Name: Bioassays zur Überwachung Insecticide Resistance (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-30T16:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 30 s
Description: Erfahren Sie, wie Bioassays zur Überwachung von Insektizidresistenz bei Schädlingen durchgeführt werden. Diese Methode ermöglicht die Bestimmung von LC50-Werten und die Bewertung der Wirksamkeit von Pestiziden.

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Wir möchten Cotton Incorporated Staat Support Program # 08-317MO, USDA / CSREES SR-IPM Stipendium 2009-34103-20018 und Landis International für die Finanzierung der Forschung im Zusammenhang mit dieser Publikation bedanken.

<ol><li>Yu, S. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYu%2C+SJ+%22The+Toxicology+and+Biochemistry+of+Insecticides%22">The Toxicology and Biochemistry of Insecticides</a>. , CRC Press Taylor & Francis Group. Boca Raton, Fl. (2008).</li>
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<li>Sivasupramaniam, S., Johnson, S., Watson, T. F., Osman, A. A., Jassim, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((glass-vial+technique+for+monitoring+tolerance+of+Bemisia+argentifolii+%28Homoptera%3A+Aleyrodidae%29+to+selected+insecticides+in+Arizona%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">glass-vial technique for monitoring tolerance of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) to selected insecticides in Arizona.</a> J. Econ. Entomol. 90, 66-74 (1997).</li>
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<li>Willrich, M. M., Leonard, B. R., Cook, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+and+field+evaluations+of+insecticide+toxicity+to+stink+bugs+%28Heteroptera+Pentatomidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Laboratory and field evaluations of insecticide toxicity to stink bugs (Heteroptera Pentatomidae).</a> J. Cotton Sci. 7, 156-163 (2003).</li>
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<li>Snodgrass, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glass-vial+bioassay+to+estimate+insecticide+resistance+in+adult+tarnished+plant+bugs%5BTitle%5D)+AND+%22Heteroptera%3A+Miridae%29.+J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Glass-vial bioassay to estimate insecticide resistance in adult tarnished plant bugs.</a> Heteroptera: Miridae). J. Econ. Entomol. 89, 1053-1059 (1996).</li>
<li>Snoddgrass, G. L., Scott, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+discriminating-dose+bioassay+for+detecting+pyrethroid+resistance+in+tarnished+plant+bug+%28+Heteroptera%3A+Miridae%29+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Southwest.+Entomol%22%5BJournal%5D)">A discriminating-dose bioassay for detecting pyrethroid resistance in tarnished plant bug ( Heteroptera: Miridae) populations.</a> Southwest. Entomol. 24, 301-307 (1999).</li>
<li>Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+vial+bioassay+of+insecticidal+toxicity+against+cotton+fleahopper%2C+Pseudatomoscelis+seriatus+%28Hemiptera%3A+Miridae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pest.+Sci.%22%5BJournal%5D)">Adult vial bioassay of insecticidal toxicity against cotton fleahopper, Pseudatomoscelis seriatus (Hemiptera: Miridae).</a> J. Pest. Sci.. 33, 261-265 (2008).</li>
<li>Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+toxicity+of+selected+insecticides+against+thrips+on+cotton+in+laboratory+bioassays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Evaluation of toxicity of selected insecticides against thrips on cotton in laboratory bioassays.</a> J. Cotton Sci. 12, 188-194 (2008).</li>
<li>Smith, T. P., Hammond, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+susceptibility+of+sweetpotato+weevil+%28Coleoptera%3A+Brentidae%29+to+selected+insecticides%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparative susceptibility of sweetpotato weevil (Coleoptera: Brentidae) to selected insecticides.</a> J. Econ. Entomol. 99, 2024-2029 (2006).</li>
<li>Kanga, L. H. B., Wall, M. L., Plapp, F. W. Jr, Gardiner, E. M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pyrethroid+resistance+in+field-collected+boll+weevils+from+southeast+Arkansas+in+1994%5BTitle%5D)+AND+%22Southwest.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Pyrethroid resistance in field-collected boll weevils from southeast Arkansas in 1994.</a> Southwest. Entomol. 20, 247-253 (1995).</li>
<li>Bayoun, I. M., Plapp, F. W. J. r, Gilstrap, F. E., Michels, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicity+of+selected+insecticides+to+Diuraphis+noxia+%28Homoptera%3A+Aphidiae%29+and+its+natural+enemies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Toxicity of selected insecticides to Diuraphis noxia (Homoptera: Aphidiae) and its natural enemies.</a> J. Econ. Entomol. 88, 1177-1185 (1995).</li>
