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Beginnen Sie mit einer Gewebeprobe eines Prostatatumors. Resuspendieren Sie es in einem gekühlten Lysepuffer, um die Zelllyse zu starten. Verwenden Sie einen Homogenisator, um die Gewebestrukturen weiter aufzubrechen und ihre intrazellulären Bestandteile freizusetzen. Beschallen Sie die Probe auf Eis, um eine vollständige Zelllyse zu gewährleisten, und scheren Sie die DNA, um Interferenzen während der Peptidverarbeitung zu vermeiden. Erhitzen Sie das Lysat, um die Tertiärstruktur der Proteine zu stören und sich zu entfalten.
Die Reduktionsmittel im Puffer spalten die Disulfidbindungen zwischen Cysteinresten. Anschließend werden die Alkylierungsmittel im Pufferalkylat von Thiolgruppen reduzierter Cysteine freisetzen, um eine Reformation der Disulfidbindung zu verhindern. Die zusätzlichen Denaturierungsmittel im Puffer erleichtern die kontrollierte Denaturierung und die weitere Entfaltung von Proteinen.
Zentrifuge, um die Gewebereste und alle Verunreinigungen zu pelletieren. Sammeln Sie den Überstand mit dem Proteingemisch in einem frischen Röhrchen. Fügen Sie das Lysyl-Endopeptidase-Enzym hinzu, um die Peptidbindungen in Proteinen am C-Terminus der Lysinreste zu spalten und große Peptide zu bilden. Weiterhin wird mit dem Enzym Trypsin behandelt, um die Peptidbindungen am C-Terminus von Lysin- und Argininresten zu spalten und kleinere Peptide zu erzeugen. Übertragen Sie das Gemisch in eine Zentrifugalfilteranlage.
Zentrifuge, damit die verdauten Peptide durch die Poren der Filtermembran dringen und sich als Durchfluss sammeln können. Größere Fragmente verbleiben als Retentat.
Um Tumorgewebe zu gewinnen, wiegen Sie den Tumor und fügen Sie in einem Kulturreagenzglas 2 Milliliter eiskalten Lysepuffer pro 100 Milligramm Gewebe hinzu. Verwenden Sie dann einen Hand- oder Tischhomogenisator, um das Lysat zu homogenisieren.
Um die Probe zu reduzieren und zu alkylieren, erhitzen Sie das Röhrchen 5 Minuten lang auf 95 Grad Celsius und kühlen Sie die Probe dann 15 Minuten lang auf Eis ab. Während Sie noch auf Eis sind, beschallen Sie das Lysat dreimal. Erhitzen Sie die Probe dann 5 Minuten lang auf 95 Grad Celsius.
Legen Sie dieses Beschallungsröhrchen in einen schwingenden Schaufelrotor und zentrifugieren Sie das Lysat bei 3.500 x g und 15 Grad Celsius für 15 Minuten. Sammeln Sie dann den Überstand und entsorgen Sie das Pellet. Um das Lysat zu verdauen, verwenden Sie 100 millimolare Tris, um die Probe um das 12-fache zu verdünnen, um die Menge an Guanidinium zu reduzieren. Für 5 Milligramm Protein fügen Sie 10 Mikrogramm Lysyl-Endopeptidase oder Lys-C hinzu und inkubieren Sie die Probe 5 bis 6 Stunden lang bei Raumtemperatur.
Bereiten Sie 1 Milligramm pro Milliliter TPCK-behandeltes Trypsin in 1 Millimolar HCl mit 20 Millimolar Calciumchlorid und Trypsin zu, die in einem Verhältnis von 1 bis 100 Trypsin zu Protein hinzugefügt werden. Inkubieren Sie die Probe 3 Stunden lang bei 37 Grad Celsius. Geben Sie dann ein zusätzliches Aliquot Trypsin in das Röhrchen und inkubieren Sie die Probe über Nacht bei 37 Grad Celsius.
Geben Sie die Probe in einen 15-Milliliter-Sperrfilter mit 10 kDa. Zentrifugieren Sie die Probe in einem Schwingeimer oder Festwinkelrotor bei 3.500 x g und 15 Grad Celsius, bis das Retentatvolumen weniger als 250 Mikroliter beträgt. Sammeln Sie dann den Durchfluss und verwerfen Sie das Retentat.