Name: Gentransfer bei ischämischen Herzinsuffizienz in einem vorklinischen Modell (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Erfahren Sie Gentransfer bei ischämischer Herzinsuffizienz mit einem Schweinemodell. Diese Methode ermöglicht die einfache und reproduzierbare Evaluierung verschiedener Gentherapieansätze.

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Diese Arbeit wird durch Leducq Foundation durch die Caerus Netzwerk (RJH) unterstützt, die von NIH R01 HL093183, HL088434, HL071763, HL080498, HL083156 und P20HL100396 (RJH). DL wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft unterstützt. Wir möchten Lauren Leonardson für ihre technische Unterstützung in diesem Projekt danken.

1. Myokardinfarkt Schöpfung <ol><li> Weibliche Yorkshire Schweine (20kg) von Animal Biotech Industries (Doylestown, PA) sind bereits medizinische Verwendung Telazol (Tiletamin angewendet / Zolazepam) (8,0 mg / kg) und Buprenorphin (0,6 mg). </li><li> Die Tiere werden intubiert und dann belüftet mit 100% Sauerstoff. Eine Vollnarkose ist mit Propofol (5-8mg/kg/hr) während des gesamten Verfahrens beibehalten. </li><li> Die femorale Seite ist mit 70% igem Alkohol durch Povidoniod, hergestellt. Eine perkutane Punktion bietet Zugriff auf die Arterie und für Mantel-Platzierung. Nach Scheide Einführen wird 3000-5000 IE Heparin verabreicht IV zu einer aktivierten Gerinnungszeit von 250-300 Sekunden zu halten. </li><li> Eine Bolusgabe von Amiodaron (75 mg) wird intramuskulär verabreicht. Die intravenöse Injektion einer 1000 ml Kochsalzlösung Tasche mit Amiodaron (75 mg), Atropin (2 mg) und Kaliumacetat (20 mEq) wird gestartet und gepflegt mit einer Geschwindigkeit von 150 ml / h während des gesamten Verfahrens. </li><li> A 7 Fr Hockeyschläger-Katheter (Cordis, Miami, FL) fortgeschritten ist auf der linken Koronararterie und eine Koronarangiographie durchgeführt wird. Eine 0,014-Zoll-Führungsdraht (Abbott Park, IL) ist in der linken vorderen absteigenden Koronararterie (LAD) fortgeschritten. Ein 8-mm-lang, 4,0-mm-VOYAGER over-the-Wire-Ballon (Abbott Park, IL) ist fortgeschritten und am proximalen LAD positioniert und die koronare Ballon ist bis 3 atm aufgeblasen. Verschluss der LAD wird durch Angiographie bestätigt. </li><li> Bei kontinuierlicher EKG-und hämodynamische Überwachung, ist der Verschluss für 90 Minuten gehalten. Bösartige ventrikulären Arrhythmien können gelegentlich innerhalb der ersten 40 Minuten auftreten, in diesem Fall sofortige Lieferung von Gleichstrom Schocks von 200 J und 300 J verabreicht werden. Normalerweise gibt es zwei Gipfel Zeitrahmen von Herzrhythmusstörungen, einer zwischen 2 und 10 Minuten und die andere zwischen 25 und 35 Minuten nach dem Aufblasen des Ballons. Diligent und sofortige Defibrillation sind der Schlüssel zur erfolgreichen Myokardinfarkt Schöpfung, da es mehr als 95% Inzidenz von Eingabe Kammerflimmern innerhalb der Zeitrahmen angegeben werden. Wenn die unverzügliche und angemessene Defibrillation durchgeführt wird, ist das Überleben sehr hoch. Wenn der Blutdruck sinkt unter 80 mmHg, ist Raumbelastung mit schnellen intravenösen Infusion von physiologischer Kochsalz erreicht. </li><li> Der Ballon wird entleert und alle Geräte werden entfernt. </li><li> Der Mantel aus der Femoralarterie entfernt wird, ist die Anästhesie vorenthalten, und das Tier während der Wiederherstellung überwacht. Die intravenöse Kochsalzlösung mit Amiodaron, Atropin und Kaliumacetat Infusion bei 50 ml / h reduziert und wird über Nacht gegeben. Eine intramuskuläre Injektionen von Nitroglycerline und Furoscemide verabreicht wird. Dann wird das Tier darf sich zu erholen und eine sorgfältige EKG-Überwachung ist für mindestens 3 Stunden fortgesetzt. </li><li> Aspirin (200mg) PO wird für fünf Tage gegeben werden. </li></ol> Häufigsten Komplikationen während und nach dem Myokardinfarkt Schöpfung Verfahren sind koronare Dissektion Einstichstelle Hämatome, Herzrhythmusstörungen und Herzinsuffizienz. Eine Verfeinerung Technik und gründliche Überwachung erforderlich ist zur Verhütung und Bewältigung dieser Komplikationen. 