Colony Formation Assay: Bewertung der Wirksamkeit von Antikrebsmitteln auf koloniebildende Lungenkrebszellen

0 Ansichten4:11 Min. • April 30th, 2023

- Der Koloniebildungsassay ist eine In-vitro-Analyse eines Krebsmedikaments auf das Wachstum, die Proliferation und die Differenzierung der Krebszelle in halbfesten Medien. Zu Beginn säen Sie Krebszellen im RPMI-Medium mit Wachstumsergänzungsmitteln aus - fötalem Rinderserum oder FBS und Antibiotikum. Inkubieren Sie die Zellen für die erforderliche Dauer.

Sammeln Sie als Nächstes die gewünschte Konzentration von Zellen in einem Mikrofuge-Röhrchen und einer Zentrifuge. Suspendieren Sie das Pellet wieder in PBS. Bereiten Sie Medium auf Methylcellulosebasis vor und geben Sie es in verschiedene Röhrchen mit FBS, um ein optimales Wachstum zu fördern.

Geben Sie eine angemessene Menge Zellsuspension in Röhrchen und wirbeln Sie sie, um die Zellen mit dem Medium zu vermischen. Geben Sie als Nächstes krebshemmende Wirkstoffe in Röhrchen und bereiten Sie eine Kontrolle durch Zugabe von DMSO vor. Vortex-Rohre.

Geben Sie diese Zellmischung in die Kulturplatte und inkubieren Sie sie für die gewünschte Dauer. Nach der Inkubation Methylthiazoldiphenyltetrazoliumbromid oder MTT hinzufügen und einige Zeit inkubieren. MTT reduziert gelbes Tetrazoliumsalz in lebensfähigen Zellen zu violetten Formazankristallen. Lebensfähige Völker färben sich violett. Nehmen Sie die Bilder mit einer Digitalkamera auf und analysieren Sie die lebensfähigen Kolonien. Im folgenden Protokoll werden wir einen Koloniebildungsassay zur Beurteilung der Aktivität von Hydroxycumarin OT48 und BH3-Mimetika bei Lungenkrebs untersuchen.

- Zu Beginn werden 20.000 A549-Zellen pro Quadratzentimeter in 15 Milliliter RPMI 1640-Zellkulturmedium gegossen, ergänzt mit 10 % FBS und 1 % Antibiotika in einem 75-Quadratzentimeter-Kolben. Inkubieren Sie die Kultur bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2. Verwenden Sie am Tag des Experiments ein Hämozytometer, um die Zellkonzentration zu bestimmen.

Sammeln Sie 50.000 Zellen in einem 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen durch Zentrifugation bei 400 g für sieben Minuten. Und resuspendieren Sie die Zellen in 100 Mikrolitern sterilem 1X PBS. Geben Sie mit einer Mehrfachpipette 1,1 Milliliter halbfestes Medium auf Methylcellulosebasis (MCBM) in Röhrchen ab und bereiten Sie ein Röhrchen für jede Bedingung vor. Geben Sie dann 110 Mikroliter FBS in jedes Röhrchen.

Als nächstes säen Sie 1.000 Zellen pro Milliliter. Pipettieren Sie dann 2,4 Mikroliter der Stammzellenlösung in die Röhrchen von MCBM und FBS. Halten Sie die Röhrchen nach dem Hinzufügen der Zellen senkrecht und wirbeln Sie sie eine Minute lang mit höchster Geschwindigkeit, um das MCBM und die Zellen gründlich zu mischen.

Geben Sie nun die Testverbindung OT48 allein oder in Kombination mit A1210477 zu den Proben. Bereiten Sie ein separates Röhrchen zur Kontrolle des verwendeten Lösungsmittels vor, z. B. DMSO. Anschließend werden die Proben eine Minute lang vortext.

Pipettieren Sie für jeden Assay einen Milliliter der Mischung in die mittlere Vertiefung einer 12-Well-Zellkulturplatte. Verwenden Sie dann einen Milliliter steriles Wasser oder PBS, um die leeren Vertiefungen zu füllen. Inkubieren Sie die Platten 10 Tage lang bei 37 Grad Celsius und 5 % CO2. Geben Sie dann 200 Mikroliter einer MTT-Stammlösung von fünf Milligramm pro Milliliter in jede Vertiefung. Nachdem Sie die Platten 10 Minuten lang inkubiert haben, prüfen Sie, ob lebensfähige Bienenvölker vorhanden sind, die sich violett verfärben.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026