Name: Targeting von Deep Brain Strukturen mit Mikroinjektionen für die Lieferung von Drogen, virale Vektoren oder Zelltransplantaten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-01T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min
Description: Lernen Sie präzise Mikroinjektionen in tiefe Hirnstrukturen mit Glaskapillarnadeln mit 50-µm-Lumen. Diese Methode minimiert Hirnschäden und ermöglicht gezielte Applikation von Arzneimitteln, viralen Vektoren oder Zelltransplantaten in Nagetiermodellen.

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OG-P wurde durch CONACyT s zu gewähren (CB-2008 bis 101476) und FRABA (686/10) unterstützt. AQ-H durch das National Institute of Health, der Howard Hughes Medical Institute, der Robert Wood Johnson Foundation und der Maryland Stem Cell Foundation unterstützt.

<ol><li> Machen Glasnadeln bevor Maus-Chirurgie: <ol class="lalpha"><li> Legen Sie die Glaskapillare in einer Mikropipette Abzieher. </li><li> Erhitzen Sie die Mitte des Glasrohres mit dem Glasrohr in der lokalisierten Bereich zu erweichen. </li><li> Stretch das Glasrohr entlang seiner Längsachse durch eine anfängliche Abstand ausreicht, um eine Reduzierung der Durchmesser der Glasröhre in der lokalisierten Bereich verursachen. </li><li> Halten Dehnung der Glasröhre, bis er bricht. Auf diese Weise sind zwei identische Single Barrel Nadeln erhalten. </li></ol></li><li> Setzen Sie das Glas Nadel im microforge. Ein Winkel von 30 ° reicht zur Abschrägung der Spitze. </li><li> Überprüfen Sie unter dem Mikroskop, dass jeder Nadel die richtige innere Durchmesser hat. Für die meisten der hydrophilen Medikamenten eine 30-50 um Innendurchmesser ist ideal (Abbildung 1). </li><li> Füllen Sie die Nadel mit Mineralöl von der breitesten Ende Glasnadel. Lassen Sie das Mineralöl (MSDS, Cat. M7700) tritt durch Kapillarwirkung, bis es ~ 50% der Länge der Kapillare erreicht. Put Hochvakuum-Fett (Dow Corning, Cat. 05054-AB) um den Kolben, um die weiteste Ende der Nadel zu versiegeln. </li><li> Legen Sie den Kolben durch den breitesten Ende der Nadel und drücken Sie vorsichtig Mineralöl, bis ein kleiner Tropfen Öl gesehen geht aus der Spitze des Glases Nadel. </li><li> Sichern Sie die Glasnadel in der Inhaber der Mikroinjektor. </li><li> Anesthetize der Maus mit 2,5% Avertin (2,2,2-Tribromethanol + tert-Amylalkohol, 1:1 w / v). Dosis 25-30μL pro Gramm intraperitoneal. </li><li> Legen Sie eine Heizung Pad auf der stereotaktischen Gerät Tier seine Körpertemperatur auf 37 ° C zu halten </li><li> Ort und sichern die Maus den Kopf in den stereotaktischen Gerät mit Ohr Bars und ein Zähnen Inhaber. </li><li> Reinigen Sie die Maus Kopf mit 0,1% Chlorhexidingluconat-Lösung, um 70% Ethanol und 0,1% Chlorhexidingluconat ein zweites Mal an. </li><li> Inzision der Haut mit einem Skalpell Nr. 15 von Maus-Ohren, die Lamba Schädel Linie. </li><li> Polnische den Schädel mit einem Wattestäbchen zu trocknen und ziehen Haut aus dem OP-Feld. </li><li> Verwenden Sie die Spitze des Glases Nadel an der Spitze des Bregma Naht Punkt. Dort haben Sie die Ausgangsposition der Injektor (die Koordinate "Null") gesetzt. </li><li> Stellen Sie den Punkt, indem Sie den "X" und "Y" Achse des stereotaktischen Gerät über den Schädel gebohrt werden. </li><li> Drill sehr vorsichtig Löcher an den ausgewählten koordinieren. Mikrobohrer und andere Werkzeuge aus Metall waren zuvor bei 250 ° C sterilisiert für 60 Sekunden mit einem trockenen Glasperlen Sterilisator (Cole Palmer, Cat. Nr. EW-10779-00). </li><li> Mit feinen Pinzette vorsichtig die tiefste Schicht des Knochens und brechen die duramatter Membran (Sie werden einige Rückenmarksflüssigkeit Austreten zu sehen). </li><li> Bestätigen Sie, dass die Nadel durch Bohrungen zu gehen. </li><li> Pipette 1 ul des Medikaments Sie injizieren und legte sie auf ein kleines Stück Parafilm. </li><li> Setzen Sie den Parafilm auf den Schädel. </li><li> Saugen bis das Medikament durch das Drehen der Mikroinjektor Rad, während Sie überprüfen unter dem Mikroskop, dass die Flüssigkeit wird bis in das Glas Nadel. </li><li> Entfernen Sie den Parafilm und re-set die Null zu koordinieren. </li><li> Bewegen Sie die Nadel auf die ausgewählten Koordinaten, auf der Halterung, bis die Spitze aus Glas Nadel sanft berühren der Hirnoberfläche und stellen Sie die "Z" zu koordinieren bei Null. </li><li> Führen Sie das Glas Nadel in das Gehirngewebe an ausgewählten Tiefe. </li><li> Spritzen Sie das Medikament langsam mit einer Geschwindigkeit von ca. 1 nl / sec. </li><li> Wenn das Begehren Volumen eingespritzt wird, lassen Sie das Medikament diffundieren in das Parenchym für 2 min. Dann fahren Sie mit der Nadel langsam und gleichmäßig zu entfernen. </li><li> Kleben Sie die OP-Wunde und entfernen Sie das Tier aus der stereotaktischen Gerät und setzte das Tier in einer vorgewärmten Käfig mit einem sauberen Bett zur Narkose Erholung. </li><li> Um die postoperative Analgesie alle Tiere erhielten 5 mg / kg subkutan Ketorolac jedem 12-Stunden für 24 h. </li></ol> Repräsentative Ergebnisse: Wenn nach diesem Protokoll ist eine sehr präzise Einspritzung erhalten und eine sehr enge Nadelbahn minimiert Hirn-Trauma. Als ein repräsentatives Ergebnis dieser Methode, injizierten wir Lysophosphatidylcholin (Lysolecithin) in das Corpus Callosum, dass Demyelinisierung der weißen Substanz Bahnen 1-4 produziert. Zur Minimierung der Hirnschädigung durch die Glasnadel produziert, injizierten wir nur 20 nl von Lysolecithin in das Corpus Callosum, sondern bei Bedarf höhere Volumina so viel wie 200 nl kann mit der gleichen Methode injiziert werden. Demyelinisierung wird durch die Abwesenheit von Myelin basisches Protein-Expression in der weißen Substanz (Abb. 2) nachgewiesen werden. <img src="/files/ftp_upload/2082/2082fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Ein Glas Nadel mit einem 50-Mikrometer Durchmesser. Abstand zwischen zwei kurzen Zeckenin der Skala repräsentiert ein 50-um Länge. <img src="/files/ftp_upload/2082/2082fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Lysolecithin Injektion in den Corpus Callosum. Demyelinisierung wird als nicht Myelin basisches Protein-Expression (gepunktete Fläche) dargestellt. Beachten Sie die geringe Größe der Glas-Stichkanal (Pfeile). Bar = 100 pm