2. Virus Injection <ol><li> Die Tiere werden wie oben angegeben in den Myokardinfarkt Schöpfung Schritte 1-3. Die gleiche Dosis von Heparin sollte erwogen werden, Thrombose während der Virus-Injektion zu verhindern. </li><li> Ein 5Fr Hockeyschläger Katheter (Cordis, Miami, FL) ist auf der linken Koronararterie fortgeschritten. Nach der Angiographie, sind zwei von 0,014-Zoll-Führungsdrähte fortgeschritten, man in die LAD und einer in die linke Zirkumflex Koronararterie (LCX), um die Position des Katheters zu beheben. </li><li> Arteriellen Blut (-20 ml) wird aus dem Katheter gezogen. Um zu verhindern, die Ischämie während der Infusion wird die Hälfte verdünntes Blut zur Herstellung verwendet. Das Virus wird mit 10 ml Blut vermischt und verdünnt auf 20 ml mit physiologischer Kochsalzlösung. Die restlichen 10 ml ist auch zu 20 ml verdünnt und liefern verbleibende Virus innerhalb der Katheterlumen. </li><li> Die intravenöse Nitroglyzerin (20 ug / min) wird durch die Ohrvene gestartet. </li><li> Die Katheterspitze wird am proximalen linken Haupttrakt platziert. Der Druck durch den Katheter wird überwacht, um sicherzustellen, dass der Katheter nicht eingeklemmt. </li><li> Das Virus gemischtes Blut (15 ml) wird durch den Katheter über 15 Minuten mit einer Infusionspumpe in die linke Koronararterie injiziert. Nach 15 Minuten wird die Spritze mit dem Flush ausgetauscht und Infusion für 10 Minuten fortgesetzt. </li><li> Ein Draht und ein Katheter sind rechte Koronararterie die gleiche Weise wie linken Koronararterie fixiert. </li><li> Die restlichen 5 ml Blut mit dem Virus vermischt wird in der rechten Koronararterie für 5 Minuten mit 10 Minuten spülen, gefolgt injiziert. </li></ol> 3. Repräsentativer Fall Abbildung 1 zeigt die linke Ventrikulographie bei 1 Monat nach dem Myokardinfarkt Schöpfung. Die Wand des linken Ventrikels Bewegung ist deutlich mit einer Ejektionsfraktion (EF) der Beeinträchtigung31%. Abbildung 2 zeigt die Querschnitte des linken Ventrikels nach 1 Monat. Eine große Narbe von der Basis bis zur Spitze des vorderen Wand zu sehen ist. Die durchschnittliche EF nach 1 Monat nach Herzinfarkt in diesem Modell ist 36% und die durchschnittliche enddiastolischen Volumen 83 ml, während der Durchschnitt der in der gleichen Größe Tier ohne einen Myokardinfarkt beträgt 68% und 42 ml. Abbildung 3 zeigt die Expression von beta-gal in der linksventrikulären Grenzzone Bereich 1 Monat nach der Injektion von Adeno-assoziierten Virus (2 x 10 12 DNAse resistent Partikel rAAV1 CMV Lac-Z). Eine verstärkte Expression wurde in das Virus injiziert Bereich gefunden. <img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Auswurffraktion von links Ventrikulographie gemessen 1 Monat nach Myokard-Infarkt Schöpfung. Linken Ventrikels ist auf 92,5 ml erweitert und Vorderwand Bewegung ist erheblich beeinträchtigt. <img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Die Querschnitte des linken Ventrikels nach 1 Monat nach Myokard-Infarkt Errichtung durch Triphenyltetrazoliumchlorid gefärbt, um abzugrenzen Bereich der Narbe. Eine große Narbe von der Basis bis zur Spitze des vorderen Wand zu sehen ist. <img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Beta-gal-Expression durch Adeno-assoziierte Virus (2 x 10 12 DNAse beständig Teilchen rAAV1 CMV Lac-Z) induziert. Eine verstärkte Expression ist in der Grenzzone zwischen dem Infarkt und dem normalen Gewebe, 1 Monat nach der intrakoronare Virus Injektion gefunden. Rechten unteren Bild zeigt die negative Kontrolle, bei denen nur physiologische Kochsalzlösung in die Herzkranzgefäße injiziert wurde mit dem gleichen Protokoll.

