Name: Mess-Calpain Aktivität in fixierten und lebenden Zellen mittels Durchflusszytometrie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-08T17:15:00.000+00:00
Duration: 11 min 37 s
Description: Lernen Sie die Durchflusszytometrie zur Messung der Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen. Diese Methode nutzt fluoreszente Substrate und ermöglicht die Untersuchung von Proteasen in Leukämie- und Lymphomzellen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Unterstützt durch Zuschüsse aus dem Canadian Institutes of Health Research, The Leukemia and Lymphoma Society of Canada und der Lymphoma Foundation of Canada.

Bereiten Sie Reagenzien Hinweis: Alle PBS enthält Ca 2 + und Mg 2 + <ol><li> Nachweisreagenz Add 20 um 7-Amino-4-chlormethyl Cumarin, t-BOC-Leucin-methioninamid (BOC-LM-CMAC) auf Raumtemperatur PBS. Jede Zellsuspension erfordert 2mL Nachweisreagenz. </li><li> 1% Paraformaldehyd (Fixed Cells) Verdünnen Sie 4% Paraformaldehyd Stammlösung bei Raumtemperatur PBS. Aliquot 1ml 1% Paraformaldehyd jedem FACS-Röhrchen. Drei FACS Röhrchen für jede experimentelle Bedingung erforderlich sind (zB 32Dkit, 32Dkit + PD150606, 32Dkit + PD98059 brauchen 9 FACS-Röhrchen) </li><li> PD150606 (Calpain-Inhibitor) Rekonstituieren PD150606 in DMSO in einer Endkonzentration von 100 mM. Schützen Sie dieses Reagenz und alle Zellen mit Inhalt vor Licht behandelt für die Dauer des Experiments. </li><li> PD98059 (MEK1 Inhibitor) Rekonstituieren PD98059 in DMSO in einer Endkonzentration von 50mM. </li></ol> Bereiten Cells <ol><li> Wachsen 32Dkit Zellen bei 5 x 05 bis 1 Oktober x 10 6 Zellen pro ml in Opti-MEM Medium mit 5% fötalem Rinderserum, WEHI-3 Überstand als eine Quelle von IL-3 (oder eine andere Quelle für IL-3, wie ergänzt als rekombinantes Protein), 0,1% 2-Mercaptoethanol und Antibiotika. </li><li> Sammeln Sie 12 x 10 6 Zellen 32Dkit in drei 15 mL Falcon-Röhrchen (4 x 10 6 Zellen pro Röhrchen). </li><li> Pellet die Zellen bei 1000 rpm für 5 Minuten bei 15 ° C. </li><li> Den Überstand aspirieren. Resuspendieren der Zellen in 2 ml Raumtemperatur PBS. </li><li> Gönnen einer Zelle Fahrwerk mit 50 &amp;mgr; PD150606. Sicherstellen, dass die Probe von Licht durch das Abdecken der Falcon-Röhrchen mit Alu-Folie geschützt. Vortex kurz danach für 20-30 Minuten bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubieren. </li><li> Treat der zweiten Zellsuspension mit 20 um PD98059. Platte die Zellen in einer 35-mm Gewebe Kulturschale und Inkubation für 2 Stunden bei 37 ° C. </li></ol> Calpain Assay in fixierten Zellen <ol><li> Während der Proben mit PD150606 sind Inkubation beginnen die Calpain-Assay auf den unbehandelten Proben. Beginnen Sie, indem 2 ml Nachweisreagenz jeder Zellsuspension. Unmittelbar 1ml der Zellsuspension / Nachweisreagenz Mischung auf die vorbereiteten FACS-Röhrchen mit 1% Paraformaldehyd (0 Minuten Zeitpunkt). </li><li> Inkubieren Zellsuspensionen mit Nachweisreagenz für 5 Minuten bei Raumtemperatur. Dann 1ml der Zellsuspension zu einem FACS-Röhrchen mit 1 ml 1% Paraformaldehyd. </li><li> Weiter Inkubation der Zellsuspensionen mit Erkennung Mischung