noch eine Herausforderung vor allem auf die Schwierigkeiten bei der Beschaffung hochmolekulare DNA von ausreichender Qualität für große einfügen Bibliothek Produktion. Hier stellen wir ein Protokoll für die Gewinnung von hohem Molekulargewicht, mikrobiellen Gemeinschaft genomischer DNA aus Böden und Sedimenten. Die Qualität der isolierten genomischen DNA ist ideal für den Bau großer einfügen Umwelt genomische Bibliotheken für Downstream-Sequenzierung und Screening-Anwendungen. Das Verfahren beginnt mit Zell-Lyse. Zellwände und Membranen von Mikroben werden sowohl von mechanischen (Schleifen) und chemische Kräfte (β-Mercaptoethanol) lysiert. Genomic DNA wird dann isoliert mit Extraktionspuffer, Chloroform-Isoamylalkohol und Isopropylalkohol. Die Puffer für die Lyse und Extraktion Schritte eingesetzt werden, umfassen Guanidinisothiocyanat und Hexadecyltrimethylammoniumbromid (CTAB), um die Integrität der hochmolekularen genomische DNA zu erhalten. Abhängig von Ihrer nachgeschalteten Anwendung kann der isolierten genomischen DNA weiter aufgereinigt werden mit Cäsiumchlorid (CsCl)-Ultrazentrifugation, die Verunreinigungen einschließlich Huminsäuren reduziert. Das erste Verfahren, Extraktion, dauert ca. 8 Stunden, ohne DNA-Quantifizierung Schritt. Die CsCl Gradienten-Ultrazentrifugation, ist ein 2 Tage-Prozess. Während des gesamten Verfahrens, genomische DNA vorsichtig behandelt werden sollte, um Scherung zu verhindern, vermeiden Sie starke Verwirbelung und repetitive rauen Pipettieren.

Eine Methodik, um mit hohem Molekulargewicht und hoher Qualität genomischer DNA aus mikrobiellen Gemeinschaft zu isolieren beschrieben.

Extraktion von High Molecular Weight genomischer DNA aus Böden und Sedimenten

Das Bodenmikrobiom ist ein riesiges und relativ unerforschtes Reservoir an genomischer Diversität und metabolischen Innovationen, das eng mit ... verbunden ist.