<ol><li>Perez de Prado, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Closed-chest+experimental+porcine+model+of+acute+myocardial+infarction-reperfusion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Closed-chest experimental porcine model of acute myocardial infarction-reperfusion.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 60, 301-306 (2009).</li>
<li>Angeli, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+remodeling+after+myocardial+infarction%3A+characterization+of+a+swine+model+on+beta-blocker+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Med%22%5BJournal%5D)">Left ventricular remodeling after myocardial infarction: characterization of a swine model on beta-blocker therapy.</a> Comp Med. 59, 272-279 (2009).</li>
<li>Urdaneta, F., Lobato, E. B., Kirby, D. S. &amp, Sidi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treating+myocardial+stunning+randomly%2C+with+either+propofol+or+isoflurane+following+transient+coronary+occlusion+and+reperfusion+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Card+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Treating myocardial stunning randomly, with either propofol or isoflurane following transient coronary occlusion and reperfusion in pigs.</a> Ann Card Anaesth. 12, 113-121 (2009).</li>
<li>Jaski, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+upregulation+by+percutaneous+administration+of+gene+therapy+in+cardiac+disease+%28CUPID+Trial%29%2C+a+first-in-human+phase+1%2F2+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22J+Card+Fail%22%5BJournal%5D)">Calcium upregulation by percutaneous administration of gene therapy in cardiac disease (CUPID Trial), a first-in-human phase 1/2 clinical trial.</a> J Card Fail. 15, 171-181 (2009).</li>
</ol>

Alle Autoren haben keinerlei kommerzielle Vereinigungen, die als Interessenkonflikt im Zusammenhang mit dem Manuskript darstellen könnte.

Unter den verschiedenen Ursachen der Herzinsuffizienz, Ischämie bei weitem die häufigste in der Ätiologie. Zur Überwindung dieser schweren Krankheit werden verschiedene therapeutische Ansätze entwickelt. Eine sorgfältige Evaluierung von Therapien erforderlich sind, bevor diese vielversprechenden Therapien können in den Kliniken angewandt werden. Daher ist die Einrichtung eines ischämischen Herzinsuffizienz-Modell, dass die klinischen Bedingungen der Patienten stellt entscheidend für die Entwicklung einer Herzinsuffizien...