für weitere 5 Minuten bei Raumtemperatur. Dann 1ml der Zellsuspension zu einem FACS-Röhrchen mit 1 ml 1% Paraformaldehyd. </li><li> Wiederholen Sie die Calpain-Assay auf 32Dkit Zellen, die mit Inhibitoren behandelt wurden. </li><li> Fix Zellen über Nacht im Dunkeln bei 4 ° C. </li><li> Am nächsten Tag Pellet die Zellen bei 1800 rpm für 5 Minuten bei 15 ° C. </li><li> Den Überstand aspirieren. Resuspendieren der Zellen in 750uL PBS. Legen Zellen auf Eis und halten in der Dunkelheit. </li></ol> Erfassung von Daten für die fixierten Zellen <ol><li> Analysieren Sie die Zellen mit einer LSR II (BD Bioscience). Die Filter sind für die Lightwave Xcyte (UV)-Laser, Anregung Linie 355nm und Laserleistung 25mW, die Emission von 405 und 450 nm für Substrat und Produkt bzw. eingestellt. Bandpass-Filter für Substrat und Produkt sind 405/20 und 450/50. Langpassfilter für Substrat und Produkt sind 405 und 450. Die PMT-Spannung wurde auf 350-375 für Substrat und 325-350 für das Produkt eingestellt. </li><li> Set-up eine BD FACSDiva Experiment mit den folgenden Parametern: forward scatter; side scatter; Indo-1 Blue (log); Indo-1 Violet (log). Auf dem Arbeitsblatt einrichten die folgenden Grafiken: forward scatter vs side scatter Dot-Plot mit einem Tor an lebenden Zellen (Abbildung 1a), Indo-1 Blue-Histogramm, Indo-1 Violet Histogramm, Indo-1 Blue vs Indo-1 Violet Dot-Plot. </li><li> Kalibrieren Sie den LSR II mit AlignFlow und AlignFlow sowie fluoreszierende Kügelchen (Invitrogen). Die PMT-Spannung soll an die Spitze des Bead-Fluoreszenz-Histogramm in dem gleichen Kanal vor jedem Experiment Ort sein. </li><li> Begin Erfassung von Daten über die 32Dkit Zellen in der 0-Minuten-Zeitpunkt. Stellen Sie Parameter Spannungen wie nötig. Erfassen und speichern, 10.000 Ereignisse pro Probe. </li><li> Wiederholen Sie die Übernahme für jede Probe, Spülen der Maschine mit FACS-Puffer zwischen den einzelnen Röhre. </li><li> Export der Daten. Stellen Sie sicher, LSR II ist nach Instituts-Richtlinien gereinigt. </li></ol> Calpain Assay in lebenden Zellen <ol><li> Bereiten Sie die Zellsuspensionen wie oben, ohne PD150606. Bringen Sie die Proben an die LSR II und Filter einrichten und Parameter wie oben. Richten Sie das Arbeitsblatt wie oben. Fügen Sie eine große Dot-Plot zeigt Indo-1 Blue-Zeit. Stellen Sie das Programm, um die maximale Zahl erwerbenber von Veranstaltungen (kein Stop-Tor). </li><li> Add 50 &amp;mgr; PD150606 zu einer Zellsuspension von 32Dkit Zellen. Halten Sie die Probe im Dunkeln und bei Raumtemperatur inkubieren für 20-30 Minuten. </li><li> Begin Erfassung von Daten über die 32Dkit Zellsuspension ohne PD150606. Verwenden Sie eine geringe Strömungsgeschwindigkeit von 200-300 Ereignisse pro Sekunde. Nach 30 Sekunden bis 1 Minute den Schlauch aus der Maschine. Add 20 um BOC-LM-CMAC zu den Zellen. Vortex kurz danach weiterhin den Erwerb der Daten. </li><li> Erfassung von Daten für 10-20 Minuten oder bis der Calpain-Aktivität Plateaus. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 3 und 4 mit 32Dkit Zellen mit PD150606 behandelt. </li><li> Export der Daten. Stellen Sie sicher, LSR II ist nach Instituts-Richtlinien gereinigt. </li></ol> Calpain Assay in Complex (Mixed) Zellpopulationen * Dieses Experiment wird 32Dkit Zellen in einer Zellsuspension aus einer Maus-Milz geerntet zu identifizieren. <ol><li> Ernte der Milz von jeder Maus. Lyse der roten Blutkörperchen mit NH 4 Cl für 10 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Bereiten Sie einzelne Zellsuspensionen in 2 ml PBS. </li><li> Teilen Sie jede Zellsuspension in zwei Teile. Gönnen 1 Zelle Fahrwerk mit 50 &amp;mgr; PD150606 für 20-30 Minuten bei Raumtemperatur im Dunkeln. </li><li> Gehen Sie wie oben für die Calpain Assay in fixierten Zellen (Schritte 1-6) </li><li> Den Überstand aspirieren. Waschen Sie die Zellen in 500μL PBS. Den Überstand aspirieren. </li><li> Resuspendieren der Zellen in 200 ul Färbepuffer mit 2% BSA. Inkubieren für 15 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Bereiten Sie den primären Antikörper (FITC-anti-Maus CD117). Der Antikörper sollte bei einer Verdünnung von 1:200 in Färbepuffer verwendet werden. Sicherstellen, dass die Antikörper im Dunkeln gehalten wird. </li><li> Add 200 ul primären Antikörpers zu den Zellen. Inkubieren für 30 Minuten bei Raumtemperatur im Dunkeln. </li><li> Fügen Sie 400μL PBS, um die Lautstärke für die Durchflusszytometrie erhöhen. Legen Sie die Zellen auf Eis und halten in der Dunkelheit. </li><li> Gehen Sie wie in Acquire Daten für fixierte Zellen beschrieben. Add FITC, um die Parameter und verfügen über ein Histogramm für FITC auf dem Arbeitsblatt. </li></ol> Analyse und repräsentative Ergebnisse <ol><li> Analysieren von Daten mit FlowJo (Treestar). Tor an lebenden Zellen auf Vorwärts-und Seitwärts-Streulicht-Profil (Abb. 1a) basiert. Bestimmen Sie die mittlere Fluoreszenz für Indo-Blue aus der lebensfähigen Zellen Tor (Abb. 1b). </li><li> a) Für die gemischten Zellpopulation <ul><li> Verwendung FITC Fluoreszenz-Histogramme und Dot-Plots der 32Dkit Bevölkerung identifizieren </li><li> Bestimmen Sie die mittlere Fluoreszenz für Indo-Blue der 32Dkit Bevölkerung </li></ul></li><li> Verwenden Sie Microsoft Excel, um Graphen die mittlere Fluoreszenz (Abbildung 2a). Berechnen Sie die Steigung der Geraden zwischen 5 und 10 Minuten. Graph die Steigung als Balkendiagramm an Calpain-Aktivität in den Zellen zu bestimmen (Abbildung 2b). </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2050/2050fig1a.jpg" alt="Abbildung 1a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1a"> Abbildung 1a. Bestimmung lebenden Zellen auf Vorwärts-und Seitwärts-Streulicht-Profil. <img src="/files/ftp_upload/2050/2050fig1b.jpg" alt="Abbildung 1b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1b"> Abbildung 1b. Mittlere Fluoreszenz Wechsler 10 Minuten Zeit, natürlich. <img src="/files/ftp_upload/2050/2050fig2a.jpg" alt="Abbildung 2a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2a"> Abbildung 2a. Representative Graph des durchschnittlichen Fluoreszenz. <img src="/files/ftp_upload/2050/2050fig2b.jpg" alt="Abbildung 2b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2b"> Abbildung 2b. Calpain-Aktivität in 32Dkit Zellen mit Inhibitoren.

