Name: Large Scale Zebrafisch-Based In-vivo- Small Molecule-Screen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-30T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie mit Zebrafisch-Embryonen in 96-Well-Platten eine hochdurchsatzfähige Screening-Methode für kleine Moleküle durchführen. Diese Technik ermöglicht die Identifizierung bioaktiver Verbindungen, die die embryonale Entwicklung und Physiologie modulieren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1) Zebrafisch Egg Collection <ol><li> Am Nachmittag vor dem Tag der chemischen Bildschirm einrichten 10 bis 20 Zebrafisch Zuchtbecken. Füllen Sie die einzelnen Behälter mit Wasser aus der Aquakultur System. Mit einem Fangnetz, Transfer ein erwachsenes Männchen und 1-2 erwachsenen Weibchen zu Innenbehälter in jedem Aufzuchtbecken. Separate der männlichen und weiblichen Fische voneinander mit einem Teiler. Beschriften Sie die Käfige und einen Deckel über sie. </li><li> Am Morgen des Bildschirms, entfernen Sie die Teiler von Zuchtbecken und ermöglichen Zebrafisch zu paaren. Im Laufe der nächsten 1 Stunde ermöglichen befruchteten Eizellen durch das Gitter an der Unterseite eines jeden inneren Behälter fallen. </li><li> Nach 1 Stunde zurück Erw. Zebrafisch zurück zur permanenten Speicher, entfernen Sie den inneren Behälter und sammeln die Eier durch Anstrengung das Wasser in jedes Aufzuchtbecken durch eine Kunststoff-Teesieb. </li><li> Kehren Sie die Sieb über einer Petrischale und spülen Sie das Sieb vorsichtig, um die Eier in die Petrischale bündig mit einer Waschflasche mit dem E3 Medium. </li><li> Alle unbefruchteten Eiern, die undurchsichtig erscheinen, sollten entfernt mit einem Einweg-Kunststoff-Pipette werden. Jede Paarung Kreuz sollte Ausbeute etwa 200 Embryonen. </li></ol> 2) Arraying Embryos in 96-well Platten <ol><li> Transfer ca. 5 Embryonen in E3 Medium in jedes Well einer 96-Well-Platte mit einem Glas Pasteur Pipette. </li><li> Einmal Embryonen auf die 96-Well-Platte sind aufgereiht, entfernen Sie so viel von der E3 Medium wie möglich aus dem Brunnen mit einem 12-Kanal (30 bis 300 ul) Pipette, dabei nicht zu durchstechen des Embryos. Mit dem 12-Kanal-Pipette, liefern 250 ul E3-Medium mit Kanamycin 0.5μg/ml in jede Vertiefung so schnell wie möglich, um nicht zu erlauben Embryonen zu versiegen. </li><li> Setzen Sie die 96-Well-Platten in 28,5 ° C Inkubator bis sie die gewünschte Stufe, wenn die Verbindungen hinzugefügt werden zu erreichen. </li></ol> 3) Übertragung von Small Molecule-Bibliothek Während Verbindung Transfer mit Roboter-Transfer-Methoden automatisiert werden können, beschreiben wir die manuelle Methode zur Übertragung. <ol><li> Kleines Molekül-Bibliotheken werden in der Regel in einer 96-Well-Format geliefert, wobei jede Verbindung in DMSO als 10 mM Lager abgelegt. Etwa 60 Minuten vor der Embryonen das Stadium erreicht, wenn die Verbindungen hinzugefügt werden sollen, Tauwetter eine gewünschte Anzahl von 96-well-Platten mit Aliquots von kleinen Molekülen (Quelle Platte). Beachten Sie die Seriennummer oder sonstige Identifizierungsnummer der Quelle Platten. Zur Minimierung von Kondenswasser auf den Platten, kann Auftauen in einer Austrocknung Kammer mit Drierite (WA HAMMOND DRIERITE CO, Xenia, OH) auftreten. </li><li> Kurz-Spin-Down der Platten in einer Tischzentrifuge mit Multi-Well-Platte-Adapter ausgestattet. </li><li> Entfernen Sie die Aluminium-Versiegelung von Quelle Platte. Mit einem 12-Kanal-Pipette, verdünnte die Verbindungen in die Quelle Platte, um die Konzentration von 0,5 mM (zum Beispiel, wenn beginnend mit 250 nL Aliquots von 10mM Lager, fügen 4,75 l DMSO in jede Vertiefung). </li><li> Wenn die Embryonen in der 96-Well-Platte (Empfänger Platte) den gewünschten Zustand zu erreichen, verwenden Sie ein 12-Kanal (2-20 mL) Pipette 2.5μL von Verbindungen (0,5 mm) von der Quelle Platten Transfer in die Empfänger-Platten, die die Embryonen. </li><li> Notieren Sie sich die Kennnummer der Quelle Platten auf den Empfänger Embryo Platten. Decken Sie die Empfänger-Platten nun mit den Embryonen und Verbindungen mit Deckel, vorsichtig mischen die Platten durch vorsichtiges Schwenken, und legen Sie sie in einem 28,5 ° C Inkubator. </li><li> Cover jede Quelle Platte mit ungenutzten kleinen Molekülen (0,5 mM) mit einem Aluminium-Dichtband und in einem -80 ° C Gefrierschrank für langfristige Lagerung. </li></ol> 4) Vorsorgeuntersuchungen für Wirkung von kleinen Molekülen durch visuelle Inspektion der Phänotypen <ol><li> Vor der Durchführung des Bildschirms, formulieren ein bestimmtes Kriterium für das, was wäre ein &quot;Hit&quot; darstellen. </li><li> Am gewünschten Zeiten in der Entwicklung, entfernen Sie die 96-well-Platten, die Verbindung behandelten Embryonen aus Inkubator und prüfen jede Vertiefung unter einem Stereomikroskop. Zur besseren Visualisierung von subtilen Veränderungen, wie zum Beispiel Änderungen in Kreislauf-Muster kann eine Phasen-Kontrast-inverse Mikroskop verwendet werden. Fluoreszenz-Mikroskopie kann verwendet werden, um Störung der Expression von GFP oder DsRed Proteine ​​unter einer Gewebe-spezifischen Promotor zu untersuchen. </li><li> Schnell die 96-Well-Platten für alle gut in die mindestens 3 von 5 Embryonen zeigen die vorgeschriebenen &quot;Hit&quot;-Phänotyp. Notieren Sie sich die Identität der Platte und die auch Standort eines jeden potentiellen Hit. </li><li> Bestätigen Sie ein potentieller Hit von erneute Testen der Auswirkungen der Verbindung bei mehreren Dosen (1 uM, 5 uM, 10 uM und 50 uM). Für jede Dosis wurden 10 Embryonen in 0,5 ml E3-Medien in einer 48-Well-Platte-Format getestet. Der Zeitpunkt der Verbindung hinaus für eine erneute sollte identisch mit dem des ursprünglichen Screening. Ein Hit ist bestätigt, wenn die ausgelöste Phänotyp auf einen erneuten Test der compoun wiedergegebend </li><li> Identifizieren Sie die Hit-Verbindung aus der Datenbank von kleinen Molekülen in der chemischen Bibliothek. </li></ol>

