Name: Study Gliazellen Heterogenität Einfluss auf Axon Wachstum Mit einer neuen Methode Cokultur (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-09-06T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 19 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie mit einer neuen Kokulturmethode den Einfluss heterogener Gliazellen auf das Axonwachstum untersuchen. Rattenkortex-Gliazellen werden mit dorsalen Wurzelganglienneuronen kultiviert, um neuronale Adhäsion und Neuritenwachstum zu analysieren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Diese Studie wurde von FMMU neue Erkenntnis Stiftung und teilweise NIH finanziell unterstützt.

1. Glia Cell Culture Gliazellen können aus verschiedenen Regionen des zentralen Nervensystems gezüchtet werden. Der gesamte Prozess ist in Bearbeitung Abbildung dargestellt. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111process.jpg" alt="Prozess 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Prozess 1"> Tag 1 Coating Kultur Platte und Deckgläser <ol><li> Dry sterilisiert Glas Mikroskop runde Deckgläser in einem Autoklaven. </li><li> Platte der sterilisierten Deckgläschen in sterilisierte 24-well Platten. </li><li> Bestreichen Sie die Deckgläser mit Poly-Lysin und inkubieren für 2 Stunden unter root Temperatur. </li><li> Coat 6-well-Platten in der gleichen Weise wie in Schritt 3. </li><li> Waschen Sie die Deckgläser und 6-Loch-Kulturplatte zweimal mit destilliertem Wasser ab und trocknen in Kultur Kapuze. </li><li> Geben Sie 200 ul DMEM Medium (mit 10% FBS) in jedes Well in 24-Well-Platte und 2 ml in jedes Well in 6-Well-Platte und setzte sie in Inkubator unter 37 Grad mit 5% CO 2 </li></ol> Tag 2 Isolating Kortex und Gliazellen Kultur <ol><li> Sterilisieren Sie die positive flow Dissektion Kapuze. </li><li> Schalten Sie UV-Licht für 20 min. </li><li> Spray alle Oberflächen mit 70% Ethanol und warten Sie 15 min vor dem Gebrauch. </li><li> Wechsel angespannt: Anesthetize Rattenjungen (P2-P6) durch Hypothermie und enthaupten an der Basis der framen magnum mit Betriebssystem Schere. </li><li> Öffnen der Schädeldecke entlang der Sagittalnaht mit einem Iris-Schere und ziehen Sie den Schädel. </li><li> Entfernen Sie das Vorderhirn und steckte sie in ein gekühltes L15 Medium unter Stereomikroskop, sorgfältig reinigen Sie die Dura und Pia Membran mit Blutgefäßen, isolieren die Hirnrinde und waschen mehrmals mit L15-Medium. </li><li> Schneiden Sie die Hirnrinde in kleine Stücke mit mikrochirurgischen Schere. </li><li> Add 0,125% Trypsin-EDTA mit L15 Medium in Cortex Stücke und inkubieren vorbereitet in 37 Grad für 15 min. </li><li> Transfer-Gewebe-Blöcke in 20 mL DMEM-Medium mit 20% FBS in 50ml Tube, fügen DNase-Stammlösung zu einer Endkonzentration 10ug/mL absaugen Gewebe Lösung nach oben und unten für 20-mal mit dem Feuer aus poliertem Glas Pasteure Pipette, sammeln die einzelnen Zellen Suspension. </li><li> Waschen Sie die Zellsuspension einmal mit DMEM-Medium, resuspendieren Zellen in DMEM mit 10% FBS, count-Zellen unter dem Mikroskop mit einer Zählkammer, Samenzellen zu 5000-10000/cm 2. Pflegen Sie Zellen in einer 37 Grad 5% Inkubator, ändern die Hälfte des Mediums 2 mal pro Woche. </li></ol> 2. Spinalganglien Neuronen Isolation, Kultur und Reinigung Tag 1 Bereiten Kultur Werkstoff <ol><li> Bestreichen Sie die sterilisierten Deckgläschen mit Poly-Lysin, waschen Deckgläser zweimal mit destillieren Wasser und der Luft trocknen, steckte sie in 24-Well-Platten. </li><li> Add 100 &amp;mgr; Neurobasal Medium mit 2% B27 und 2.5S NGF (50 ng / mL), legte Platte in 37 Grad 5% CO 2. </li></ol> Tag 2 Isolate DRGs aus Embryonen <ol><li> Sterilisiert die Abzugshaube in der gleichen Weise wie Gliazellen Kultur. </li><li> Euthanize eine schwangere Ratte (E15) von Überdosierung mit CO 2, sterilisiert Bauch von 70% Ethanol, wurden Embryonen aus der Gebärmutter isoliert und in gekühlten L15 Medium. </li><li> Isolieren Rückenmark mit angeschlossenem Spinalganglien unter Stereomikroskop und Transfer zum 35mm Gerichte mit gekühltem L15 Medium. </li><li> Sammeln Sie einzelne Zellsuspension und waschen einmal mit NBF Medium (Neurobasal Medium mit 2% B27 und 2.5S NGF (50 ng / mL)). </li></ol> Tag 3 