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Krebsforschung
0 Ansichten • 3:01 Min. • April 30th, 2023
Bestimmte Organe produzieren lösliche Faktoren und werden zu bevorzugten Stellen für Brustkrebsmetastasen. Ein konditioniertes Medium, das aus diesen entnommenen Organzellen hergestellt wird, kann helfen, solche Faktoren zu identifizieren und zu untersuchen.
Beginnen Sie damit, ein entnommenes Organ wie eine Leber in ein Röhrchen mit kaltem PBS zu legen und das Röhrchen auf und ab zu drehen, um das Restblut des Organs zu entfernen. Lege das Organ in eine Petrischale. Und mit einem Skalpell das Organ in kleine Stücke würfeln.
Suspendieren Sie diese Stücke in ein Röhrchen mit einem Basalmedium, das mit einem Antibiotikum ergänzt wird, um das Zellwachstum zu unterstützen und eine Kontamination zu verhindern. Gießen Sie nun die Zellsuspension in eine Kulturplatte und inkubieren Sie bei 37 Grad Celsius mit kontinuierlicher Kohlendioxidzufuhr für die erforderliche Dauer.
Während der Inkubation geben diese Zellen Metaboliten, Wachstumsfaktoren und Proteine der extrazellulären Matrix an das Medium ab. Übertragen Sie anschließend die Zellsuspension in ein Zentrifugenröhrchen und fügen Sie frisches Medium hinzu, um es zu verdünnen. Zentrifugieren Sie das Röhrchen und filtrieren Sie den Überstand, d. h. das konditionierte Medium, in ein frisches Röhrchen.
Im folgenden Protokoll werden wir konditionierte Medien aus der Lunge und dem Gehirn von Mäusen herstellen, um das Metastasierungsverhalten von Brustkrebszellen zu untersuchen.
Um das lungenkonditionierte Medium zu erzeugen, drehen Sie die Röhren des Lungengewebes dreimal um, um jegliches Restblut aus den Organen zu entfernen. Ersetzen Sie dann die Wäsche durch frisches, kaltes PBS und wiederholen Sie den Vorgang, bis die Kochsalzlösung blutfrei ist.
Übertragen Sie als nächstes die Lunge in eine 60 Quadratmillimeter große Petrischale aus Glas pro Maus und verwenden Sie zwei sterile Skalpellklingen, um das Gewebe durch wiederholtes Hin- und Herschneiden zu zerkleinern.
Wenn die Gewebefragmente etwa 1 Millimeter groß sind, resuspendieren Sie die Stücke in dem entsprechenden Volumen an DMEM/F-12-Medium, das mit Antibiotika ergänzt wird, und inkubieren Sie das Gewebe in einer Vertiefung einer 6-Well-Platte pro Maus bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2.
Nach 24 Stunden wird der gesamte Inhalt jeder Vertiefung in einzelne konische 50-Milliliter-Röhrchen überführt und das konditionierte Medium mit drei äquivalenten Volumina frischem DMEM/F-12-Medium pro Röhrchen verdünnt.
Zentrifugieren Sie die Röhrchen, um große Gewebereste zu entfernen. Anschließend wird das konditionierte Medium durch ein 0,22-Mikron-Spritzensieb in ein einzelnes konisches 50-Milliliter-Röhrchen gepoolt.
In diesem Artikel wird die Herstellung von konditioniertem Medium aus geernteten Organen beschrieben, wobei der Fokus speziell auf Leber, Lunge und Gehirn liegt, um Faktoren zu untersuchen, die an der Metastasierung von Brustkrebs beteiligt sind. Die Methodik umfasst die Isolierung von Zellen aus diesen Organen und die Analyse der freigesetzten löslichen Faktoren, die das metastatische Verhalten beeinflussen können.
Organbedingte Medien ermöglichen die Untersuchung löslicher Faktoren, die die organspezifische metastatische Tropismus steuern, und stellen somit ein mechanistisches Entwicklungsrisikominimierungswerkzeug für die Zielvalidierung in der Forschung zur Metastasierung von Brustkrebs dar. Durch die Isolierung von organstämmigen Metaboliten, Wachstumsfaktoren und extrazellulären Matrixproteinen unterstützt dieser Ansatz die Vorhersagegenauigkeit bei der Identifizierung pharmakologisch angreifbarer Signalwege und der Priorisierung präklinischer Kandidaten. Er adressiert einen entscheidenden Wendepunkt in der Entdeckungsforschung: das Verständnis, wie mikroumgebungsbedingte Signale das metastatische Verhalten beeinflussen, und leitet damit Portfolioentscheidungen bei der Identifizierung onkologischer Zielstrukturen.
Diese Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess von der frühen Testung von Zielhypothesen über die Identifizierung von Leitstrukturen bis hin zur präklinischen Validierung, indem sie einen organspezifischen mikrobiellen Kontext bereitstellt.
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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026