<ol><li>Menn, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origin+of+oligodendrocytes+in+the+subventricular+zone+of+the+adult+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Origin of oligodendrocytes in the subventricular zone of the adult brain.</a> J Neurosci. 26, 7907-7918 (2006).</li>
<li>Gonzalez-Perez, O., Romero-Rodriguez, R., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+Growth+Factor+Induces+the+Progeny+of+Subventricular+Zone+Type+B+Cells+to+Migrate+and+Differentiate+into+Oligodendrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Epidermal Growth Factor Induces the Progeny of Subventricular Zone Type B Cells to Migrate and Differentiate into Oligodendrocytes.</a> Stem Cells. 27, 2032-2043 (2009).</li>
<li>Hall, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Some+aspects+of+remyelination+after+demyelination+produced+by+the+intraneural+injection+of+lysophosphatidyl+choline%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Some aspects of remyelination after demyelination produced by the intraneural injection of lysophosphatidyl choline.</a> J Cell Sci. 13, 461-477 (1973).</li>
<li>Webster, G. R., Thompson, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+on+the+presence+of+lysolecithin+in+nervous+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">Observations on the presence of lysolecithin in nervous tissues.</a> Biochim Biophys Acta. 63, 38-45 (1962).</li>
<li>Doetsch, F., Caille, I., Lim, D. A., García-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subventricular+Zone+Astrocytes+Are+Neural+Stem+Cells+in+the+Adult+mammalian+Brain%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Subventricular Zone Astrocytes Are Neural Stem Cells in the Adult mammalian Brain.</a> Cell. 97, 1-20 (1999).</li>
<li>Doetsch, F., Petreanu, L., Caille, I., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EGF+converts+transit-amplifying+neurogenic+precursors+in+the+adult+brain+into+multipotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">EGF converts transit-amplifying neurogenic precursors in the adult brain into multipotent stem cells.</a> Neuron. 36, 1021-1034 (2002).</li>
<li>Baraban, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+seizures+by+transplantation+of+cortical+GABAergic+interneuron+precursors+into+Kv1.1+mutant+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Reduction of seizures by transplantation of cortical GABAergic interneuron precursors into Kv1.1 mutant mice.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 15472-15477 (2009).</li>
<li>Richardson, R. M., Barbaro, N. M., Alvarez-Buylla, A., Baraban, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developing+cell+transplantation+for+temporal+lobe+epilepsy%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurg+Focus%22%5BJournal%5D)">Developing cell transplantation for temporal lobe epilepsy.</a> Neurosurg Focus. 24, E17-E17 (2008).</li>
<li>Alvarez-Dolado, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+inhibition+modified+by+embryonic+neural+precursors+grafted+into+the+postnatal+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cortical inhibition modified by embryonic neural precursors grafted into the postnatal brain.</a> J Neurosci. 26, 7380-7389 (2006).</li>
</ol>

Die Methode zeigte in diesem Video ist sehr nützlich für die meisten Medikamente oder viralen Vektoren in sehr genauen Orte in das Gehirn liefern. Einige der wichtigsten Vorteile dieser Technik sind die Zuverlässigkeit der Targeting-Punkt, die Richtigkeit der Injektionen und die geringe Größe der Hirnschädigung und Darm-Trakt Schaden 1, 2, 5, 6. Sobald die Technik ist standardisiert Bereich von mistargeting sollte 50 um oder weniger 1, 2. Zelltransplantate kann auch mit weiteren, 100-150 um 7-...