Purify DRG-Neuronen <ol><li> 18h-24h nach Neuron Aussaat, fügen Sie eine 1 mM konzentriert FUDR Stammlösung auf das Neuron Kultur bis zu einer Endkonzentration von 20 uM und ein Endvolumen von 200 ul. </li><li> 72h später ersetzen die Hälfte des Mediums mit Neurobasal Medium mit 2% B27 und 2.5S NGF (50ng/mL) ohne FUDR. Danach wechseln das Medium jeden zweiten Tag. </li></ol> 3. Cokultur DRG-Neuronen mit Gliazellen <ol><li> Wenn Gliazellen Kultur Konfluenz (ca. 20 Tage nach der Aussaat) erreichten, waren sie bereit für Kokultur mit Neuronen. </li><li> 24 Stunden vor der Zugabe des gereinigten Neuronen wurden Gliazellen mittel-bis Neurobasal Medium mit 2% B27 und 2.5S NGF (50 ng / mL) geändert. </li><li> Gereinigtes Neuronen aus Kultur-Wells wurden gesammelt, wurden einzelne Zellen durch mechanische, die durch Feuer poliert Pasteure Pipette erhalten. </li><li> Nach Auszählung der Zahl, wurden Neuronen bei 500/cm 2 auf konfluenten Gliazellen in Neurobasal Medium mit 2% B27 und 2.5S NGF (50ng/mL) ausgesät. </li><li> Neurons Haftung und Neuritenwachstum auf Gliazellen konnte aufgezeichnet und analysiert werden zu verschiedenen Zeitpunkten durch Bildanalyse-Software und Immunzytochemie mit Zelltyp spezifischen Antikörpern. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse <ol><li> Gliazelle Kultur: Nach dem Impfen wird Gliazellen konfluieren rund 20 Tage. Unter Phasenkontrast Mikroskopopa, es war leicht zu erkennen, dass verschiedene morphologische Gliazellen Subpopulationen unterschiedliche Wachstumsmuster Unterkonstruktionen gebildet und die GFAP positive Astrozyten einen Anteil von mehr als 90%, wie durch immuocytochemisty Technik (Bild 1, Bild 2) gezeigt. </li><li> DRG-Neuronen Kultur: In unserer Methode, nach 72 Stunden FUDR Behandlung, die Reinheit des DRG-Neuronen wird so hoch wie 99% innerhalb von 6 Tagen, zeigte DRG-Neuronen ihrer einzigartigen Morphologie und mit hoher Dichte Neuritenwachstum (Abbildung 3, Abbildung 4). </li><li> Gliazelle und Neuronen Kokultur: DRG-Neuronen Haftung und Neuritenwachstum aufgetreten leicht auf Gliazellen innerhalb von 4 Stunden nach der Aussaat, sorgfältige Beobachtungen haben gezeigt, dass Neuronen Haftung und Neuritenwachstum von Glia-Zell-Subpopulationen, die spezielle Wachstumsmuster Unterkonstruktionen entstanden beeinflusst, könnte dies leicht identifiziert werden unter Phasenkontrast-Mikroskop und durch Immunzytochemie (Abbildung 5, Abbildung 6). </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Morphologie der konfluenten Gliazellen. Kortikale Gliazellen auf Polylysin beschichteten Deckglas wurden ausplattiert und kultiviert für 20 Tage, beachten Sie die unterschiedlichen Wachstumsmuster von Gliazellen, Zellen auf der linken Seite in einer Strahlungsleistung Weise angeordnet. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Confluent Gliazellen durch sauren Gliafaserproteins (GFAP)-Antikörper markiert. Beachten Sie die abgestrahlte Anordnung von GFAP (rot) positive Zellen auf der rechten Seite. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Spinalganglien Neuronen wuchs in vitro ohne FUDR Behandlung. Kontaminierenden Zellen gebildet DRG-Neuronen "Hintergrund. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig4.jpg" alt="Abbildung 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 4"> Abbildung 4. Spinalganglien Neuronen wuchs in vitro nach FUDR Behandlung. Der Hintergrund kontaminierenden Zellen waren vollständig eliminiert. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig5.jpg" alt="Abbildung 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 5"> Abbildung 5. Spinalganglien Neuronen auf Glia-Zellen gezüchtet. Neurons Haftung und Neuritenwachstum wurden auf die abgestrahlte angeordneten Zellen gehemmt und begrenzt auf der rechten Seite Gliazellen. <img src="/files/ftp_upload/2111/2111fig6.jpg" alt="Abbildung 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 6"> Abbildung 6. Spinalganglien Neuronen wachsen auf Gliazellen durch Neurofilament Antikörper markiert. Die Neuriten (grün) auf die abgestrahlte angeordnet linken Seite Gliazellen waren gehemmt und begrenzt auf der rechten Seite, waren alle Gliazellen durch GFAP Antikörper (rot) gekennzeichnet.