<ol><li>Bayliss, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+modulation+of+receptor+signaling+inhibits+regenerative+angiogenesis+in+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+chemical+biology%22%5BJournal%5D)">Chemical modulation of receptor signaling inhibits regenerative angiogenesis in adult zebrafish.</a> Nature chemical biology. 2, 265-273 (2006).</li>
<li>Burns, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+assay+for+small+molecules+that+modulate+zebrafish+embryonic+heart+rate%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+chemical+biology%22%5BJournal%5D)">High-throughput assay for small molecules that modulate zebrafish embryonic heart rate.</a> Nature chemical biology. 1, 263-264 (2005).</li>
<li>Hao, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+structure-activity+relationship+study+of+dorsomorphin+analogues+identifies+selective+VEGF+and+BMP+inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+chemical+biology%22%5BJournal%5D)">In vivo structure-activity relationship study of dorsomorphin analogues identifies selective VEGF and BMP inhibitors.</a> ACS chemical biology. 5, 245-253 (2010).</li>
<li>Hong, C. C., Peterson, Q. P., Hong, J. Y., Peterson, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artery%2Fvein+specification+is+governed+by+opposing+phosphatidylinositol-3+kinase+and+MAP+kinase%2FERK+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Artery/vein specification is governed by opposing phosphatidylinositol-3 kinase and MAP kinase/ERK signaling.</a> Curr Biol. 16, 1366-1372 (2006).</li>
<li>Milan, D. J., Peterson, T. A., Ruskin, J. N., Peterson, R. T., MacRae, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drugs+that+induce+repolarization+abnormalities+cause+bradycardia+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Drugs that induce repolarization abnormalities cause bradycardia in zebrafish.</a> Circulation. 107, 1355-1358 (2003).</li>
<li>Peterson, R. T., Link, B. A., Dowling, J. E., Schreiber, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecule+developmental+screens+reveal+the+logic+and+timing+of+vertebrate+development%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Small molecule developmental screens reveal the logic and timing of vertebrate development.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 12965-12969 (2000).</li>
<li>Yu, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsomorphin+inhibits+BMP+signals+required+for+embryogenesis+and+iron+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+chemical+biology%22%5BJournal%5D)">Dorsomorphin inhibits BMP signals required for embryogenesis and iron metabolism.</a> Nature chemical biology. 4, 33-41 (2008).</li>
<li>Zon, L. I., Peterson, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+drug+discovery+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews%22%5BJournal%5D)">In vivo drug discovery in the zebrafish.</a> Nature reviews. 4, 35-44 (2005).</li>
<li>Stern, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecules+that+delay+S+phase+suppress+a+zebrafish+bmyb+mutant%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+chemical+biology%22%5BJournal%5D)">Small molecules that delay S phase suppress a zebrafish bmyb mutant.</a> Nature chemical biology. 1, 366-370 (2005).</li>
<li>Peterson, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+suppression+of+a+genetic+mutation+in+a+zebrafish+model+of+aortic+coarctation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+biotechnology%22%5BJournal%5D)">Chemical suppression of a genetic mutation in a zebrafish model of aortic coarctation.</a> Nature biotechnology. 22, 595-599 (2004).</li>
</ol>