<li>Smith, T. R., Cave, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pesticide+susceptibility+of+Cybocephalus+nipponoicus+and+Rhyzobius+Iophanthae+%28Coleoptera+Cybocephalidae%2C+Coccinellidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Fla.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Pesticide susceptibility of Cybocephalus nipponoicus and Rhyzobius Iophanthae (Coleoptera Cybocephalidae, Coccinellidae).</a> Fla. Entomol. 89, 502-507 (2006).</li>
<li>Sukontason, K., Olson, J. K., Hartberg, W. K., Duhrkopf, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organophosphate+and+pyrethroid+susceptibilities+of+Culex+salinarius+adults+from+Texas+and+New+Jersey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am.+Mosquito+Contr%22%5BJournal%5D)">Organophosphate and pyrethroid susceptibilities of Culex salinarius adults from Texas and New Jersey.</a> J Am. Mosquito Contr. 14, 477-480 (1998).</li>
<li>Kanga, L. H. B., Plapp, F. W. J. r, Wall, M. L., Elzen, G. W., Lopez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+for+resistance+to+organophosphorus%2C+carbamate%2C+and+pyrethroid+insecticides+in+the+oriental+fruit+moth+%28Lepidoptera%3A+Torticidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Entomol%22%5BJournal%5D)">Monitoring for resistance to organophosphorus, carbamate, and pyrethroid insecticides in the oriental fruit moth (Lepidoptera: Torticidae).</a> Canadian Entomol. , 131-441 (1999).</li>
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<li>Cook, D. R., Leonard, B. R., Gore, J., Temple, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+responses+of+bollworm%2C+Heliocoverpa+zea+%28Boddie%29%2C+and+tobacco+budworm%2C+Heliothis+virescens+%28F.%29%2C+to+indoxcarb+and+pyridalyl%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Agricul.+Urban+Entomol%22%5BJournal%5D)">Baseline responses of bollworm, Heliocoverpa zea (Boddie), and tobacco budworm, Heliothis virescens (F.), to indoxcarb and pyridalyl.</a> J. Agricul. Urban Entomol. 22, 99-109 (2005).</li>
<li>Temple, J. H., Pommireddy, P. L., Cook, D. R., Maçon, P., Leonard, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthopod+management%3A+Susceptibility+of+selected+lepidopteran+to+pests+Rynaxypyr%2C+a+novel+insecticide%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Arthopod management: Susceptibility of selected lepidopteran to pests Rynaxypyr, a novel insecticide.</a> J. Cotton Sci. 13, 23-31 (2009).</li>
<li>Plapp, F. W., Vinson, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+toxicities+of+some+insecticides+to+the+tobacco+budworm+and+its+ichneumonid+parasite%2C+Campoletis+sonorensis%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparative toxicities of some insecticides to the tobacco budworm and its ichneumonid parasite, Campoletis sonorensis.</a> Environ. Entomol. 6, 381-384 (1977).</li>
<li>Xu, J., Shelton, A. M., Cheng, X. iaN. ian <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+susceptibility+of+Diadegma+insulare+%28Hymenoptera%3A+Ichneumonidae%29+to+permethrin%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Variation in susceptibility of Diadegma insulare (Hymenoptera: Ichneumonidae) to permethrin.</a> J. Econ. Entomol. 94, 541-546 (2001).</li>
<li>Snodgrass, G. L., Scott, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seasonal+changes+in+pyrethroid+resistance+in+tarnished+plant+bug+%28Heteroptera%3A+Miridae%29+populations+during+a+three+year+period+in+the+delta+area+of+Arkansas%2C+Louisiana+and+Mississippi%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Seasonal changes in pyrethroid resistance in tarnished plant bug (Heteroptera: Miridae) populations during a three year period in the delta area of Arkansas, Louisiana and Mississippi.</a> J. Econ. Entomol. 93, 441-446 (2000).</li>
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<li>Preisler, H. K., Robertson, J. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPreisler%2C+HK+%22Pesticide+bioassays+with+arthropods%22">Pesticide bioassays with arthropods</a>. , CRC Press. Boca Raton, FL. (1992).</li>
<li>Hollingsworth, R. G., Steinkraus, D. C., Tugwell, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responses+of+Arkansas+population+of+tarnished+plant+bugs+%28Heteroptera%3A+Miridae%29+to+insecticides%2C+and+tolerance+differences+between+nymphs+and+adults%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Responses of Arkansas population of tarnished plant bugs (Heteroptera: Miridae) to insecticides, and tolerance differences between nymphs and adults.</a> J. Econ. Entomol. 90, 21-26 (1997).</li>
</ol>