<table><tbody><tr><td>Telazol</td><td>Fort Dodge Animal Health</td><td>0856-9050-49</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-270-20</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-540-11</td><td></td></tr><tr><td>Amiodaron</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-616-03</td><td></td></tr><tr><td>Atropinsulfat</td><td>Med-Pharmex</td><td>54925-063-10</td><td></td></tr><tr><td>Potassiumacetat</td><td>American Regent Inc.</td><td>2053-25</td><td></td></tr><tr><td>Nitroglycerin</td><td>American Regent Inc.</td><td>4810-25</td><td></td></tr><tr><td>Salix (Furosemid)</td><td>Intervet Inc.</td><td>710461</td><td></td></tr><tr><td>5-Fr-Hockey-Stick-Katheter</td><td>Cordis</td><td>556-278-0L</td><td></td></tr><tr><td>7-Fr-Hockey-Stick-Katheter</td><td>Cordis</td><td>778-278-00</td><td></td></tr><tr><td>Koronardraht</td><td>Abbott Laboratories</td><td>1044588</td><td></td></tr><tr><td>Koronarballon</td><td>Abbott Laboratories</td><td>1009447-08</td><td></td></tr><tr><td>8-Fr-Schleuse</td><td>Terumo Medical Corp.</td><td>RSS801</td><td></td></tr></tbody></table>

gentransfer bei ischämischen herzinsuffizienz in einem vorklinischen modell

Gene Transfer for Ischemic Heart Failure in a Preclinical Model

Verschiedene neue Technologien werden für Patienten mit Herzinsuffizienz entwickelt. Gut etablierte präklinische Auswertungen notwendig sind, um ihre Wirksamkeit und Sicherheit zu bestimmen. Die Gentherapie mit viralen Vektoren ist einer der vielversprechendsten Ansätze für die Behandlung von Herzerkrankungen. Viral Lieferung von verschiedenen Genen, indem der Träger-Gen hat unermessliche therapeutisches Potenzial. In diesem Video wird der vollständige Prozess von einem Tiermodell der Herzinsuffizienz Schöpfung durch Gentransfer folgten präsentiert mit einem Schweine-Modell. Zunächst wird Myokardinfarkt durch Verschluss der proximalen linken vorderen absteigenden Koronararterie angelegt. Herz Umbau Ergebnisse bei chronischer Herzinsuffizienz. Einzigartig an unserem Modell ist eine ziemlich große Narbe, die wirklich spiegelt Patienten mit schwerer Herzinsuffizienz, die aggressive Therapie für positive Ergebnisse erfordern. Nach Myokardinfarkt Gründung und Entwicklung von Narbengewebe, ist eine intrakoronare Injektion des Virus bei gleichzeitiger Nitroglycerin Infusion unter Beweis gestellt. Unsere Injektion Methode bietet eine einfache und effiziente Gentransfer mit erhöhter Genexpression. Diese Kombination aus einem Myokardinfarkt Schweinegrippe-Modell mit intrakoronare Virus Lieferung hat sich eine konsistente und reproduzierbare Methodik, die nicht nur hilft, die Wirkung einzelner Gen-Test, sondern auch die Wirksamkeit von vielen Genen als therapeutische Kandidaten.

Eine Methode des Gentransfers für die Behandlung von ischämischen Herzinsuffizienz wird anhand einer Schweinegrippe-Modell des Myokardinfarkts. Unsere einfache und reproduzierbare Methode ermöglicht es uns, leicht Beurteilung der Wirksamkeit verschiedener Gen-Transfers mit einer sehr einfachen und reproduzierbaren Art und Weise.

Gentransfer bei ischämischen Herzinsuffizienz in einem vorklinischen Modell

Für Patienten mit Herzinsuffizienz werden verschiedene neue Technologien entwickelt. Fundierte präklinische Evaluierungen sind erforderlich, um ... zu bestimmen.