Hi, ich bin San Lee aus dem Labor von Stephen Harlem an der Abteilung für Mikrobiologie und Immunologie der University of British Columbia. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur Isolierung von hochmolekularem genomischen DNA aus Waldboden, das ebenfalls auf eine Vielzahl von Boden- und Sedimenttypen anwendbar ist. Wir verwenden hochmolekulares genomisches DNA zur Konstruktion der Forest-Meter-Bibliothek mikrobieller Bodengemeinschaften.Mit diesen Bibliotheken können wir die Diversität und das metabolische Potenzial mikrobieller Gemeinschaften untersuchen, die auf verschiedene Bodenhorizonte verteilt sind. Beginnen wir also. Dieses Protokoll startet mit der Zelllyse.Der erste Schritt besteht darin, den Denaturierungspuffer durch Zugabe von beta-Mercaptoethanol auf eine Konzentration von 0,5 % zu vervollständigen. Für optimale Ergebnisse sollte die Denaturierungslösung jedes Mal frisch hergestellt werden. Alternativ kann ein weniger als eine Woche alter Puffer verwendet werden, der bei vier Grad Celsius aufbewahrt wurde. Für den nächsten Schritt benötigen Sie einen Behälter mit flüssigem Stickstoff, einen Autoklaven sowie einen vorgekühlten Mörser mit Pistill und einen Spatel.Ein zwei Gramm schweres gefrorenes Bodenprobe in die vorgekühlte Mörser schlagen. Ein Milliliter der Denaturierungslösung hinzufügen. Anschließend flüssigen Stickstoff hinzufügen, bis der Boden vollständig bedeckt ist.Verwenden Sie einen vorab gekühlten Pistill, um die Probe zu pulverisieren, bis die Bodenpartikel pulverförmig und homogen erscheinen und die Probe zu schmelzen beginnt. Fügen Sie dann weiteren flüssigen Stickstoff hinzu und wiederholen Sie den Schritt des Zermahlens. Damit ist der Zelllyseschritt mit einem vorab gekühlten Spatel abgeschlossen.Überführen Sie die pulverisierte Probe in ein 50-Milliliter-Konischgefäß. Halten Sie die Probe auf Eis, um unmittelbar mit dem DNA-Extraktionsschritt fortzufahren, oder lagern Sie sie bei minus 80 Grad Celsius. Für die Verwendung fügen Sie kurz vor Beginn der DNA-Extraktion dem Extraktionspuffer Hexadecyltrimethylammoniumbromid oder CTAB sowie SDS hinzu.Überprüfen Sie, ob das CTAB kristallisiert ist, und lösen Sie es gegebenenfalls vor der Weiterarbeit bei 60 Grad Celsius auf. Geben Sie es anschließend zur Lösung, um eine Endkonzentration von 1 % zu erreichen. Danach fügen Sie 20 %ige SDS-Lösung hinzu, um eine Endkonzentration von 2 % zu erhalten. Die dabei entstehende milchige Suspension ist normal.Nachdem das SDS zugegeben wurde, das vollständig zubereitete Extraktionspuffer homogen halten, indem er nach 10 bis 15 Minuten bei 60 Grad Celsius aufbewahrt wird. Sobald der Extraktionspuffer gut gelöst und homogen ist, neun Milliliter Extraktionspuffer zur Bodenprobe geben und kurz bei niedriger Geschwindigkeit verwirbeln, um zu mischen. Die Probe mit Extraktionspuffer 40 Minuten lang in einem Hybridisierungsofen bei 65 Grad Celsius inkubieren.Während der Inkubation die Röhrchen alle 10 Minuten vorsichtig umdrehen oder kontinuierlich mit der niedrigsten Rotorgeschwindigkeit rotieren lassen. Während der Inkubation kann die Lösung nach der Inkubation leicht viskos erscheinen. Im nächsten Schritt wird Chloroform-Isoamylalkohol verwendet, um die DNA von dem organischen Material in der Lysatlösung zu reinigen.Zentrifugieren Sie die Probe zunächst 10 Minuten bei 1800 G und etwa 10 bis 14 Grad Celsius im Abzug. Sammeln Sie den DNA-haltigen Überstand, indem Sie die Pipettenspitze vorsichtig entlang der Röhrenwand gleiten lassen, wobei Sie die beige gefärbte Schicht oben und die organische Schicht unten vermeiden. Überführen Sie den Überstand in eine vorab gekühlte 50-Milliliter-Röhre, die 20 Milliliter Chloroform ISL-Alkohol oder i a a enthält. Wiederholen Sie den Extraktionsvorgang danach noch zweimal an derselben Probe. In der Zwischenzeit bewahren Sie den DNA-Extrakt und den Chloroform i a a im Abzug auf Eis auf.Für die zweite DNA-Extraktion kehren Sie zu dem Röhrchen mit dem Bodenpellet und dem restlichen Extraktionspuffer zurück und geben fünf Milliliter Extraktionspuffer hinzu. Vorsichtig mit einer Ein-Milliliter-Spitze mischen und kurz verwirbeln, um das Pellet wie zuvor erneut aufzuschwemmen. Inkubieren Sie diesmal bei 65 Grad Celsius für 10 Minuten.Anschließend 10 Minuten bei 1800 Gs zentrifugieren. Im Abzug bei etwa 10 bis 14 Grad Celsius das Überstand auf das Röhrchen mit Chloroform, Isoamylalkohol oder Chloroform i a a und dem Überstand aus der vorherigen Extraktion überführen. Den gesamten Extraktionsprozess noch einmal wiederholen, um so viel DNA wie möglich aus der Bodenprobe zu gewinnen.Wenn Sie insgesamt drei Extraktionen an Ihrer Bodenprobe durchgeführt haben, schütteln Sie das Gefäß mit dem gesammelten Überstand und Chloroform vorsichtig auf einer rotierenden Platte 10 Minuten lang bei 1,25 