Der LC 50-Wert kann verwendet werden, um als Baseline Anfälligkeit eines Zielgruppe (n) zu ermitteln. Der Wert dieser Daten können in Zukunft die Überwachung von Umfragen oder für den unmittelbaren Zweck der Vergleich der aktuellen Ergebnisse der von einem vorher bestimmten LC 50, um die Anfälligkeit der Zielgruppe hat sich verschoben zu bestimmen. Actual LC 50-Werte können zwischen Populationen durch die Untersuchung der 95%-Konfidenzintervalle verglichen werden, wenn die Ober-und Untergrenzen nicht überlappen, dann ist es wahrscheinlich, dass die Bevölkerung hat sich eine signifikante Veränderung in der Empfindlichkeit und in manchen Situationen erlebt ist ein Hinweis auf Widerstand 33. Der LC 50 s können auch verwendet werden, um saisonale Veränderungen in Insektizid esusceptibilitye 28 zu untersuchen, oder vergleichen Sie Antworten zwischen den Arten oder Insektizid AI s sein Beträchtliche Arbeit wurde auch diese Daten verwenden, um Antworten zwischen Männern und Frauen 10 oder zwischen Erwachsenen und unreife Stadien, 10,34 vergleichen. Manchmal Konfidenzintervalle sind breit oder nicht in der Lage zu berechnen. Um zu gewinnen engere Konfidenzintervalle Verhalten der Bioassay mit mehr Insekten und / oder mehr Konzentrationen.

<table><tbody><tr><td>50–100 ml Glasbecher</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Maßkolben mit Stopfen (kann man braune, lichtundurchlässige Kolben für lichtempfindliche Pestizide wie Pyrethroide verwenden)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20-ml-Glasküvetten mit unbeschichteten Deckeln</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Verfahren zum Einfärben von Küvetten (Farbe oder Marker)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aceton</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kommerzieller Hotdog-Roller (Heizelement abgeklemmt)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zwei Waschflaschen (eine modifiziert, sodass die Öffnung groß ist, um Flüssigkeit schnell zuzugeben, und eine mit kleiner Auslauföffnung, um Flüssigkeit langsam zuzugeben)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kleine Wägepfanne (stellen Sie sicher, dass alle Kunststoffmaterialien acetonbeständig sind)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zugang zu einer Waage mit einer Ablesbarkeit von 0,001 g oder höherer Präzision</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parafilm M</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Repeater-Pipettierhilfe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Passende Pipettenspitzen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glaspipetten, die in den Maßkolben passen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Abzugshaube (zur Entfernung des Aceton-Geruchs)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ort zur Lagerung von Insektizidlösungen und Küvetten [Kühlschrank (Lösungen), dunkler Raum oder Gefrierschrank, je nach chemischer Substanz (Küvetten)]</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

