Erzeugung chemoresistenter Prostatakrebszellen: Ein Verfahren zur Gewinnung arzneimittelresistenter Krebszellen in vitro

0 Ansichten4:33 Min. • April 30th, 2023

Um chemoresistente Zellen zu erzeugen, beginnen Sie mit der Einnahme von Suspension aus menschlichen Prostatakrebszellen in einem Kulturkolben. Der Kolben wird inkubiert, um die Adhärenz der Zellen und ihre Teilung zur Bildung einer Monoschicht zu erleichtern.

Ergänzen Sie die Zellen mit einer krebshemmenden Lösung in optimaler Konzentration und inkubieren Sie. Die Wirkstoffmoleküle dringen in die Zellen ein und induzieren in empfindlichen Zellen die Apoptose.

Einige Zellen exprimieren spezielle Wirkstoffausflusstransporter oder Pumpen, die die Medikamente periodisch entfernen. Dieser Mechanismus verhindert die Akkumulation von Medikamenten, so dass diese Zellen der Wirkung von Krebsmedikamenten standhalten und chemoresistent werden können.

Aspirieren Sie die wirkstoff- und rückstandshaltigen Medien aus der Kultur. Ergänzen Sie mit frischen, medikamentenfreien Nährmedien, um das Wachstum chemoresistenter Zellen zu unterstützen. Entsorgen Sie die verbrauchten Medien. Die Zellen werden trypsinisiert, um sie aus dem Kulturkolben zu lösen und in ein Röhrchen zu überführen.

Zentrifugieren Sie das Röhrchen, um die Zellen zu pelletieren. Entfernen Sie den trypsinhaltigen Überstand. Resuspendieren Sie die Zellen in frischen Wachstumsmedien. Züchten Sie die Zellen in einem neuen Kulturkolben.

Wiederholen Sie anschließend die Schritte der medikamentösen Behandlung und der Zellkultur, um die chemoresistenten Zellen eskalierenden Dosen desselben Krebsmedikaments auszusetzen. Bei dieser Technik wird die Kultur gesiebt, indem alle empfindlichen Zellen eliminiert werden, um einen Pool hochchemoresistenter überlebender Zellen zu erzeugen.

Zu Beginn dieses Verfahrens werden DU145- oder 22Rv1-Zellen in die 150-Zentimeter-Quadratkolben mit 20 Millilitern Medium plädiert. Nach 24 Stunden, wenn die Zellen bei etwa 70 % bis 80 % Konfluenz sind, fügen Sie Docetaxel bei 5 Nanomolaren hinzu.

Nach 72 Stunden aspirieren Sie das arzneimittelhaltige Medium und fügen Sie frisches Docetaxel-freies Medium hinzu. Wechseln Sie das Medium alle 3 bis 4 Tage und warten Sie 1 bis 2 Wochen, bis Klone im Kolben erscheinen. Saugen Sie das Medium an. Waschen Sie die Zellen vorsichtig mit 15 Millilitern PBS und inkubieren Sie sie mit 4 Millilitern 0,05 % Trypsin-EDTA für 3 bis 5 Minuten bei 37 Grad Celsius, um die Zellen von der Kolbenoberfläche zu lösen. Anschließend werden die trypsinisierten Zellen mit 8 Millilitern frischem Medium aus dem Kolben resuspendiert.

Bündeln Sie die Zellen aus allen behandelten Kolben und pelletieren Sie sie durch Zentrifugation. Entfernen Sie anschließend den Überstand. Resuspendieren Sie das Zellpellet in 20 Millilitern frischem Medium und plattieren Sie die Zellen in 150-Zentimeter-Quadratkolben.

Nach 24 Stunden, wenn die Zellen bei etwa 70 % bis 80 % Konfluenz sind, fügen Sie erneut 5 nanomolare Docetaxel hinzu. Wiederholen Sie die Verfahren wie zuvor gezeigt, bis die Klone im Kolben erscheinen. Dann die Zellen erneut in 150 Zentimeter große quadratische Kolben füllen.

Nach 24 Stunden, wenn die Zellen bei etwa 70 % bis 80 % Konfluenz sind, behandeln Sie sie mit 10 nanomolaren Docetaxel. Wiederholen Sie die gleichen Schritte in einer dosissteigernden Docetaxel-Methode und legen Sie die überlebenden Klone nach jeder Konzentrationsbehandlung zusammen. Am Ende des Prozesses erhalten Sie einen Pool resistenter Zellen, der für den experimentellen Einsatz bereit ist.

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026