Gen-Therapie. Die Verwendung viraler Vektoren ist einer der vielversprechendsten Ansätze zur Behandlung von Herzerkrankungen. In diesem Video werden die Verfahren zur Erzeugung eines ischämischen Herzinsuffizienz-Modells sowie die Gendosierung mittels viralem Vektor vorgestellt.Der erste Schritt besteht darin, ein Myokardinfarktmodell an einem Schwein zu erzeugen. Dazu wird ein Koronardraht in die Koronararterie vorgeschoben, gefolgt von einem Okklusionsballon. Mithilfe eines endovaskulären Zugangs wird der Ballon aufgeblasen, um die Koronararterie vollständig zu verschließen.Dadurch entsteht ein großes Infarktareal im vorderen Bereich, und die Schweine entwickeln eine chronische Herzinsuffizienz. Der nächste Schritt ist die Virusinjektion. Virale Vektoren werden langsam in die Koronararterie injiziert.Es wird über das Blutkreislaufsystem transportiert und im Myokard verteilt. Das Virus gelangt in die Kardiomyozyten, anschließend in den Zellkern und sendet Signale zur Proteinsynthese aus. Die exprimierten Proteine stärken die Herzfunktion und verbessern die Gesamtleistung.In diesem Video stellen wir Verfahren für eine Gentherapie bei ischämischer Herzinsuffizienz unter Verwendung eines Schweinemodells vor. Zunächst zeigen wir, wie man eine myokardiale Ischämie in einem Schwein erzeugt, und anschließend demonstrieren wir die intrakoronare Applikation eines viralen Vektors. Mit diesem Verfahren testen wir die Wirksamkeit und Sicherheit verschiedener Gentransfermethoden.Beginnen wir also. Zur Einleitung des Verfahrens wird beim Schwein eine Anästhesie mit Telazol induziert. Anschließend wird eine intravenöse Linie in der Ohrvene gelegt und das Schwein intubiert.Legen Sie das Schwein in Rückenlage. Verwenden Sie Propofol zur Vollnarkose während des Experiments. Um den Blutdruck aufrechtzuerhalten, reinigen Sie die Leistenregion mit Alkohol, gefolgt von Jod. Bedecken Sie die Einstichstelle mit einem sterilen Tuch und bereiten Sie alles steril vor. Punktionieren Sie die Arteria femoralis mit einer 18-G-Nadel nach der Seldinger-Technik. Sobald ein pulsierender Rückfluss sichtbar ist, führen Sie den Draht ein und setzen anschließend die Hülse ein. Nach der Hülse-Injektion spritzen Sie Heparin, um die Bildung eines Thrombus während des Experiments zu verhindern.Bereiten Sie als Nächstes einen Beutel mit Kochsalzlösung, der 75 Milligramm Amiodaron, 20 Milliäquivalente Kalium und 20 Milligramm Atropin enthält, vor und verwenden Sie eine Infusionsgeschwindigkeit von 150 Millilitern pro Stunde. Gleichzeitig wird eine intramuskuläre Injektion von 75 Milligramm Amiodaron verabreicht. Führen Sie den Führungskatheter in das Osteum der linken Koronararterie ein und fertigen Sie ein Angiogramm an, um die koronare Anatomie zu überprüfen.Führen Sie den Draht vorsichtig in den linken vorderen absteigenden Koronararterienast ein. Führen Sie dann den Ballon über den Draht in die Koronararterie fort. Fertigen Sie ein Angiogramm an, um die Position des Ballons zu überprüfen.Es sollte eine weitere Angiographie aus einem anderen Winkel angefertigt werden, um die Position des Ballons zu überprüfen. Anschließend den Ballon schrittweise auf drei ATM aufblasen. Eine weitere Angiographie durchführen, um die Okklusion der Arterie zu bestätigen.