bioassays zur Überwachung insecticide resistance

Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance

Pest Resistenz gegen Pestizide ist ein zunehmendes Problem, weil Pestizide ein integraler Bestandteil der hochverzinslichen Produktion der Landwirtschaft sind. Wenn nur wenige Produkte für eine individuelle Schädlingsbekämpfung sind innerhalb einer bestimmten Kultur-System bezeichnet, sind chemische Steuerungsmöglichkeiten begrenzt. Daher sind die gleichen Produkt (e) wiederholt und verwendet ständigen Selektionsdruck auf den jeweiligen Schädling gelegt. Es gibt sowohl finanzielle und ökologische Kosten, die mit der Entwicklung von resistenten Populationen assoziiert. Die Kosten für Pestizid-Resistenz ist bei etwa $ 1500000000 wurde jährlich in den Vereinigten Staaten geschätzt. Dieses Papier wird beschrieben, Protokolle, die derzeit verwendet werden, um Arthropoden (insbesondere Insekten) Populationen für die Entwicklung von Resistenzen zu überwachen. Die erwachsenen Fläschchen Test wird verwendet, um die Toxizität zu messen, um Insektizide Kontakt und eine Modifikation dieses Tests ist für pflanzliche systemische Insektizide verwendet. In dieser Bioassays sind Insekten technisch Insektizid und Antworten (Mortalität) bei einer bestimmten Post-Expositions-Intervall aufgezeichnet ausgesetzt. Die Mortalität sind unterzogen Dose Probitanalyse Login Schätzungen von einer tödlichen Konzentration, dass die Sterblichkeit bietet auf 50% (LC 50) der Zielgruppen und eine Reihe von Konfidenzgrenzen (CL) als Schätzungen der Variabilität der Daten zu generieren. Wenn diese Daten für eine Reihe von Insektizid-empfindlichen Bevölkerungsgruppen gesammelt werden, kann der LC 50 als Basisdaten für die künftige Überwachung genutzt werden. Nach Populationen zu Produkten in Berührung gekommen sind, können die Ergebnisse auf einen vorher festgelegten LC 50 mit der gleichen Methode verglichen werden.

Dieses Manuskript zeigt und diskutiert Techniken verwendet, um Pestizid-Anfälligkeit Umfrage erkennen und Widerstand gegen Kontakt-und systemische Pestizide in Arthropoden Schädlinge.