<ol><li>Rossignol, S., Schwab, M., Schwartz, M., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+injury%3A+time+to+move%3F%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Spinal cord injury: time to move?</a> J Neurosci. 27 (44), 11782-11792 (2007).</li>
<li>Yiu, G., He, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glial+inhibition+of+CNS+axon+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Glial inhibition of CNS axon regeneration.</a> Nat Rev Neurosci. 7 (8), 617-627 (2006).</li>
<li>Barres, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mystery+and+magic+of+glia%3A+a+perspective+on+their+roles+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease.</a> Neuron. 60 (3), 430-440 (2008).</li>
<li>Matyash, V., Kettenmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+in+astrocyte+morphology+and+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res+Rev%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity in astrocyte morphology and physiology.</a> Brain Res Rev. , (2009).</li>
<li>Wanner, I. B., Deik, A., Torres, M., Rosendahl, A., Neary, J. T., Lemmon, V. P., Bixby, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+in+vitro+model+of+the+glial+scar+inhibits+axon+growth.+Glia%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">A new in vitro model of the glial scar inhibits axon growth. Glia.</a> 56 (15), 1691-1709 (2008).</li>
<li>Kuffler, D. P., Sosa, I. J., Reyes, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schwann+cell+chondroitin+sulfate+proteoglycan+inhibits+dorsal+root+ganglion+neuron+neurite+outgrowth+and+substrate+specificity+via+a+soma+and+not+a+growth+cone+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Schwann cell chondroitin sulfate proteoglycan inhibits dorsal root ganglion neuron neurite outgrowth and substrate specificity via a soma and not a growth cone mechanism.</a> J Neurosci Res. 87 (13), 2863-2871 (2009).</li>
<li>Kleitman, N., Wood, P. M., Bunge, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+culture+method+for+the+study+of+myelination%5BTitle%5D)+AND+%22Culturing+nerve+cells%22%5BJournal%5D)">Tissue culture method for the study of myelination.</a> Culturing nerve cells. , P559-P559 (1998).</li>
</ol>

Dieses Versuchsprotokoll wurde entwickelt, um zwei Ziele zu erreichen, um Gliazellen zu untersuchen, insbesondere den Einfluss der Heterogenität von Astrozyten auf die Neuronenadhäsion und das Neuritenwachstum. Das erste Ziel bestand darin, die Heterogenität der Astrozyten so weit wie möglich zu erhalten. In diesem Experiment wurde eine konfluente Gliazellkultur, die Astrozyten anreicherte, als gemischte Primärkultur ohne chemische Behandlung und enzymatische Vermehrung verwendet, da diese das Zellmaterial weiter schädig...