<table><tbody><tr><td>Kapillar-Glasmikropipette</td><td>Wiretrol I</td><td>5-000-1001</td><td></td></tr><tr><td>Mikropipetten-Ziehgerät</td><td>Kopf Instruments</td><td>Modell 730</td><td></td></tr><tr><td>Mikroschweißgerät</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>Modell 48000</td><td></td></tr><tr><td>Mineralöl</td><td>MSDS</td><td>M7700</td><td></td></tr><tr><td>Luftdichtes Vakuumfett</td><td>Dow Corning</td><td>05054-AB</td><td></td></tr><tr><td>Anästhetikum: 2,5 % Avertin</td><td></td><td></td><td>2,2,2-Tribrom&amp;#8211;ethanol + tert-Amylalkohol, 1:1 Gewicht/Volumen</td></tr><tr><td>Heizplatte</td><td>Mastex</td><td>Modell 900</td><td></td></tr><tr><td>Stereotaktisches Gerät</td><td>Kopf Instruments</td><td>Modell Kopf-900</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgisches Skalpellblatt Nr. 15</td><td>Medi-Cut</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikrobohrer</td><td>Ideal Micro Drill</td><td>67-1000</td><td></td></tr><tr><td>Feinzange</td><td>Fine Science Tools</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1-&amp;mu;L-Mikropipette</td><td>Rainin</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parafilm M.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chirurgisches Mikroskop</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td>Vasiorkop mit Contraves-System</td><td></td></tr><tr><td>Mikroinjektor</td><td>Narishige International</td><td>Modell MO-10</td><td></td></tr></tbody></table>

targeting von deep brain strukturen mit mikroinjektionen für die lieferung von drogen, virale vektoren oder zelltransplantaten

Targeting of Deep Brain Structures with Microinjections for Delivery of Drugs, Viral Vectors, or Cell Transplants

Mikroinjektionen in das Hirnparenchym sind wichtige Verfahren, die Drogen, virale Vektoren oder Zelltransplantaten liefern. Die Hirnverletzung, dass eine Injektionsnadel produziert während ihrer Flugbahn ist ein wichtiges Anliegen vor allem im Gehirn der Maus nicht nur für das Gehirn ist klein, aber manchmal auch mehrere Injektionen erforderlich sind. Wir zeigen hier eine Methode zur Glaskapillare Nadeln mit einem 50-Lumen um die erheblich reduziert die Hirnschäden und ermöglicht eine genaue Ausrichtung in die Nager Gehirn zu produzieren. Diese Methode erlaubt eine Lieferung von kleinen Mengen (20 bis 100 nl), reduziert Blutungen Risiken und minimiert passive Verbreitung von Drogen in das Hirnparenchym. Durch die Verwendung unterschiedlicher Größe der Kapillare Glasröhren oder dem Wechseln der Nadel Lumen, können verschiedene Arten von Substanzen und Zellen injiziert werden. Mikroinjektionen mit einer Glaskapillare eine erhebliche Verbesserung in Injektionstechniken und Tiefenhirnstimulation Targeting mit minimalen Kollateralschäden in kleinen Nagern.

In diesem Artikel zeigen wir eine Methode zur Glaskapillare Nadeln mit einem 50-um Lumen zu machen. Diese Technik reduziert die Schädigungen des Gehirns, minimiert passive Verbreitung von Drogen und ermöglicht eine genaue Ausrichtung in die Nager Gehirn.

Targeting von Deep Brain Strukturen mit Mikroinjektionen für die Lieferung von Drogen, virale Vektoren oder Zelltransplantaten