Bioassays zur Überwachung Insecticide Resistance

Die Resistenz von Schädlingen gegenüber Pestiziden stellt ein wachsendes Problem dar, da Pestizide ein integraler Bestandteil einer hochertragreichen produktiven Landwirtschaft sind. Wenn nur wenige Produkte ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, festzustellen, ob das Insekt eine Resistenz gegen das Insektizid entwickelt hat. Dies wird erreicht, indem die zu testenden Konzentrationen hergestellt werden, indem technisches Insektizid in Aceton für Kontaktinsektizide gelöst wird, wie von Plaid AL im Jahr 1987 beschrieben, oder in einer Honig-Wasser-Lösung für systemische Insektizide, wie von Snores Etol im Jahr 2008 beschrieben.Als zweiten Schritt pipettieren Sie 0,5 Milliliter der Aceton-Insektizidlösung in ein 20-Milliliter-Glasisolierfläschchen und drehen die Fläschchen auf einem handelsüblichen Hotdog-Roller mit ausgeschaltetem Heizelement oder pipettieren 0,5 Milliliter der Honigwasser-Insektizidlösung auf ein Stück Blumenschaumstoff, das sich innerhalb eines Fläschchens befindet. Als Nächstes sammeln Sie das gewünschte Insekt für den Adult-Fläschchentest, um die Bioassay durchzuführen, bei der die Ergebnisse zur Insektizidresistenz ermittelt werden, indem überprüft wird, ob das Insekt eine Resistenz gegen das Insektizid entwickelt hat, basierend auf dem Vergleich der über eine Probit-Analyse ermittelten LC50 mit vorbestehenden LC50-Werten. Hallo, mein Name ist Audra Miller.Ich komme vom Delta Research Center des College of Agriculture, Food and Natural Resources der University of Missouri in Portageville, Missouri. Ich werde ein Experiment aus dem Entomologielabor von Dr. Kelly Kindle durchführen. Ich zeige das Verfahren zur Überprüfung, ob eine Insektizidresistenz auftritt.Beginnen wir nun. Es ist unbedingt erforderlich, geeignete Sicherheitsvorkehrungen wie Schutzbrille, Masken und Handschuhe usw. zu verwenden. Bei der Handhabung von Insektiziden konsultieren Sie das Sicherheitsdatenblatt, um die empfohlene persönliche Schutzausrüstung für das jeweils verwendete Pflanzenschutzmittel zu ermitteln.Um eine Stammlösung herzustellen, die Reinheit berücksichtigen und das technische Insektizid entsprechend abwiegen. Das Insektizid im Abzug in einen Messkolben geben, den Kolben teilweise mit Aceton auffüllen. Das Insektizid hinzufügen und das Wiegeboot mit Aceton nachspülen, wobei das Spülaceton in den Kolben gelangt.Füllen Sie die Messkolben mit Aceton bis zur Eichmarke und mischen Sie mehrmals durch Umstülpen. Stellen Sie serielle Verdünnungen nach Bedarf her und kennzeichnen Sie die Gefäße für die Konzentrationen mit Farbe oder Markierstiften entsprechend dem Farbcode. Wenn die Lösung nicht verwendet wird, geben Sie etwa die Hälfte des Volumens entsprechend der Anzahl der herzustellenden Gefäße in ein kleines Becherglas und decken Sie es ab, um die Verdunstung zu minimieren.Verwenden Sie eine Mehrfachpipette, um 0,5 Milliliter in die Vials zu geben. Arbeiten Sie von niedriger zu höherer Konzentration, beginnend mit der Kontrolle aus reinem Aceton, um die Innenseite des Vials mit dem technischen Insektizid zu beschichten. Stellen Sie die Vials auf einen handelsüblichen Hotdog-Roller, bei dem die Heizung ausgeschaltet ist.Lassen Sie die Gefäße rotieren, bis das gesamte Aceton verdunstet ist. Überprüfen Sie jedes Gefäß einzeln auf Trockenheit. Sammeln Sie die zu testenden Insekten mithilfe von Pheromonfallen, Schlagnetzen oder anderen Methoden der Massenerfassung.Stellen Sie den Insekten acht bis 24 Stunden lang Nahrung und Feuchtigkeit zur Verfügung. Wählen Sie für den Bioassay gesunde, aktive Exemplare mit 10 bis 25 Insekten pro Testkonzentration aus. Platzierten Sie die Insekten in die Röhrchen, sodass sie dem gesamten Konzentrationsbereich ausgesetzt sind, nicht nur jeweils einer einzelnen Konzentration.Nach der geeigneten Inkubationszeit die Mortalität anhand von Kriterien koordinierter Bewegung beurteilen, wie beispielsweise der Fähigkeit, sich aufzurichten, wenn das Insekt auf seine dorsale Seite gelegt wird, oder koordinierter Bewegung bei sanftem Antippen. Wenn das Insekt sich zwar bewegen kann, aber umfällt, liegt keine koordinierte Bewegung vor, und das Insekt gilt als tot. Die Anzahl der lebenden und toten Individuen erfassen und die Überlebensrate in Prozent für alle Konzentrationen berechnen.Bereiten Sie Gefäße mit dem technischen Insektizid vor, das in einer 10%igen Honig-Wasser-Lösung gelöst ist. Wiegen Sie den Honig ab, um eine 10%ige (Volumen/Volumen) Honig-Wasser-Lösung herzustellen, überführen Sie diese in einen Messkolben und geben Sie das technische Insektizid zur Honig-Wasser-Lösung hinzu. Spülen Sie das Wiegeboot nach. Wiederholen Sie den Vorgang der Herstellung der Streckverdünnung, verwenden Sie jedoch Honig-Wasser anstelle von Aceton. Schneiden Sie ein Stück Blumenschaum ab und legen Sie es in das Gefäß Eloqua.0,5 mL der Lösung auf den Blumenschaum geben und Insekten mit einem Wattebausch anstelle eines Deckels verschließen. Führen Sie den Bioassay auf dieselbe Weise durch wie bei Kontaktinsektiziden, und korrigieren Sie die Sterblichkeit in der Kontrolle gemäß Abbott. Bestimmen Sie die letale Konzentration, die erforderlich ist, um 50 % einer Population zu töten, sowie die 95-%-Konfidenzintervalle.Dies kann beispielsweise mithilfe eines Softwareprogramms wie SAS Proc Probit oder Polo Plus durchgeführt werden. In diesem Beispielprogramm für SAS steht „dose“ für die im Bioassay verwendete Konzentration. N ist die Anzahl der bei einer bestimmten Konzentration getesteten Individuen, und „response“ ist die Anzahl der verendeten Individuen. Ermitteln Sie die Wahrscheinlichkeit von 0,5; dies ist die LC50 mit Konfidenzintervallen von 0,1891 bis 0,3273 Mikrogramm pro Vial. Falls Basisdaten für das getestete Insekt oder eine LC50 aus einer bekannten empfänglichen Population vorliegen, kann die neue LC50 mit der LC50 der Basisdaten oder empfänglichen Populationen verglichen werden.Wenn die Basis-LC50 0,1487 Mikrogramm pro Fläschchen mit Konfidenzgrenzen von 0,1167 bis 0,1793 Mikrogramm pro Fläschchen betrug, könnte man schließen, dass eine signifikante Veränderung der Resistenz vorliegt, da sich die Konfidenzgrenzen nicht überlappen. Wenn hingegen die Basis-LC50 0,1487 Mikrogramm pro Fläschchen betrug, die Konfidenzgrenzen jedoch zwischen 0,0958 und 0,1983 Mikrogramm pro Fläschchen lagen, gäbe es keine signifikante Zunahme der Resistenz, da sich die Konfidenzgrenzen überlappen. Dieses Experiment kann helfen zu bestimmen, ob Insektizidresistenz eine Ursache für das Versagen des Insektizids ist oder nicht. Beachten Sie jedoch beim Umgang mit Insektiziden stets die Verwendung der geeigneten Schutzausrüstung.Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