<table><tbody><tr><td>DMEM (hoher Glukosegehalt)</td><td>Invitrogen</td><td>10313-039</td><td></td></tr><tr><td>L15-Medium</td><td>Invitrogen</td><td>11415-114</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Invitrogen</td><td>10437-077</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal-Medium</td><td>Invitrogen</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>Poly-Lysin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4832</td><td>Kulturgrad</td></tr><tr><td>NGF (2,5S)</td><td>Invitrogen</td><td>13257-019</td><td></td></tr><tr><td>B27-Zusatz</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>0,25 % Trypsin-EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>FUDR</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0503</td><td></td></tr><tr><td>Neurofilament-Antikörper</td><td>Abcam</td><td>ab24575</td><td></td></tr></tbody></table>

study gliazellen heterogenität einfluss auf axon wachstum mit einer neuen methode cokultur

Study Glial Cell Heterogeneity Influence on Axon Growth Using a New Coculture Method

In dem zentralen Nervensystem von Säugetieren, sind abgetrennte Axone nach einer Verletzung nicht in ihre ursprünglichen Ziele und funktionelle Wiederherstellung zu regenerieren ist sehr schlecht 1. Das Scheitern der Axonregeneration ist ein kombiniertes Ergebnis von mehreren Faktoren ab, einschließlich der feindlichen Gliazellen Umwelt, hemmende Myelin verwandten Molekülen und verminderte innere Neuron regenerative Kapazität 2. Astrozyten sind der vorherrschende Typ Gliazellen im zentralen Nervensystem und spielen eine wichtige Rolle bei der Axon-Funktionen unter Physiologie und Pathologie Bedingungen 3. Gegensatz zu den homologen Oligodendrozyten, Astrozyten sind eine heterogene Zellpopulation durch verschiedene Astrozyten Subpopulationen mit unterschiedlichen Morphologien und Genexpression 4 zusammen. Die funktionelle Bedeutung dieser Heterogenität, wie ihre Einflüsse auf die Axon-Wachstum, ist weitgehend unbekannt. Zur Untersuchung der Gliazellen, vor allem die Funktion der Astrozyten Heterogenität in Neuron Verhalten, haben wir eine neue Methode durch Co-Kultivierung hoch gereinigten Spinalganglien Neuronen mit Gliazellen aus der Ratte Cortex erhalten. Mit dieser Technik konnten wir den direkten Vergleich Neuron Haftung und Axon-Wachstum auf verschiedenen Astrozyten Subpopulationen unter den gleichen Bedingungen. In diesem Bericht geben wir die ausführliche Protokoll dieser Methode für Astrozyten Isolation und Kultur, Spinalganglien Neuronen Isolierung und Aufreinigung, und die Co-Kultur von DRG-Neuronen mit Astrozyten. Diese Methode könnte auch auf andere Hirnregionen erweitert werden, um zelluläre oder regional spezifische Wechselwirkung zwischen Neuronen und Gliazellen zu studieren.

In diesem Protokoll beschrieben wir eine neue Methode, um den Einfluss von Gliazellen Heterogenität auf Axon Wachstum mit einer Studie<em&gt; In-vitro-</em&gt; Co-Kultur-System. Rat kortikalen Gliazellen wurden bis zur Konfluenz kultiviert und kokultiviert mit hoch gereinigtem Ratten Spinalganglien Neuronen. Verschiedene Gliazellen Einfluss auf Neuronen Haftung und Axon-Wachstum wurde direkt in der gleichen Kultur verglichen. Diese Methode bietet eine neue Möglichkeit, direkt Studie der Gliazellen Heterogenität Einfluss auf Neuron Adhäsion und Wachstum der Axone.