Überwachen Sie das Schwein mittels arteriellem Druck und Elektrokardiographie. Gelegentlich gerät das Schwein in eine ventrikuläre Fibrillation. Defibrillieren Sie das Schwein so schnell wie möglich mit einem Gleichstrom-Schock.Falls der Versuch fehlschlägt, komprimieren Sie den Brustkorb, bis die Kondensatoren des Kardioverters geladen sind, und geben Sie einen weiteren Schock ab. Beobachten Sie 90 Minuten lang und entleeren Sie anschließend den Ballon. Sobald sich der Blutdruck und die Arrhythmie stabilisiert haben, entfernen Sie die Hülse und versorgen das Schwein. Geben Sie eine intramuskuläre Injektion von Nitroglycerin und Furosemid sowie eine Übernacht-Infusion mit Amiodaron. Bereiten Sie sich mit Haube, Maske, Schutzbrille, Kittel und Handschuhen vor. Das Schwein wird genauso vorbereitet wie bei der Erzeugung eines Myokardinfarkts.Führen Sie einen Koronardraht in den linken vorderen absteigenden Zweig der Koronararterie und einen weiteren in den linken Ramus circumflexus ein. Platziere einen Katheter am Ostium. Entnehmen Sie 20 Milliliter arterielles Blut, wobei 10 Milliliter für die Virusinjektion verwendet werden und der Rest zum Spülen dient.Mischen Sie das Virus mit 10 Milliliter Blut und verdünnen Sie es mit physiologischer Kochsalzlösung auf 20 Milliliter. Verdünnen Sie anschließend das verbleibende Blut mit physiologischer Kochsalzlösung auf 20 Milliliter und teilen Sie es auf zwei Spritzen auf. Verbinden Sie die Spritze, die das mit dem Virus gemischte Blut enthält, mit dem Katheter und bereiten Sie die Infusion vor.Es wird eine intravenöse Injektion von 20 Mikrogramm pro Minute Nitroglycerin über die Ohrvene begonnen, wobei ein Angiogramm angefertigt wird, um die Position des Katheters zu überprüfen. Anschließend wird die Virusinjektion mit einer Geschwindigkeit von einem Milliliter pro Minute begonnen, sobald 15 Milliliter in den linken Koronararterien injiziert wurden. Der Spritze wird gewechselt, um eine Spülung vorzunehmen, und dieselbe Injektionsgeschwindigkeit wird verwendet. Nach der Injektion in die linke Koronararterie wird das gleiche Verfahren an der rechten Koronararterie mit den verbleibenden fünf Millilitern Blut, die das Virus enthalten, durchgeführt.Ein Monat nach der Erzeugung des Myokardinfarkts entwickelt das Tier Herzinsuffizienz mit eingeschränkter Wandbewegung und einer dilatierten Herzkammer. Die durchschnittliche Ejektionsfraktion einen Monat nach dem Myokardinfarkt beträgt in diesem Modell 36 % und liegt signifikant unter der von Schweinen gleicher Größe ohne Myokardinfarkt. Das durchschnittliche enddiastolische Volumen beträgt 83 Milliliter, während der Durchschnittswert einer Kontrolle bei 42 Milliliter liegt.DP DT war ebenfalls bei den Schweinen mit Myokardinfarkt signifikant niedriger. Dies sind die Querschnitte des linken Ventrikels. Einen Monat nach dem Myokardinfarkt findet sich eine große Narbe von der Basis bis zur Spitze der inneren Wand.Auf diesem Bild ist die Gale-Expression zu sehen. Einen Monat nach der Genübertragung mittels eines dentalen assoziierten Virus wurde eine signifikante Expression im injizierten Virusgebiet nachgewiesen. Wir haben Ihnen soeben gezeigt, wie man einen myokardialen Effekt bei einem Schwein sowie eine Coronavireninjektion erzeugt.Diese Kombination aus einem I-Fehler-Modell und der Genübertragung ist eine einfache und reproduzierbare Methode, um verschiedene Arten von Gentherapien bei fortschreitender Erkrankung zu testen. Vielen Dank fürs Zuschauen und für Ihre zukünftigen Experimente mit uns.