<ol><li>Goll, D. E., Thompson, V. F., Li, H., Wei, W., Cong, J. The Calpain System. Physiol. Rev. 83, 731-801 (2003).</li>
<li>Niapour, M., Berger, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+Cytometric+Measurement+of+Calpain+Activity+in+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Flow Cytometric Measurement of Calpain Activity in Living Cells.</a> Cytometry A. 71A, 475-485 (2007).</li>
<li>Leloup, L., Daury, L., Mazéres, G., Cottin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Involvement+of+the+ERK%2FMAP+kinase+signalling+pathway+in+milli-calpain+activation+and+myogenic+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+Journal+of+Biochemistry+and+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Involvement of the ERK/MAP kinase signalling pathway in milli-calpain activation and myogenic cell migration.</a> The International Journal of Biochemistry and Cell Biology. 39, 1177-1189 (2007).</li>
</ol>

Die Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen 32Dkit hat in diesem Video-Protokoll bestimmt. Die Behandlung der Zelllinie mit dem Calpain-Inhibitor PD150606 führte zu einer vollständigen Hemmung von Calpain-Aktivität in den Zellen. Darüber hinaus führte die Behandlung mit dem Inhibitor PD98059 MEK1 in eine vollständige Hemmung von Calpain-Aktivität in den Zellen. ERK ist ein wichtiger Aktivator von Calpain-2 3. Diese Ergebnisse legen nahe, dass Calpain-2-Aktivität überwiegt in der 32Dkit Zellen ist. ...

<table><tbody><tr><td>PBS BOC-LM-CMAC 4 % Paraformaldehyd</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>&lt;br/&gt;&lt;br/&gt;4 g Paraformaldehyd in 100 mL PBS lösen. Probe im Abzug unter Rühren erhitzen, bis sie klar ist.&lt;br/&gt;Abkühlen lassen, dann bei 4 °C lagern&amp;#x00B0;C</td></tr><tr><td>PD150606</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Verwenden Sie frisch rekonstituiertes PD150606 für eine maximale Calpain-Hemmung.</td></tr><tr><td>PD98059</td><td>Cell Signaling Technology</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AlignFlow, AlignFlow plus fluoreszierende Kügelchen FACS-Röhrchen</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LSR II</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>&lt;br/&gt;Das Überstandmedium von WEHI-3-Zellen wird in diesen Experimenten als Quelle für IL-3 verwendet. Jede Überstandsammlung von WEHI-3 wird titriert, um die optimale Konzentration für das Wachstum von 32Dkit-Zellen zu bestimmen. </td></tr></tbody></table>

mess-calpain aktivität in fixierten und lebenden zellen mittels durchflusszytometrie

Measuring Calpain Activity in Fixed and Living Cells by Flow Cytometry

Calpaine sind allgegenwärtig intrazellulären Calcium-sensitiven, neutral Cystein-Proteasen<sup&gt; 1</sup&gt;. Calpaine spielen eine entscheidende Rolle in vielen physiologischen Prozessen, einschließlich der Signalisierung, Zytoskelett-Umbau, Regulation der Genexpression, Apoptose und Zellzyklus-Progression<sup&gt; 1</sup&gt;. Calpaine haben in vielen Pathologien wie Muskeldystrophien, Krebs, Diabetes, Alzheimer und Multipler Sklerose beteiligt<sup&gt; 1</sup&gt;. Calpain Regelung ist komplex und noch nicht vollständig geklärt. mRNA-und Proteinebene korrelieren schlecht mit der Tätigkeit, Beschränkung der Verwendung von Gen-oder Protein-Expression Techniken Calpain-Aktivität zu messen. Dieses Video-Protokoll Details ein durchflusszytometrischen Assays in unserem Labor zur Messung von Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen entwickelt. Diese Methode verwendet das fluoreszierende Substrat BOC-LM-CMAC, die speziell durch Calpain gespalten, um Calpain-Aktivität zu messen.<sup&gt; 2</sup&gt; In diesem Video wird Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Maus 32Dkit Leukämiezellen, allein oder als Teil eines Splenozyten Bevölkerung gemessen mit einem LSRII (BD Bioscience). 32Dkit Zellen gezeigt zu haben, erhöhte Aktivität in den normalen Splenozyten verglichen.