U/min. Nach diesem Mischschritt zentrifugieren Sie das Gefäß 20 Minuten lang bei 1800 ×g und einer Temperatur von etwa 10 bis 14 Grad Celsius. Nach der Zentrifugation überführen Sie vorsichtig die wässrige Phase in ein neues Ultrazentrifugenröhrchen, wobei Sie ein bis zwei Milliliter des Überstands zurücklassen, um die Grenzfläche zwischen der wässrigen und der organischen Phase nicht zu stören. Um nun die DNA auszufällen, geben Sie 0,6 Milliliter Isopropanol hinzu.Zu jedem Milliliter des gesammelten Überstandes die Röhrchen vorsichtig einige Male umdrehen, um zu mischen. An diesem Punkt können Sie möglicherweise das DNA-Präzipitat als lange Fäden sichtbar werden sehen. Anschließend die DNA 30 Minuten bei Raumtemperatur mit Isopropanol inkubieren.Nach der Inkubation ist es an der Zeit, die DNA durch Zentrifugation zu pelletieren. Markieren Sie eine Ecke des Röhrchens, während Sie es in die Zentrifuge geben, damit Sie wissen, wo sich das DNA-Pellet befindet. Zentrifugieren Sie 20 Minuten bei 16.000 ×g und 20 bis 25 °C. Nach der Zentrifugation entfernen Sie das Isopropanol durch Abgießen oder Vakuumabsaugung. Achten Sie darauf, das DNA-Pellet nicht zu verlieren, das je nach Extraktionseffizienz und Biomasse in den Bodenproben von kaum sichtbar bis neun Millimeter breit sein kann. Trocknen Sie das DNA-Pellet bei Raumtemperatur fünf bis 20 Minuten lang. Achten Sie darauf, das Pellet nicht zu stark auszutrocknen, wenn es trocken ist.Suspendieren Sie die DNA in 200 bis 400 Mikrolitern TE-Puffer. Mischen Sie sie durch vorsichtiges Antippen. Überführen Sie die DNA-Lösung in ein 1,5-Milliliter-Röhrchen.Die DNA über Nacht bei vier Grad Celsius lagern. Um die DNA vollständig aufzulösen, nachdem sie aus der Bodenprobe extrahiert wurde, sind die weiteren Schritte zur Überprüfung der Konzentration und Integrität der DNA Standardverfahren, die detailliert in einem anderen JoVE-Protokoll des Hallam-Labors beschrieben werden. Bestimmen Sie die DNA-Konzentration mit der von Ihnen gewählten Methode.Überprüfen Sie außerdem die Integrität der DNA mit hohem Molekulargewicht, indem Sie 10 bis 20 Mikroliter Ihrer DNA-Probe mittels Pulsfeld-Gelelektrophorese (PFGE) laufen lassen. Die mittlere DNA-Größe sollte je nach nachgeschalteter Anwendung 36 Kilobasen oder größer sein. Fahren Sie mit dem folgenden Zentrifugationsschritt über eine Cäsiumchlorid-Gradienten-Dichte nutzen Sie alternativ die Möglichkeit, die DNA vor der Ultrazentrifugation bei minus 20 Grad Celsius oder minus 80 Grad Celsius zu lagern.Der nächste Schritt besteht darin, die DNA durch eine Cäsiumchlorid-Gradientenzentrifugation weiter zu reinigen, um Verunreinigungen zu entfernen. Anschließend wird die DNA nach der Cäsiumchlorid-Gradientenzentrifugation konzentriert und mithilfe von AmCon- und MicroCon-Zentrifugalfiltergeräten weitergereinigt. Die Cäsiumchlorid-Gradientenzentrifugation ist entscheidend für die Gewinnung von hochwertiger DNA und wird ausführlich in einem weiteren JoVE-Protokoll aus dem Hallam-Labor beschrieben. Nach Durchführung der Cäsiumchlorid-Gradientenzentrifugation und der Konzentrierungsschritte überprüfen Sie die DNA-Konzentration mit der von Ihnen gewählten Methode.Überprüfen Sie anschließend die Integrität der DNA mit hohem Molekulargewicht erneut, indem Sie eine kleine Probe der DNA mittels PFGE laufen lassen. Die Gesamtmenge an genomischer DNA, die aus zwei Gramm Zwangsgeformtem Boden isoliert wurde, liegt zwischen 10 und 180 Mikrogramm, wie auf dem Gel vor und nach der Zentrifugation in einer Cäsiumchlorid-Dichtegradientenlösung gezeigt. Der Größenbereich der isolierten DNA liegt üblicherweise zwischen 40 und 60 Kilobasen. Dargestellt ist hier ein Chromatogramm von Proben genomischer DNA vor und nach der Zentrifugation in einer Cäsiumchlorid-Dichtegradientenlösung.Dieser Schritt verbessert die Reinheit der DNA, wobei das Verhältnis von 260 zu 280 von 1,3 bis 1,6 vorher auf 1,8 bis 1,9 danach ansteigt. Außerdem wurde die Peak-Absorption bei 230 Nanometern, die auf eine Huminsäurekontamination hindeutet, nach der Zentrifugation erfolgreich verringert. Soeben haben wir Ihnen gezeigt, wie man genomische DNA mit hohem Molekulargewicht aus mikrobiellen Gemeinschaften im Boden isoliert.Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, sich daran zu erinnern, den Extraktions- und Denaturierungspuffer genau gemäß der Anleitung herzustellen. Achten Sie darauf, Ihr DNA-Pellet nach der Fällung mit Isopropanol nicht zu beschädigen, wenn Sie die DNA-Bande nach der Chlorid-Gradientenzentrifugation gewinnen.Vergessen Sie nicht, die Spritze mit TE zu spülen, um die DNA-Rückgewinnung zu maximieren. Und schließlich sollten Sie in allen empfohlenen Schritten die Menge und Qualität Ihrer isolierten DNA überprüfen. Das war's.Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihrem Experiment.