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Charakterisierung Herbivore Resistenzmechanismen: Spittlebugs auf Brachiaria Spp. als Beispiel

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Topischer Test-Assay: Eine Technik zur Bewertung des insektiziden Potenzials von Dopaminrezeptor-Antagonisten bei erwachsenen weiblichen Mücken durch topische Anwendung

Ein robuster und flexibler Ansatz zur Bestätigung der Herbizidresistenz in Unkrautpopulationen wird vorgestellt. Dieses Protokoll ermöglicht es, die Herbizidresistenzen abzuleiten und mit geringfügigen Anpassungen auf eine Vielzahl von Unkrautarten und Herbiziden anzuwenden.

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Protokolle für die Prüfung der Toxizität von neuartigen Insektizide Chemikalien, Mücken

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Produktion Haus fliegen Carboxylesterase Proteine in Vitro mit einem Baculovirus vermittelte Insekt Ausdruck Zellsystem und später funktionell charakterisieren ihre Rolle bei der Metabolisierung Permethrin, dadurch konferieren pyrethroid Widerstand von zellbasierten MTT-Assay und in-vitro- metabolische Studien.

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Wir beschreiben die Methodik und Bedeutung des topischen Anwendungsbioassays zur Messung der Insektizidempfindlichkeit bei Moskitos und Fruchtfliegen. Der vorgestellte Assay ist ein hoher Durchsatz, verwendet Insektenmasse - so dass eine massenrelativierte tödliche Dosis anstelle der Konzentration berechnet werden kann - und hat wahrscheinlich eine geringere Variabilität als andere ähnliche Methoden.

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Dieses Protokoll beschreibt den obligatorischen Fütterungstest, um die potenziell toxische Wirkung eines sekundären Pflanzenstoffs auf die Larven der Lepidoptera-Insekten zu bewerten. Dabei handelt es sich um einen hochgradig skalierbaren Insekten-Bioassay, mit dem sich die subletale und letale Dosis, die abschreckende Wirkung und die physiologische Wirkung leicht optimieren lassen. Dies könnte für das Screening umweltfreundlicher Insektizide verwendet werden.

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Erfahren Sie, wie Bioassays zur Überwachung von Insektizidresistenz bei Schädlingen durchgeführt werden. Diese Methode ermöglicht die Bestimmung von LC50-Werten und die Bewertung der Wirksamkeit von Pestiziden.

Bioassays zur Überwachung Insecticide Resistance

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