Dieser Artikel wird detailliert die Verfahren zur Messung der Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen mittels Durchflusszytometrie.

Mess-Calpain Aktivität in fixierten und lebenden Zellen mittels Durchflusszytometrie

Calpaine sind ubiquitäre intrazelluläre, calciumsensitive, neutrale Cysteinproteasen 1. Calpaine spielen eine entscheidende Rolle in vielen physiologischen Prozessen, ...

Calpainen sind ubiquitäre, intrazelluläre Kalzium-sensitive neutrale Cysteinproteasen, die entscheidende Rollen in zahlreichen physiologischen Prozessen spielen, darunter Signaltransduktion, Umbau des Zytoskeletts, Regulation der Genexpression, Apoptose und Zellzyklusprogression. Um die Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen zu messen, wird das fluoreszierende Substrat BUC, LMC MAC hinzugefügt. Buc LMC MAC wird spezifisch durch Calpain gespalten, was zu einer Zunahme der Fluoreszenz führt. Die Änderung der Fluoreszenz wird mittels Durchflusszytometrie überwacht, wodurch eine erhöhte Calpain-Aktivität in 30 2D Kit-Zellen im Vergleich zu normalen Zellen nachgewiesen wird.Hallo, ich bin Christina Farr aus dem Labor von Dr. Stewart Berger an der Universität von Toronto, Abteilung für Immunologie und das University Health Network. Heute zeige ich Ihnen, wie man die Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen mithilfe eines auf Durchflusszytometrie basierenden Assays messen kann. In unserem Labor verwenden wir diesen Assay, um die Calpain-Aktivität in Leukämie- und Lymphomzellen zu untersuchen.Beginnen wir nun. Bevor Sie mit den Experimenten starten, bereiten Sie die b

measuring-calpain-activity-in-fixed-and-living-cells-by-flow-cytometry

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Video zeigt die Markierung neuronaler Zellen mit Antikörpern für mitochondriale Atmungskettenkomplexe, mitochondriale DNA-assoziierte Proteine und mitochondriale äußere Membranproteine, gefolgt von einer Durchflusszytometrie zur Quantifizierung ihrer Spiegel.

Messung mehrerer mitochondrialer Parameter in Neuronen mittels Durchflusszytometrie

Mess-intrazellulären Ca<sup&gt; 2 +</sup&gt; Änderungen in menschlichen Spermien mit vier Techniken: Konventionelle Fluorometrie, Stopped Flußfluorometrie, Durchflusszytometrie und Single Cell Imaging

Dieses Protokoll beschreibt einen sensitiven, zellbasierten Zytotoxizitätstest. Durch die Aufzählung der Abnahme der Häufigkeit von lebenden CD4+ T-Zielzellen in Gegenwart einer zunehmenden Anzahl von Effektor-CD8+ T-Zellen ermöglicht dieser Assay die direkte Beurteilung der zytolytischen Aktivität von antigenspezifischen CD8+ T-Zellen.

Zellbasierter Durchflusszytometrie-Assay zur Messung der zytotoxischen Aktivität

Calcium ist in vielen physiologischen und pathophysiologischen Signalwegen beteiligt sind. Live Cell Imaging erfordert spezielle Geräte und kann zeitaufwendig sein. Eine schnelle, einfache Methode mit einem Durchflusszytometer, um relative Veränderungen in zytosolischen Kalzium in adhärenten Epithelzellen in Suspension gebracht bestimmen optimiert.

Cytosolischen Calcium Messungen in Nierenepithelzellen mittels Durchflusszytometrie

Ererbten Arrhythmien werden häufig durch Mutationen verursacht, die die Oberfläche Lieferung eines oder mehrerer Ionenkanäle verändern. Hier passen wir die Durchflusszytometrie-Assays eine Quantifizierung der relativen Gesamt und Zelloberflächenproteinexpression von rekombinanten Ionenkanäle in tsa-201-Zellen exprimiert zu liefern.

