Anwendung von Licht-gehärteten Dental Adhesive Resin für Montage-Elektroden oder Mikrodialysesonden in Chronic Experimente

Bei chronischen Experimenten der Elektrophysiologie oder Mikrodialyse wurde selbsthärtender Zahnkunststoff häufig als Montagebasis für Elektroden oder Mikrodialyseson den verwendet. Da diese Acrylate nicht an der Knochenoberfläche haften, wurden Schrauben als Verankerungen eingesetzt. Bei kleinen Versuchstieren wie FIEs oder Mäusen ist der Schädelknochen jedoch sehr zerbrechlich und kann die Anker nicht zuverlässig halten.

Manchmal verursachen diese Knöchelschrauben eine Infektion und Entzündung des Gewebes. In diesem Bericht schlagen wir eine neue Anwendung von rechtem aushärtendem Zahnmaterial als Träger für die Montagebasis vor. Dieses Material ermöglicht eine direkte Verbindung mit dem Schädelknochen.

Daher sind Verankerungsschrauben nicht erforderlich und das Operationsfeld kann erheblich verkleinert werden. Das Gesamtgewicht einer Sonde, einer Führungskanüle, eines Gehäuses und einer Montagebasis betrug weniger als ein Gramm. Frühere Erfahrungen zeigen, dass die Verklebung länger als zwei Monate anhält.

Diese Technik kann auch für andere Versuchstiere wie Mäuse, Fische und so weiter verwendet werden. Zwei Durchführungen in zwei Gruppen wurden videoaufgezeichnet. In dieser Videodemonstration wurden die besten Aufnahmen jedes Protokollschritts ausgewählt und verwendet.

Diese sind stereotaktisch getrennt und verfügen über eine temperaturkontrollierte Erholungskammer. Dies sind hundert Instrumente für chirurgische Eingriffe. Prime PR auf der linken Seite und Mikroproblem.

Die dazugehörigen Zubehörteile befinden sich rechts. Falls ein Primärprogramm nicht verfügbar ist, kann stattdessen ein Mikrospatel verwendet werden. Dies ist ein Satz zahnmedizinischer Kunstharzmaterialien für die Seitenzahnversorgung.

Primer AP und ein Haftvermittler wurden in diesen Arzneifläschchen aufbewahrt. Wir haben dieses Produkt gewählt, da es ein selbstwirkendes und Dual-Härtungssystem ist. Falls Sie Alternativen wählen, passen Sie das detaillierte Verfahren gemäß den Produktanweisungen an. Das auf der linken Seite abgebildete, pistolenähnliche Instrument ist eine Sichtlicht-Härteeinheit.

Sie können eine handgefertigte LED-Lichtquelle wie rechts dargestellt zusammenbauen. Weitere Einzelheiten entnehmen Sie bitte der Dokumentation. Anschließend wurde eine chirurgische Anästhesie induziert, der chirurgische Bereich wurde weiter freigelegt und der Kopf am stereotaktischen Rahmen fixiert.

Vor der Insertion von EVAs wurde DI-Verletigung an die Spitzen der EVAs gebracht, um Schmerzen vorzubeugen. Der Kopf des Tieres wurde am Rahmen fixiert und der Kopfwinkel entsprechend justiert. Der chirurgische Bereich wurde mit Iod desinfiziert, eine Glas-Mikropipette wurde am Elektrodenhalter befestigt.

Dieser Mikropipettierer wurde verwendet, um einen Bezugspunkt bei einem fehlerhaften Experiment zu setzen. Der Lambda-Y-Punkt wurde als Bezugspunkt verwendet. Es wurde ein kleiner Hautschnitt vorgenommen, um den Bezugspunkt freizulegen.

Markieren Sie die Stelle mit einer Grashautpipette, die mit einem Farbstoff gefüllt ist. Schneiden Sie die Haut, um die Schädelfläche freizulegen. Wischen Sie die Knochenoberfläche mit einem Wattestäbchen ab, um Blut und Feuchtigkeit zu entfernen. Eine grüne und trockene Oberfläche ist für eine feste Bindung erforderlich.

Nachdem eine Markierungsposition angepeilt wurde, wurde mittels feiner Pinzette eine kleine Kraniotomie durchgeführt. Alternativ kann auch eine Mikropunktpinzette oder Knochenpinzette zur Erstellung der Kraniotomie verwendet werden. Anschließend wurde die grobe Mikropipette aus einem Halter entfernt und eine Kanüle oder Elektrode am Halter befestigt.

Die Spitze der Führungskanüle wurde auf den Referenzpunkt ausgerichtet und anschließend vorsichtig zum Zielort bewegt. Der kleinste Einschnitt im Gehirngewebe wurde mittels einer 30-Gauge-Injektionsnadel vorgenommen. Die Nadelführungskanüle wurde in die Zielposition gebracht.