Study Gliazellen Heterogenität Einfluss auf Axon Wachstum Mit einer neuen Methode Cokultur

Im zentralen Nervensystem aller Säugetiere sind durchtrennte Axone nach einer Verletzung nicht in der Lage, zu ihren ursprünglichen Zielstrukturen zu regenerieren, und die funktionelle Erholung ist ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, den Einfluss der glialen Heterogenität auf das Wachstum von DRG-Axonen und die Zellentladung zu untersuchen. Dies wird erreicht, indem zunächst Gliazellen aus dem Kortex neugeborener Ratten gewonnen werden. Der zweite Schritt des Verfahrens besteht darin, DRG-Neuronen aus Rattenembryonen zu kultivieren und zu reinigen.Der dritte Schritt des Verfahrens besteht darin, die gereinigten DRG-Neuronen auf die Gliazellen aufzubringen. Der letzte Schritt des Verfahrens ist die Beobachtung des Axonwachstums im Zellaxon sowie die Durchführung der Zellfärbung und der Quantifizierungsanalyse. Letztendlich können Ergebnisse erhalten werden.Diese Aufnahme zeigt, dass das Wachstum von DRG-Neuronen durch heterogene Gliazellen beeinflusst wird, wie Zeitrafferaufnahmen und immunfluoreszenzmikroskopische Analysen belegen. Hallo, ich komme aus dem Labor für Neuroimaging der Abteilung für Neurologie an der UCRA. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren, um den Einfluss glialer Zellen auf das Wachstum in einer neuartigen Kulturmethode zu untersuchen.In unserem Labor verwenden wir diese neue Methode, um die Interaktion zwischen Neuronen und den ggl-Zelle

study-glial-cell-heterogeneity-influence-on-axon-growth-using-new

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Wir entwickelten eine neuartige Multi-Kompartiment-Neuron Co-Kultur Mikrosystem-Plattform für in-vitro-ZNS-Axon-Glia-Interaktionen Forschung. Die Plattform ist in der Lage die Durchführung von bis zu sechs unabhängigen Experimenten parallel und wurde unter Verwendung eines neu entwickelten Makro / micro hybrid Herstellungsverfahren.

Ein Multi-Kompartiment-ZNS-Neuron-Glia-Co-Kultur mikrofluidischen Plattform

Diese Studie beschreibt die Verfahren für die Einrichtung einer neuartigen neuronalen Axon und (astro) Glia Co-Kultur-Plattform. Auf diese Co-Kultur-System wird Manipulation direkte Wechselwirkung zwischen einem einzelnen Axon (und einzigen Gliazelle) durchführbar ist, so dass mechanistischen Analyse des gegenseitigen Neuron zu glialen Signalisierung.

Imaging Analyse von Neuron zu Glia Interaktionen in Microfluidic Kultur Platform (MCP)-basierte Neuronale Axon und Glia Co-Kultur-System

Dieses Video zeigt eine Methode zur Etablierung einer indirekten Neuron-Astrozyten-Co-Kultur unter Verwendung eines kompartimentierten Ansatzes. In diesem Aufbau sind Neuronen und Astrozyten räumlich getrennt, teilen sich aber ein konditioniertes Medium. Neurotrophe Faktoren, die von Astrozyten freigesetzt werden, fördern die Differenzierung von Neuronen und die Bildung synaptischer Verbindungen, was auf Neuron-Glia-Interaktionen hindeutet.

Eine indirekte Neuron-Astrozyten-Co-Kulturtechnik zur Untersuchung von Neuron-Glia-Interaktionen

Dieses Video zeigt das Coculturing-Modell eines Explantats aus dem Spinalwurzelganglion und Schwann-Zellen. Unter Kokulturbedingungen fördert Ascorbinsäure die Differenzierung von Schwann-Zellen in myelinisierende Formen. Myelinisierende Schwann-Zellen umhüllen die Axone mehrmals, um eine Myelinscheide zu bilden, die für die Nervenfunktion unerlässlich ist.