Bestimmung der relativen Zelloberfläche und Total Expression rekombinanter Ionenkanäle Mit Flow Cytometry

Mitophagy, den selektiven Abbau von Mitochondrien, hat im mitochondrialen Homöostase in Verbindung gebracht und ist in den verschiedenen menschlichen Krankheiten dereguliert. Bequeme experimentelle Methoden zur Messung Mitophagy Aktivität sind jedoch sehr beschränkt. Hier bieten wir eine sensible Test zur Messung der Mitophagy Tätigkeit mit Durchflusszytometrie.

Empfindliche Messung des Mitophagy von Flow Cytometry Verwendung der pH-abhängigen fluoreszierende Reporter Mt-Otamegane

Bereitstellung von einzelligen Empfindlichkeit, eignet sich in Echtzeit Durchflusszytometrie einzigartig, multimodale Rezeptor Funktionen von lebenden Kulturen zu quantifizieren. Mit Erwachsenen neurale Vorläuferzellen, wurde die P2X7-Rezeptor-Funktion über Kalzium Zustrom von Kalzium Indikatorfarbstoff transmembranen Porenbildung durch Interkalation Bromid Aufnahme und Verwendung von fluoreszierenden Latex-Kügelchen Phagozytose erkannt bewertet.

Echtzeit Live-Zelle Durchflusszytometrie, Calcium Zustrom, Porenbildung und Phagozytose durch P2X7-Rezeptoren im Erwachsenen neurale Vorläuferzellen zu untersuchen

In diesem Manuskript wird ein Protokoll zur FACS-basierten Messung der Transkriptionsaktivität des BK-Polyomavirus unter Verwendung von HEK293T-Zellen vorgestellt, die mit einem bidirektionalen Reporter-Plasmid transfiziert werden, das tdTomato und eGFP exzessiiert. Diese Methode ermöglicht es ferner, den Einfluss neuartiger Verbindungen auf die virale Transkription quantitativ zu bestimmen.

Messung der BK-Polyomavirus Non-Coding Control Region Driven Transcriptional Activity Via Flow Cytometry

Hier beschreiben wir eine Reihe von Methoden zur Charakterisierung der Interaktion von Proteinen mit Membranen von Zellen oder Mikrovesikeln.

Analyse der Wechselwirkung fluoreszierend markierter Proteine mit künstlichen Phospholipid-Mikrovesikeln mittels quantitativer Durchflusszytometrie

Das vorliegende Protokoll beschreibt zwei Methoden zur Messung der Caspase-Aktivität durch ein fluorogenes Substrat unter Verwendung von Durchflusszytometrie oder einem Spektrofluorometer.

Messung der Caspase-Aktivität mit einem fluorometrischen Assay oder einer Durchflusszytometrie

Hier stellen wir ein Protokoll zur Quantifizierung des Post-Stress-Überlebens in Hefeproben vor. Der Assay verwendet zwei Fluoreszenzfarbstoffe, SYTO 9 und Propidiumiodid (PI), um die Integrität der Plasmamembran zu quantifizieren. Es verwendet Durchflusszytometrie, um quantitative und reproduzierbare Schätzungen der lebenden, toten und geschädigten Zellfraktionen für Proben mit postoxidativem Stress zu liefern.

Ein optimierter LIVE/DEAD-Assay in Verbindung mit Durchflusszytometrie zur Quantifizierung des Post-Stress-Überlebens in Hefezellen

Lernen Sie die Durchflusszytometrie zur Messung der Calpain-Aktivität in fixierten und lebenden Zellen. Diese Methode nutzt fluoreszente Substrate und ermöglicht die Untersuchung von Proteasen in Leukämie- und Lymphomzellen.

Mess-Calpain Aktivität in fixierten und lebenden Zellen mittels Durchflusszytometrie

Weitere Videos entdecken