Mikroinjektionen in das Hirnparenchym sind wichtige Verfahren zur Applikation von Wirkstoffen, viralen Vektoren oder Zelltransplantaten. Die Hirnläsion, die eine ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, hochpräzise Mikroinjektionen in tiefliegende Hirnstrukturen vorzunehmen, um Medikamente, virale Vektoren oder Zelltransplantate zuzuführen. Dies wird erreicht, indem zunächst Glaskapillarnadeln mit einem 50-Mikrometer-Lumen hergestellt werden. Der zweite Schritt des Verfahrens besteht darin, die Nadel zu 50 % mit Mineralöl durch Kapillarwirkung zu füllen und den Kolben am breitesten Ende des Röhrchens einzuführen.Der dritte Schritt des Verfahrens besteht darin, die Nadel mit der Substanz oder Zellsuspension, die injiziert werden soll, zu befüllen. Der letzte Schritt des Verfahrens ist die Einführung der Nadelspitze und die Injektion der Substanz mit sehr geringer Flussrate in eine tiefliegende Hirnstruktur. Letztendlich können Ergebnisse erzielt werden, die eine sehr präzise Zielgerichtetheit von Substanzen im Gehirn durch Mikroinjektionen mit einem Glas-Kapillarrohr zeigen.Hallo, ich bin Oscar Gonzalez aus dem Labor für Neurowissenschaften der Fakultät für Psychologie an der Universität von Colima, Mexiko. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur Durchführung von Mikroinjektionen mit einer Glas-Kapillare, um Wirkstoffe in das Gehirn einer Maus zu verabreichen. Wir verwenden dieses Verfahren in unserem Labor, um adulte neuronale Stammzellen zu untersuchen.Beginnen wir also. Die Verwendung von Glas-Kapillarnadeln mit einem Lumen von 50 Mikrometern für Mikroinjektionen ins Gehirn reduziert das Hirngewebedes erheblich, minimiert die passive Diffusion von Wirkstoffen und ermöglicht eine präzise Zielgenauigkeit im Gehirn von Nagetieren. Bevor Mikroinjektionen durchgeführt werden können, müssen die Glasnadeln hergestellt werden.Platzieren Sie zunächst das Kapillarglasrohr in einer hochwiderständigen Elektrode eines Mikropipettenzuggeräts. Schalten Sie danach die Elektrode des Mikropipettenzuggeräts ein. Um den mittleren Bereich des Glasrohrs lokal aufzuweichen, dehnen Sie das Glasrohr entlang seiner Längsachse um einen Anfangsabstand von drei bis fünf Millimetern, was ausreicht, um eine Verringerung des Durchmessers des Glasrohrs in dem lokal begrenzten Bereich zu bewirken.Strecken Sie die Glasröhre weiter, bis sie bricht. Wiederholen Sie diese Schritte, um zwei identische Einzelkanalnadeln herzustellen. Legen Sie nun die Glasnadeln in eine Mikroschmiede.Ein Winkel von 30 Grad reicht aus, um die Spitze abzuschärfen. Legen Sie die Nadeln schließlich unter das Mikroskop und prüfen Sie, ob beide den korrekten Innendurchmesser aufweisen. Für die meisten hydrophilen Wirkstoffe ist ein Innendurchmesser von 30 bis 50 Mikrometer bei den hergestellten Nadeln ideal.Sehen wir uns an, wie man sie für Mikroinjektionen verwendet. Füllen Sie zunächst die hergestellte Nadel an ihrem breitesten Ende mit Mineralöl. Lassen Sie das Mineralöl durch Kapillarwirkung eindringen, bis es etwa 50 % der Länge des Kapillarrohrs erreicht hat.Tragen Sie Hochvakuumfett am breitesten Ende der Nadel auf und führen Sie den Kolben hindurch. Drücken Sie vorsichtig das Mineralöl, bis ein kleiner Tropfen aus der Spitze der Glasnadel austritt. Befestigen Sie nun die Nadel in der Halterung des Mikroinjektors und beginnen Sie mit der Vorbereitung des Tieres für die Injektion.Legen Sie zunächst eine Heizplatte an den stereotaktischen Tierhalter, um die Körpertemperatur des Tieres auf 37 Grad Celsius zu halten. Rasieren Sie den Kopf der anästhesierten Maus und bringen Sie sie anschließend in das stereotaktische Gerät ein, wobei Sie sie