Die zweite Behandlung der Knochenoberfläche erfolgte mit einem Zusatzmittel. Dieser Primer besteht aus den Komponenten A und B. Ein Tropfen von jeder Komponente wurde auf eine Schale gegeben und mit einem Pinsel vermischt. Der Primer wurde dann auf die Kontaktfläche aufgetragen. Auch die Oberfläche der Führungs-Kanüle wurde abgewischt.

Milde Luft wurde zugeführt, um den Primer zu verteilen und zu trocknen, anschließend wurde der Pinsel gewechselt und ein Haftvermittler auf die Fläche aufgetragen. Dieser Haftvermittler ist lichtempfindlich, weshalb er während des Verfahrens abgedeckt werden sollte. Auch die Oberfläche der Führungskanüle wurde abgetupft.

Die milde Luft wurde zugeführt und sichtbares blaues Licht beseitigt, um die chemische Reaktion des Klebstoffs zu beschleunigen. Zum Schutz der Augen des Bedieners sollte transparentes Orange-Coral-Seed verwendet werden. Die Augen von Tieren sollten, falls notwendig, nicht direktem Licht ausgesetzt werden.

Ein Aluminiumstöpsel wird verwendet, um die Augen der Tiere zu schützen. Eine kleine Menge Kompositharz wurde mit einem einfachen Stopfen auf die Schädeloberfläche und die Führungskanüle aufgetragen. Anschließend wurde sichtbares blaues Licht verwendet, um das Harz für den schrittweisen Aufbau auszuhärten.

Ein Haftvermittler wurde vor jeder Montage aufgetragen. Der Operationsbereich wurde aufgrund der Videoaufzeichnung kontinuierlich nach rechts ausgerichtet. Es ist jedoch besser, eine starke Rechtsausrichtung zu vermeiden, da sie den Zeitraum verkürzen kann, in dem die Materialien fähig sind.

Ein schrittweises Montieren und Ausrichten wird empfohlen, um eine vollständige Reaktion des Regimes sicherzustellen. Sie können die Form solange verändern, bis sie sichtbar ist. Rechts wurde Antibiotika verabreicht oder Menthol auf den chirurgischen Bereich aufgetragen, um Infektionen vorzubeugen.

Die Operation war nun abgeschlossen, daher wurde der Stereoadapter von der Elektrodenhalterung gelöst. Der Stereoadapter wurde entfernt. Stattdessen wurde ein DAMing-Stab eingeführt, und das Tier wurde aus dem stereotaktischen Rahmen befreit.

Schließlich wurde das Tier zur Erholung von der Anästhesie in die Sommer-Kontrollkammer verbracht. Es war der Tag nach der Operation im Vergleich zur Anwendung herkömmlicher selbsthärtender S. Die vorgestellte Technik weist mehrere wichtige Vorteile auf.

Zunächst bindet es direkt am Knochen. Selbsthärtendes Acryl kann an den Knochen angebracht werden, der mit Draht versehen ist, aber es haftet nicht am Knochen. Im Gegensatz dazu kann lichthärtendes Material direkt am Knochen binden.

Es haftet außerdem an einigen Materialien, einschließlich Kunststoff und Metalle, sofern ein Metallgrundierer verwendet wird. Diese Eigenschaft, an unterschiedliche Materialien zu binden, ermöglicht eine breite Palette von Anwendungen. Zweitens ist die Verarbeitung herkömmlicher Harze aufgrund des relativ kurzen Zeitfensters für die Handhabung einfach.

Binnen weniger Minuten weist es eine hohe Fließfähigkeit auf und ist daher schnell schwer zu handhaben. Sobald jedoch die chemische Reaktion beginnt, wird diese durch die exotherme Wärmeentwicklung beschleunigt, und das Harz wird innerhalb kurzer Zeit härter.

Die Zeitschlitze für die Verarbeitung von Rechts-Härtungs-Harz sind deutlich breiter und anpassbar. Grundsätzlich verändert sich das Harz kontinuierlich vom Beginn bis zu dem Zeitpunkt, an dem es den richtigen Zustand erreicht hat. Die ausgehärtete Drittreaktion erzeugt keine Wärme.

Die Aushärtungsreaktion von selbsthärtendem Harz ist exotherm. Wenn die Unterlage dick ist, kann sich diese Wärme ansammeln und Schäden verursachen. Die Gewebsreaktion auf lichthärtendes Harz erzeugt keine Wärme, und das Material ist biokompatibel.

Die Kosten für die Materialien und spezielle Geräte wie eine Lichtquelle können ein Problem darstellen. In dem ergänzenden Dokument stellen wir eine hundertfach hergestellte LED-Lichtquelle vor, die nicht viel kostet. Sehr schnell zu befolgendes Dokument für Einzelheiten.

Diese Technik ist anwendbar für die Implantation von Elektroden oder Mikrosonden an anderen Versuchstieren wie Fischen, Mäusen, Kaninchen, Katzen und Affen.