Bei der Planung eines Zebrafisch-basierte chemische Bildschirm, muss besonderes Augenmerk auf die Robustheit der Phänotyp unter Berücksichtigung der Hintergrund von solchen Phänotyp bezahlt werden. Dies ist besonders wichtig für Bildschirme für chemische Suppressoren einer induzierten Phänotyp. Zum Beispiel für einen Phänotyp durch Hitze-Schock-Induktion einer Transgen hervorgerufen, die Bedingung, dass der Phänotyp induziert reproduzierbar muss genau abgebildet werden aus vor Beginn der Bildschirm zu unvertretbar hohen...

<ol><li> Mindestens 20 Paar erwachsenen Zebrafisch der gewünschten Genotyp. </li><li> Fischernetzen, Zuchtbecken, mit abnehmbarem Innenbehälter und Teiler (aquatische Habitate). </li><li> Petrischalen (10 cm). </li><li> Plastic Teesieb. </li><li> Waschflasche containg Embryo Wasser. </li><li> Einweghandschuhe aus Polyethylen Transferpipetten. </li><li> Polystyrol 96-well Rundboden-Assay-Platten (Corning Costar, Lowell, MA). </li><li> Glass Pasteurpipette (Fisher Scientific). </li><li> Manuelle Pipetten Pumpe, 10 mL (Bel-Art Products, Pequannock, NJ). </li><li> E3 Embryo Medium: 5 mM NaCl, 0,17 mM KCl, 0,33 mM CaCl 2, 0,33 mM MgSO 4, mit 0,003% PTU (Phenylthio-Carbamid, Sigma, St. Louis, MO). PTU kann als 10-fach durch Auflösen von 0,3-g PTU in 1 L E3 Embryo Medien vorbereitet werden. Lösungen, die PTU sollten vor Licht durch Abdecken mit Alufolie geschützt werden. </li><li> 12-Kanal-Pipetten, 2-20 ul (Eppendorf). </li><li> 12-Kanal-Pipetten, 3-300 ul (Eppendorf). </li><li> Disposable Pipette Polystyrol-Becken, 50 mL (Fisher Scientific). </li><li> Kleines Molekül-Bibliothek von strukturell unterschiedlichen Verbindungen in einer 96-wll-Format bei 10 mM Lager in DMSO angeordnet. Jeder Master Platte wird in 96-well Polypropylen Speicherplatten (Corning) aliquotiert und bei -80 ° C bis zur Verwendung. </li><li> Aluminium Dichtband für 96-Well-Platten (Nunc, Rochester, NY). </li><li> DMSO (Sigma, St. Louis, MO). </li><li> Grundlegende Inkubator, 28,5 ° C (Fisher Scientific). </li><li> Stereomikroskop mit Durchlichtbasis (Leica Microsystems, Bannockburn, IL). </li></ol>

