28. April 2007
Das vorliegende Verfahren ermöglicht reproduzierbare Kryostat Schnitte von kleinen, schwer zu verwalten, Gewebeteile, wie Biopsien und Hirnschnitten. Wir verwenden ein einfaches Aluminium Einfrieren der Bühne um die Behandlung von Gewebe-und ein Standard-Kryostat routinemäßig produzieren 5-10 Mikrometer Serienschnitte von 400 Mikrometer dicken Hirnschnitten zu erleichtern.
Hallo, mein Name ist Jun Park, Forschungsstipendiat an der Harvard Medical School, und ich bin außerdem Medizinstudent am Y-Universitäts-College of Medicine, Severance Hospital, EO Korea. Dies sind die Materialien für das Dünnschneiden von Schnittpräparaten. Ich bereite eine Form aus Klebeband, vier OCT-Plattformen vor.
Ich forme mit OCT und friere im Kryostaten oder unter Verwendung von zerkleinertem Trockeneis, wobei ich TAFE von der gefrorenen OCT-Plattform entferne. Ich markiere Ausrichtungshilfen auf der Einfrierkreide und der Montagestufe des Kryostaten und fixiere die Kreide. Ich schneide durch die OCT-Plattform.
Die Oberfläche von Ontario ist flach. Ich entferne die nachbearbeitete OCT-Plattform und platziere sie auf der Gefriermühle des Kryostaten. Ich gebe diese Probe in OCT, und diese Probe wurde zuvor mit 30 % Glycerin oder Saccharose in PBS kryokonserviert.
Dies ist der Schritt zur Vorbereitung der Gefriermatrix mit einem äußeren Ring, der etwa fünf Millimeter über die Oberseite der Matrix hinausragt und so einen Hohlraum bildet. Ich positioniere die Gewebeprobe sorgfältig in der Mitte der Oberfläche der Gefriermatrix und fülle den Hohlraum langsam mit OCT, bis er vollständig gefüllt ist. Anschließend umgebe ich die Gefriermatrix mit zerkleinertem Trockeneis.
Gewebe und OCT sollten innerhalb von 20 bis 60 Sekunden vollständig gefrieren. Während die Probe an Temperatur zunimmt, kann der äußere Ring entfernt werden, während die Probe weiterhin gefroren bleibt. Dieser Schritt dient dazu, die Probe des Gefrierkolbens seitlich herauszuschieben und in den Kryostaten zu überführen.
Ich gebe einen Tropfen OCT auf die Oberfläche der OCT-Plattform und positioniere den Spaceman, wobei ich leichten Druck ausübe, sodass der Spaceman schnell auf der OCT-Plattform einfriert. Dies ist der Schritt, bei dem der Ch-On am Kryostat-Montageständer befestigt wird, wobei die Markierungen ausgerichtet sind. Ich schneide durch das OCT oberflächlich zum Gewebe des Spaceman.
Ich bringe dünne Schnitte auf Objektträger auf und lagere sie gefroren oder bei Raumtemperatur; die Reaktionen können an auf Objektträgern aufgebrachtem Gewebe durchgeführt werden. Das Reagenz wird auf den Objektträger aufgezogen, kann vorsichtig agitiert werden und gegebenenfalls abgedeckt werden, wenn es lichtempfindlich ist; nachfolgende Reaktionsschritte lassen sich einfach durch Umkehren des Objektträgers durchführen. Objektträger in den Abfallbehälter legen, um den Objektträger zu lockern, und anschließend die nächste Behandlung aufbringen.
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Diese Methode ermöglicht die reproduzierbare Kryostatschnitte von kleinen, anspruchsvollen Gewebeproben, einschließlich Biopsien und Gehirnschnitten. Sie verwendet eine einfache Aluminiumgefrierstufe zur leichteren Handhabung des Gewebes und einen Standard-Kryostaten, um Serienschnitte von 5–10 Mikrometern aus 400 Mikrometer dicken Gehirnschnitten herzustellen.
Diese Methode löst die Herausforderung des Umgangs mit kleinen, empfindlichen Gewebeproben in der neurowissenschaftlichen Forschung, indem sie eine reproduzierbare dünne Schnittführung für nachgeschaltete immunhistochemische Analysen ermöglicht. Sie unterstützt die Zielvalidierung und die mechanistische Risikominderung, indem sie konsistente histologische Ergebnisse aus elektrophysiologisch charakterisierten Hirnregionen liefert. Der Ansatz erhöht das Vorhersagevertrauen in präklinische Modelle, indem er die Datengüte aus begrenzten Gewebemengen verbessert.
Die Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess, indem sie die histologische Bestätigung nach funktionellen Screenings in Gehirnschnittpräparaten unterstützt.