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Neue therapeutische Strategien in der kardialen regenerativen Medizin erfordern umfangreiche und detaillierte Studien in großen präklinischen Tiermodellen, bevor sie für den Einsatz beim Menschen betrachtet werden können. Hier zeigen wir eine perkutane Kontrast-Echokardiographie-geführte Intramyocardial-Injektionstechnik bei Kaninchen, die ist wertvoll für Hypothesentests die Wirksamkeit solcher neuartiger Therapien.

Perkutane Kontrast-Echokardiographie-geführte Intramyocardial-Injektion und Zelle-Lieferung in einem großen präklinischen Modell

Hier präsentieren wir ein Protokoll für Herz-Kreislauf-spezifische Genmanipulation bei Mäusen. Unter Narkose waren die Mäuseherzen durch den vierten intercostalneuralgie Raum ausgelagert. Anschließend, blot Adenoviren, die Codierung bestimmter Gene mit einer Spritze das Myokard injiziert wurden, gefolgt von Protein Ausdruck Messung via in-Vivo Bildgebung und Western Analyse.

Eine einfache und effiziente Methode zur In Vivo Cardiac-spezifische Genmanipulation durch Injektion von Intramyocardial bei Mäusen

Hier präsentieren wir ein Protokoll für die Induktion der linken Herzkammer Cryoinjury gefolgt von der Implantation eines Herzmuskels Patches, Menschliche iPS-Zellen Herzzellen in einem Meerschweinchen-Modell abgeleitet.

Implantation von HiPSC abgeleitete Herzmuskel Patches nach Myokard-Schädigung in einem Meerschweinchen-Modell

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Ein präklinisches Porcine-Modell der orthotopischen Herztransplantation

Wir versuchten, ein Schweinemodell für Herzinsuffizienz zu etablieren, das durch linke Zirkumflexarterienverstopfung und schnelles Tempo verursacht wurde, um die Wirkung und Sicherheit der intramyokardialen Verabreichung von Stammzellen für zellbasierte Therapien zu testen.

Erstellung eines Schweinemodells für postmyokarde Infarkt-Herzinsuffizienz für die Stammzellbehandlung

Dieses Protokoll stellt eine einfache und kohärente Möglichkeit dar, ein Gen von Interesse mit modRNA nach Myokardinfarkt bei Mäusen vorübergehend zu regulieren.

Lieferung von Modified mRNA in einem Myokardinfarkt-Mausmodell

Wir präsentieren ein Modell der ischämischen Herzkrankheit mit Kardiomyozyten aus humaninduzierten pluripotenten Stammzellen, zusammen mit einer Methode zur quantitativen Bewertung von Gewebeschäden, die durch Ischämie verursacht werden. Dieses Modell kann eine nützliche Plattform für das Screening von Arzneimitteln und weitere Forschung endemische Herzkrankheiten bieten.

Modell der ischämischen Herzkrankheit und videobasierter Vergleich der Kardiomyozytenkontraktion mit hiPSC-abgeleiteten Kardiomyozyten

Dieses Protokoll zielt darauf ab, ein biogedrucktes 3D-Pflaster auf das Epikardium von infarktierten Mäusen zu transplantieren, die Herzinsuffizienz modellieren. Es enthält Details über Anästhesie, die chirurgische Brustöffnung, permanente Ligation der linken vorderen absteigenden (LAD) Koronararterie und die Anwendung eines biobedruckten Pflasters auf den Infarktbereich des Herzens.

Transplantation eines biobedruckten 3D-Patches in einem Murine-Modell des Myokardinfarkts

Die myokardiale Gentherapie bei ischämischen Herzerkrankungen ist vielversprechend für zukünftige Therapeutika. Hier stellen wir ein Großtiermodell vor, um die Wirksamkeit der Gentherapie im ischämischen Herzen zu evaluieren.

Großtiermodell zur Evaluierung der Wirksamkeit der Gentherapie beim ischämischen Herzen

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Ein porcines heterotopes Herztransplantationsprotokoll für die Abgabe von Therapeutika an ein kardiales Allotransplantat

Das vorliegende Protokoll beschreibt Methoden zur Transgenexpression in Ratten- und Mausherzen durch direkte intramyokardiale Injektion des Virus unter echokardiographischer Leitung. Methoden zur Beurteilung der Anfälligkeit des Herzens für ventrikuläre Arrhythmien durch die programmierte elektrische Stimulation isolierter, Langendorff-durchbluteter Herzen werden hier ebenfalls erläutert.

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Erfahren Sie Gentransfer bei ischämischer Herzinsuffizienz mit einem Schweinemodell. Diese Methode ermöglicht die einfache und reproduzierbare Evaluierung verschiedener Gentherapieansätze.

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