Co-Kultivierung eines Explantats eines Spinalganglien-Explantats mit Schwann-Zellen für die Myelinisierung von Neuronen

Spinalganglien (DRG) sind Strukturen, die die sensorischen Neuronen des peripheren Nervensystems. Wenn distanziert, sie co-kultiviert mit SC-wie Fettgewebe gewonnene Stammzellen (ASC) sein kann, eine wertvolle Modell zur in-vitro-Nervenregeneration und Myelinisierung zu untersuchen, imitiert die in vivo-Umgebung an der Verletzungsstelle.

Dorsalwurzelganglien Neuronen und differenzierten Fettgewebe gewonnene Stammzellen: Eine<em&gt; In-vitro-</em&gt; Co-Kultur Modell zur Regeneration peripherer Nerven Studieren

Dieses Protokoll beschreibt die indirekte Neuron-Astrozyten Co-Kultur für compartmentalized Analyse von Neuron-Glia Interaktionen.

Die indirekte Neuron-Astrozyten Cokultur Assay: Ein<em&gt; In Vitro</em&gt; Für die detaillierte Untersuchung von Neuron-Glia Interaktionen Set-up

In diesem Protokoll wollen wir beschreiben eine reproduzierbare Methode für Kombination dissoziiert menschlicher pluripotenter Stammzellen abgeleitet Neuronen und Astrozyten gemeinsam in 3D Kugel Kokulturen, pflegen diese Kugeln in den frei schwimmenden Bedingungen und anschließend Messung der synaptischen Schaltung Aktivität der Kugeln mit Immunoanalysis und multielectrode Array-Aufnahmen.

Synaptische batteriegestützte Modellierung mit 3D Kokulturen von Astrozyten und Neuronen aus menschlicher pluripotenter Stammzellen

Hier präsentieren wir ein ex-vivo gemischtes monolayer Kultursystem zur Erforschung der Migration menschlicher Gliomzellen (hGC) in Echtzeit. Dieses Modell bietet die Möglichkeit, Wechselwirkungen zwischen hGCs und myelinierten und nicht myelinierten Axonen innerhalb einer abgeteilten Kammer zu beobachten.

Echtzeit-Überwachung der Migration menschlicher Gliom-Zell auf Dorsalwurzel Ganglion Axon-Oligodendrozyten-Ko-Kulturen

Hier präsentieren wir einen einfachen Ansatz mit spezifischen Kulturmedien, die die Etablierung von neuron- und astrozytenangereicherten Kulturen oder neuronglia-Kulturen aus dem embryonalen Kortex mit hoher Ausbeute und Reproduzierbarkeit ermöglichen.

Ein Zellkulturmodell zum Studium der Rolle von Neuron-Glia-Interaktionen in Ischämie

Wir präsentieren ein In-vitro-Modell zur Beurteilung der olfaktorischen Ensheathing Glia (OEG) neuroregenerativen Kapazität, nach neuronalen Verletzungen. Es basiert auf einer Kokultur von axotomisierten adulten retinalen Ganglion neuronen (RGN) auf OEG-Monolayer und anschließende Studie der axonalen Regeneration, durch die Analyse von RGN axonalen und somatodendritischen Markern.

Cokultur von Axotomized Rat Retinal Ganglion Neurons mit olfactory Ensheathing Glia, als In-Vitro-Modell der erwachsenen axonalen Regeneration

Hier präsentieren wir einen einfach zu bedienenden Co-Kultur-Assay zur Analyse der Glioblastom-Migration (GBM) an gemusterten Neuronen. Wir entwickelten ein Makro in der FiJi-Software zur einfachen Quantifizierung der GBM-Zellmigration auf Neuronen und beobachteten, dass Neuronen die invasive Kapazität von GBM-Zellen modifizieren.

Co-Kultur von Glioblastom-Stammzellen auf gemusterten Neuronen zur Untersuchung von Migration und zellulären Interaktionen

Erfahren Sie, wie Sie mit einer neuen Kokulturmethode den Einfluss heterogener Gliazellen auf das Axonwachstum untersuchen. Rattenkortex-Gliazellen werden mit dorsalen Wurzelganglienneuronen kultiviert, um neuronale Adhäsion und Neuritenwachstum zu analysieren.

Study Gliazellen Heterogenität Einfluss auf Axon Wachstum Mit einer neuen Methode Cokultur

Weitere Videos entdecken