extraction-high-molecular-weight-genomic-dna-from-soils

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Wir beschreiben ein Verfahren zur Gewinnung von hohem Molekulargewicht von genomischer DNA aus planktonischen Biomasse auf 0,22 um Sterivex Filter, durch Cäsiumchlorid-Dichtegradientenzentrifugation zur Reinigung folgte konzentriert.

DNA-Extraktion von 0,22 pM Sterivex Filter und Cäsiumchlorid-Dichtegradientenzentrifugation

Dieses Video zeigt das Protokoll für die DNA-Extraktion aus Formalin-fixierten Paraffin-eingebetteten Material. Dies ist eine mehrtägige Prozedur, in der Gewebeschnitte werden deparaffinierten mit Xylol, rehydriert mit Ethanol und mit Proteinase K zu reinigen und zu isolieren DNA für die nachfolgende Gen-spezifischen oder genomweite Analyse.

DNA-Extraktion aus in Paraffin eingebettete Material für genetische und epigenetische Analysen

Wir bieten ein verbessertes Protokoll zur Extraktion von DNA mit hohem Molekulargewicht aus hypersaline mikrobielle Matten. Mikrobielle Zellen sind von der Matte Matrix vor der DNA-Extraktion und Reinigung getrennt. Dies erhöht die Konzentration, Qualität und Größe der DNA. Das Protokoll kann für andere feuerfeste Proben verwendet werden.