sicher befestigen. Verwenden Sie Ohrstifte und einen Zahnhalter und führen Sie mit einem chirurgischen Skalpell einen Hautschnitt von den Ohren bis zur Lambda-Schädelnaht durch.Polieren Sie den Schädel mit einem Wattestäbchen, um ihn zu trocknen, und ziehen Sie die Haut aus dem Operationsfeld heraus. Verwenden Sie anschließend die Spitze der Glasnadel, um auf den Scheitelpunkt der bgma-Naht zu zeigen, und legen Sie dort die anfängliche Injektionsposition fest. Legen Sie nun den Punkt am Schädel fest, der gebohrt werden soll, indem Sie die X- und Y-Achse des stereotaktischen Geräts über den Schädel bewegen.Bohren Sie mit einem Forschungsmikrobohrer vorsichtig Löcher an den ausgewählten Koordinaten und verwenden Sie dabei feine Pinzetten. Entfernen Sie vorsichtig die tiefste Knochenlage und durchtrennen Sie die Dura-mater. Sie werden sehen, wie etwas zerebrospinale Flüssigkeit austritt.Um zu überprüfen, ob die Nadel durch die gebohrten Löcher passt, senken Sie die Glasnadel langsam mithilfe der Z-Achse des stereotaktischen Geräts ab. Pipettieren Sie nun einen Mikroliter des zu injizierenden Wirkstoffs und geben Sie ihn auf ein kleines Stück Parfum. Legen Sie das Parfum auf den Schädel. Saugen Sie die Substanz auf, indem Sie das Mikroinjektorrad drehen, während Sie durch das Mikroskop überprüfen, ob die Flüssigkeit in die Glasnadel aufsteigt. Entfernen Sie die Parafolie und setzen Sie die Null-Koordinate zurück. Bewegen Sie nun die Nadel zu den ausgewählten Koordinaten und senken Sie den Halter ab, bis die Spitze der Glasnadel sanft die Gehirnoberfläche berührt, und stellen Sie die Z-Koordinate auf null ein.Führen Sie die Glasnadel in das Gehirnparenchym in der gewünschten Tiefe ein. Injizieren Sie das Medikament langsam mit einer Rate von etwa einem Nanoliter pro Sekunde. Sobald das gewünschte Volumen injiziert ist, lassen Sie das Medikament zwei Minuten lang in das Parenchym diffundieren und ziehen Sie die Nadel anschließend gleichmäßig und langsam zurück.Verkleben Sie schließlich die chirurgische Wunde und nehmen Sie das Tier aus dem stereotaktischen Gerät. Stellen Sie das Tier in einen vorgewärmten Käfig zur Erholung von der Anästhesie. Nun zeigen wir einige Ergebnisse der Mikroinjektion.Lysophosphatidylcholin oder Lyin wurde in das Corpus callosum injiziert, wodurch eine Demyelinisierung der weißen Faserverbindungen hervorgerufen wird, um die durch die Glasnadel verursachten Hirnverletzungen zu minimieren. Es wurden lediglich 20 µL Lyin injiziert. Die Demyelinisierung zeigt sich durch das Fehlen der Expression des myelinenbasischen Proteins in den Bahnen der weißen Substanz; eine sehr präzise Injektion wird erreicht, und eine sehr dünne Nadelbahn minimiert die Hirnschädigung.Wir haben Ihnen gerade gezeigt, wie man Glasspritzen herstellt, um Mikroinjektionen in tiefliegende Hirnstrukturen durchzuführen. Bei dieser Prozedur ist es wichtig, daran zu denken, dass sämtliche Geräte und Materialien bereitliegen müssen, um sie im Operationssaal verwenden zu können. Das war's.Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

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Quelle: Poland, R. et al. Mikroinjektion des Gehirns von Nagetieren zur Untersuchung molekularer Substrate motivierten Verhaltens. J. Vis. Exp. (2015)In diesem Video wird ein wassergefüllter Mikroinjektionsaufbau, bestehend aus einer Spritze und einem Mikroinjektorschlauch, für eine präzise Wirkstoffabgabe verwendet. Eine Ratte mit einer präimplantierten Führungskanüle wird einer gezielten Mikroinjektion im Gehirn unterzogen, die eine genaue Verabreichung von Therapeutika bei wachen Tieren mit...

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