large scale zebrafisch-based in-vivo- small molecule-screen

Large Scale Zebrafish-Based In vivo Small Molecule Screen

Aufgrund ihrer kleinen Größe Embryo, schnelle Entwicklung, Transparenz, Fruchtbarkeit und zahlreichen molekularen, morphologischen und physiologischen Ähnlichkeiten zu den Säugetieren, hat Zebrafisch als leistungsfähige entstanden<em&gt; In vivo</em&gt; Plattform für Phänotyp-basierten Wirkstoff-Bildschirme und chemisch-genetischen Analyse. Hier zeigen wir eine einfache, praktische Methode zur groß angelegten Screening von kleinen Molekülen mit Zebrafisch-Embryos.

Zebrafisch als leistungsfähige entstanden<em&gt; In vivo</em&gt; Plattform für Phänotyp-basierten Wirkstoff-Bildschirme und chemisch-genetischen Analyse. Hier zeigen wir eine einfache, praktische Methode zur groß angelegten Screening von kleinen Molekülen mit Zebrafisch-Embryos.

Large Scale Zebrafisch-Based In-vivo- Small Molecule-Screen

Aufgrund ihrer geringen Embryogröße, ihrer schnellen Entwicklung, ihrer Transparenz, ihrer hohen Fruchtbarkeit sowie zahlreicher molekularer, morphologischer und physiologischer Ähnlichkeiten zu ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, kleine Moleküle zu finden, die spezifisch wichtige Aspekte der embryonalen Entwicklung und Physiologie modulieren. Dies wird erreicht, indem eine große Anzahl befruchteter Eier in 96-Well-Screening-Platten überführt wird, was als zweiter Schritt erfolgt. Anschließend werden Aliquote einer Bibliothek kleiner Moleküle den Embryonen in den 96-Well-Platten zugegeben.Multiwellplatten werden auf Phänotypen untersucht, die durch die kleinen Moleküle hervorgerufen werden. Es werden Ergebnisse erhalten, die zeigen, welche kleinen Moleküle die Entwicklung oder Physiologie von Superfischen gezielt beeinflussen. Hallo, mein Name ist Charles Hong an der medizinischen Fakultät der Vanderbilt University.In unserem Labor führen wir Hochdurchsatz-Chemikalien-Screens mit Zebrafischembryonen durch. Dies ist eine relativ einfache Technik, die breit angepasst werden kann, um neuartige bioaktive Verbindungen zu entdecken. Am Nachmittag vor dem Tag des Chemikalien-Screens richten Sie 10 bis 20 Zebrafisch-Zuchtbecken ein.Platzieren Sie einen Trenner in jeden Behälter und füllen Sie jeden Behälter mit Wasser aus dem Aquakultursystem, wobei ein

large-scale-zebrafish-based-in-vivo-small-molecule-screen

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Wir berichten über die Entwicklung eines Systems zur automatisierten Abbildung und Analyse von Zebrafisch-transgenen Embryos in Mikrotiterplatten. Dies demonstriert die Fähigkeit, dosisabhängige Wirkung eines kleinen Moleküls, BCI, auf Fibroblast Growth Factor Expression des Reportergens zu messen und Technologie für den Aufbau High-Throughput-Zebrafisch chemische Bildschirme.

Entwicklung von automatisierten Imaging und Analyse für Zebrafisch chemische Bildschirme.

In diesem Artikel werden Zebrafischembryonen für das Screening chemischer Toxizität verwendet. Die chemische Toxizität korreliert mit den Phänotyp-Messwerten. Das Probenprotokoll zeigt einen methodischen Ansatz zur Durchführung des chemischen Toxizitätsscreenings.

Embryobasiertes chemisches Toxizitätsscreen: Bewertung der Auswirkungen auf die Entwicklung von Zebrafischembryonen

Hier beschrieben ist ein Protokoll zur halbautomatischen Bilderzeugungsgewebespezifischer Fluoreszenz in Zebrafischembryos.

