Isolierung von zirkulierender zellfreier DNA (cfDNA): Ein Membranverfahren auf Siliziumdioxidbasis zur Extraktion von cfDNA aus Blutplasma von Krebspatienten

0 Ansichten4:42 Min. • July 8th, 2025

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Zirkulierende zellfreie DNAs oder cfDNAs sind kurze DNA-Fragmente, die hauptsächlich von Krebszellen freigesetzt werden, die sich in der Apoptose befinden. cfDNAs sind vielversprechende Biomarker für Krebs und können aus Körperflüssigkeiten wie Plasma isoliert werden.

Um cfDNA zu isolieren, wird zunächst eine Plasmaprobe von einem Krebspatienten entnommen. Behandeln Sie das Plasma anschließend mit einem Lysepuffer, der Proteinase K, chaotrope Salze und Träger-RNA enthält. Die chaotropen Salze denaturieren Proteine und setzen gebundene cfDNAs aus Proteinen frei. Proteinase K inaktiviert Nukleasen und minimiert dadurch den cfDNA-Abbau.

Geben Sie danach den gewünschten Bindungspuffer in die Probe. Montieren Sie eine Spin-Säule mit einer Festphasen-Siliziumdioxid-Matrix auf dem Vakuumgerät. Laden Sie die Stichprobe in die Spalte. Wenden Sie ein Vakuum an, um die Probe durch die Kieselsäuremembran zu leiten.

Die Träger-RNA bindet unspezifisch an die Röhrchenwände. Diese unspezifische Bindung zusammen mit dem Vorhandensein von Salzen im Puffer erleichtert die Bindung von cfDNA an die Siliziumdioxidmembran und erhöht die Rückgewinnung von cfDNAs. Die Proteine und andere Verunreinigungen halten sich nicht auf der Membran zurück.

Lege nun die Spin-Säule auf ein Auffangrohr. Zentrifugieren, um Restlysat zu entfernen. Fügen Sie einen geeigneten Waschpuffer hinzu und zentrifugieren Sie, um die Salze und alle verbleibenden Verunreinigungen von der Säule zu entfernen. Übertragen Sie schließlich die Säule in ein frisches Sammelröhrchen und fügen Sie einen geeigneten Elutionspuffer hinzu. Zentrifugen, um die Nukleinsäuren einschließlich cfDNAs in das Röhrchen zu eluieren.

Um zirkulierende zellfreie DNA aus einer Patientenplasmaprobe zu isolieren, fügen Sie 100 Mikroliter Proteinase K und 800 Mikroliter Lysepuffer hinzu, ergänzt mit einem Mikrogramm Träger-RNA zu 1 Milliliter Patientenplasma. Pulsieren Sie die Lösung 30 Sekunden lang gründlich, bevor Sie sie 30 Minuten lang bei 60 Grad Celsius inkubieren. Am Ende der Inkubation geben Sie 1,8 Milliliter Bindungspuffer in das Röhrchen und mischen Sie es gründlich mit 15 bis 30 Sekunden Pulswirbel.

Nach einer 5-minütigen Inkubation auf Eis setzen Sie eine Kieselsäuremembransäule in ein Vakuumgerät ein, das mit einer Vakuumpumpe verbunden ist, und setzen Sie einen 20-Milliliter-Schlauchverlängerer fest in die offene Säule ein, um ein Auslaufen der Probe zu verhindern. Gießen Sie am Ende der Inkubation die Mischung vorsichtig in den Schlauchverlängerer und schalten Sie die Vakuumpumpe ein. Wenn das gesamte Lysat vollständig durch die Säulen gelaufen ist, schalten Sie die Vakuumpumpe aus, lassen Sie den Druck auf null Millibar ab und entsorgen Sie den Röhrenverlängerer vorsichtig, ohne die angrenzenden Säulen zu verunreinigen.

Übertragen Sie die Säule zur Zentrifugation in ein Sammelröhrchen, um jegliches Restlysat zu entfernen. Nachdem Sie den Durchfluss verworfen haben, geben Sie 600 Mikroliter Waschpuffer-1 für eine zweite Zentrifugation in die Säule. Nachdem Sie den Durchfluss verworfen haben, zentrifugieren Sie die Säule erneut mit 750 Mikrolitern Waschpuffer-2. Nachdem Sie den Durchfluss verworfen haben, geben Sie 750 Mikroliter 96 % bis 100 % Ethanol für eine zusätzliche Zentrifugation in die Säule.

Übertragen Sie die Säule für eine weitere Zentrifugation in ein neues 2-Milliliter-Sammelröhrchen, bevor Sie die Membransäulenbaugruppe für 10 Minuten in ein neues 2-Milliliter-Sammelröhrchen bei 56 Grad Celsius einsetzen. Am Ende der Inkubation überführen Sie die Säule in ein neues 1,5-Milliliter-Elutionsröhrchen und geben Sie 50 Mikroliter Elutionspuffer für eine 3-minütige Inkubation bei Raumtemperatur in die Säule. Zentrifugieren Sie dann die zurückgewonnene Lösung 1 Minute lang bei 20.000 x g, um die Nukleinsäuren zu eluieren.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026