Extraktion von DNA mit hohem Molekulargewicht von mikrobiellen Matten

DNA-Extraktion aus Speichel kann eine leicht verfügbare Quelle für DNA mit hohem Molekulargewicht darstellen, mit wenig bis gar keiner Degradation/Fragmentierung.  Dieses Protokoll bietet optimierte Parameter für die Speichelgewinnung/-lagerung und DNA-Extraktion, um von ausreichender Qualität und Quantität für nachgelagerte DNA-Assays mit hohen Qualitätsanforderungen zu sein.

Sammlung und Extraktion von DNA-Speichel für Next Generation Sequencing

Die Kryosphäre bietet Zugang zu den erhaltenen Organismen, die im Rahmen früherer Umweltbedingungen bestehen blieb. Ein Protokoll vorgestellt zu sammeln und Permafrostkerne von Böden und Eis dekontaminieren. Die Abwesenheit von exogenen DNA-Kolonien und schlagen vor, dass Mikroorganismen detektiert das Material darstellen, anstatt Kontamination durch Bohren oder Verarbeitung.

Entfernen von exogenen Materialien aus dem äußeren Teil der gefrorenen Kerne der Antike biologische Gemeinschaften beherbergte Innen zur Untersuchung

Beschrieben wird hier ein Verfahren zur Extraktion, Reinigung und Qualitätskontrolle von genomischer DNA aus dem obligat biotrophen Pilzerreger, dem Echten Mehltau, zur Verwendung in der Long-Read-Genomsequenzierung.

Reinigung von High Molecular Weight genomischer DNA aus Echten Mehltaus für Long-Read-Sequenzierung

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Amplikons Sequenzdaten von Boden, Rhizosphäre und Wurzel Endosphere mikrobiome zu erhalten. Diese Informationen kann verwendet werden, um die Zusammensetzung und Vielfalt der Anlage verbundenen mikrobieller Gemeinschaften zu untersuchen, und eignet sich für den Einsatz mit einer Vielzahl von Pflanzenarten.

Die Wurzel Mikrobiom zu erkunden: Extrahieren von Bakteriengemeinschaft Daten aus dem Boden, die Rhizosphäre und die Wurzel Endosphere

Hier stellen wir eine einfache Technik zur Bewertung der antimikrobiellen Resistenz in der Umwelt (AMR) vor, indem der Anteil an niedermolekularer extrazellulärer DNA erhöht wird. Eine vorherige Behandlung mit 20%-30% PEG und 1,2 M NaCl ermöglicht den Nachweis sowohl genomischer als auch horizontal übertragener AMR-Gene. Das Protokoll eignet sich für einen kitfreien Prozess mit zusätzlicher Optimierung.

Verbesserte Extraktion von niedermolekularer DNA aus Abwasser zur umfassenden Bewertung von Antibiotikaresistenzen 

Dieses Protokoll beschreibt die CTAB-Methode zur Gewinnung hochwertiger DNA aus Mykobakterien und überwindet Herausforderungen durch ihre robusten, mykolsäurereichen Zellwände. Der Prozess umfasst enzymatische Verdauung, Zelllyse mit CTAB und DNA-Reinigung durch organische Extraktion und Ethanol-Fällung. Diese Methode erzeugt DNA, die für molekulare Studien geeignet ist und für mykobakterielle Forschung zuverlässig ist.

Ganzgenom-Deoxyribonukleinsäureextraktion aus Mycobacterium-Arten mittels der Cetyltrimethylammoniumbromid-Technik

Isolierung genomischer DNA aus Maus-Tails

Erfahren Sie die Isolierung hochmolekularer genomischer DNA aus Boden- und Sedimentproben. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung mikrobieller Diversität und metabolischer Potenziale in verschiedenen Bodenhorizonten.

Extraktion von High Molecular Weight genomischer DNA aus Böden und Sedimenten

Weitere Videos entdecken