Semi-Automated Imaging von Gewebespezifische Fluoreszenz-in Zebrafischembryonen

Dieses Video Artikel beschreibt das Hochdurchsatz-Pipeline, die erfolgreich etabliert hat, zu infizieren und zu analysieren, eine große Zahl von Zebrafisch-Embryonen bietet eine neue Verbindung leistungsfähiges Werkzeug für Test-und Wirkstoffforschung mit einer ganzen Wirbeltierorganismus.

Aufbau und Optimierung eines Hochdurchsatz-Setup zum Studium<em&gt; Staphylococcus epidermidis</em&gt; Und<em&gt; Mycobacterium marinum</em&gt; Infektion als Modell für Drug Discovery

Der Zebrafisch ist eine hervorragende experimentelle Organismus auf wirbelEntwicklungsProzesse und das Modell menschlichen Krankheit zu studieren. Hier ein Protokoll auf, wie man eine manuelle chemische Bildschirm mit hohem Durchsatz in Zebrafischembryonen mit einer führen beschreiben wir ganze-mount in situ Hybridisierung (WISH) ausgelesen.

Ein Handbuch Kleine Molecule Bildschirm Nähern Hochdurch Mit Zebrafischembryonen

Der Zebrafisch ist ein hervorragendes Modellsystem für genetische und Entwicklungsstudien. Die Bead-Implantation ist eine wertvolle Gewebemanipulationstechnik, die verwendet werden kann, um Entwicklungsmechanismen zu untersuchen, indem Veränderungen in der lokalen zellulären Umgebung eingeführt werden. Dieses Protokoll beschreibt, wie die Implantation von Mikrokügelchen im Zebrafischembryo durchgeführt wird.

Microbead Implantation im Zebrafischembryo

Zebrafisch-Embryonen werden zur Bewertung der Toxizität chemischer Verbindungen verwendet. Sie entwickeln sich extern und reagieren empfindlich auf Chemikalien, was den Nachweis subtiler phäotypischer Veränderungen ermöglicht. Das Experiment benötigt nur eine geringe Menge an Verbindung, die direkt auf die Platte mit Embryonen zugesetzt wird, was das Testsystem effizient und kostengünstig macht.

Schnelle Bewertung der Toxizität chemischer Verbindungen mit Zebrafischembryonen

Zebrafish Xenograft-Modelle ermöglichen ein hochdurchsatziges Arzneimittelscreening und eine fluoreszierende Bildgebung menschlicher Krebszellen in einer in vivo Mikroumgebung. Wir haben einen Workflow für großangelegte, automatisierte Arzneimitteluntersuchungen an von Patienten abgeleiteten Leukämieproben in Zebrafischen mit hilfe einer automatisierten Fluoreszenzmikroskop-Bildgebungseinheit entwickelt.

Arzneimittel-Screening von Primärpatienten abgeleitetTumor Xenografts in Zebrafischen

Dieses Protokoll beschreibt ein Wirkstoffscreening-Verfahren bei Zebrafischlarven 3-7 Tage nach der Befruchtung, gefolgt von einer morphologischen Beurteilung.

Screening kleiner Moleküle und Toxizitätstests an Zebrafischlarven im Frühstadium

RASopathien sind multisystemische genetische Syndrome, die durch eine Hyperaktivierung des RAS-MAPK-Signalwegs verursacht werden. Potenziell pathogene Varianten, die auf ihre Validierung warten, treten kontinuierlich auf, während schlechte präklinische Evidenz die Therapie einschränkt. Hier beschreiben wir unser in vivo-Protokoll zum Testen und Kreuzvalidieren von RASopathie-assoziierten ERK-Aktivierungsniveaus und ihrer pharmakologischen Modulation während der Embryogenese durch...

Ein effizientes Protokoll zur Beurteilung der Modulation der ERK-Aktivität in frühen Modellen des Zebrafisch-Noonan-Syndroms mittels Live-FRET-Mikroskopie und Immunfluoreszenz

Erfahren Sie, wie Sie mit Zebrafisch-Embryonen in 96-Well-Platten eine hochdurchsatzfähige Screening-Methode für kleine Moleküle durchführen. Diese Technik ermöglicht die Identifizierung bioaktiver Verbindungen, die die embryonale Entwicklung und Physiologie modulieren.

Large Scale Zebrafisch-Based In-vivo- Small Molecule-Screen

Weitere Videos entdecken