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ATP-abhängige Chromatin-Remodeling-Proteine regulieren die Genexpression in dicht gepacktem Chromatin, indem sie die DNA-Konformation auf ATP-abhängige Weise verändern.
Um Chromatin-Remodeler-DNA-Wechselwirkungen mit Hilfe der Zirkulardichroismus- oder CD-Spektroskopie zu untersuchen, nehmen Sie eine Lösung von doppelsträngigen DNA-Oligonukleotiden. Erhitzen, um die Oligonukleotide zu denaturieren, und auf Eis legen.
Durch die schnelle Abkühlung renaturiert die DNA und bildet Sekundärstrukturen. Der Übergangsbereich von Doppel- zu Einzelstrang bietet eine optimale Bindungsstelle für die Chromatin-Remodeler.
Geben Sie die hitzegekühlte DNA in eine Küvette. Fügen Sie einen Puffer hinzu, der ATP-abhängigen Chromatin-Remodeler, ATP und Magnesiumionen enthält.
Der Remodeler bindet an die DNA, gefolgt von der Bindung von ATP mit Magnesiumionenkomplex an das Protein – und aktiviert es. Der aktivierte Remodeler hydrolysiert ATP – und induziert so eine Stammschleifenkonformation in der DNA.
Lassen Sie links und rechts zirkular polarisiertes Licht – mit einer Phasendifferenz von 90° – durch die Probe. Optisch absorbiert chirale DNA das linke und rechte zirkular polarisierte Licht in unterschiedlichem Ausmaß.
Die differentielle Absorption, die als Zirkulardichroismus bezeichnet wird, führt dazu, dass das transmittierte Licht elliptisch polarisiert wird, was als Elliptizität gemessen wird. Zwei positive Peaks bei bestimmten Wellenlängen in den CD-Spektren bestätigen die Stem-Loop-Struktur.
Fügen Sie EDTA hinzu, um die Magnesiumionen zu chelatisieren und die ATPase-Aktivität zu hemmen.
Eine Änderung der CD-Spektren bei der Chelatbildung – die einen negativen Peak und einen breiten positiven Peak bei bestimmten Wellenlängen zeigt – deutet auf eine Störung der Stamm-Loop-Konformation in Abwesenheit der ATP-Hydrolyse hin.
Sammeln Sie die CD-Spektren in hochtransparenten Quarzküvetten. Verwenden Sie entweder rechteckige oder zylindrische Küvetten. Um die Küvetten zu reinigen, waschen Sie sie mehrmals mit Wasser und scannen Sie dann das Wasser oder den Puffer in der Küvette, um zu überprüfen, ob sie sauber ist.
Verwenden Sie für die Reaktionen PAGE-gereinigte DNA-Oligonukleotide. Für eine schnelle Abkühlung erhitzen Sie die DNA auf dem Heizblock 3 Minuten lang bei 94 Grad Celsius und kühlen sie sofort auf Eis ab. Für eine langsame Abkühlung lassen Sie die DNA nach dem Erhitzen auf 94 Grad Celsius für 3 Minuten auf Raumtemperatur mit einer Geschwindigkeit von 1 Grad Celsius pro Minute abkühlen.
Um die Basislinienspektren aufzuzeichnen, richten Sie insgesamt 5 Kontrollreaktionen nacheinander in 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen ein. Halten Sie das Reaktionsvolumen bei allen Reaktionen bei 300 Mikrolitern.
Um die CD-Spektren aufzunehmen, werden insgesamt fünf experimentelle Reaktionen nacheinander in 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen aufgebaut.
Um den Scan aufzuzeichnen, schalten Sie das Gas ein und das CD-Spektrometer ein. Schalten Sie nach 10 bis 15 Minuten die Lampe ein, schalten Sie das Wasserbad ein und stellen Sie die Temperatur der Halterung auf 37 Grad Celsius ein.
Öffnen Sie als Nächstes die CD-Spektrum-Software und stellen Sie die Temperatur auf 37 Grad Celsius, den Wellenlängenbereich auf 180 bis 300 Nanometer, die Zeit pro Punkt auf 0,5 Sekunden und die Scanzahl auf 5 ein. Klicken Sie dann auf den Pro-Data Viewer, erstellen Sie eine neue Datei und benennen Sie sie mit den Details des Experiments und dem Datum um.
Mischen Sie anschließend die Basis- und experimentellen Reaktionen durch Pipettieren und übertragen Sie die Reaktionsmischungen vorsichtig nacheinander auf die Küvette, wobei Sie darauf achten, dass keine Luftblasen vorhanden sind.
Wenn Sie ein Zeitverlaufsexperiment durchführen, inkubieren Sie die Reaktionen bei 37 Grad Celsius für die erforderliche Zeit. Führen Sie dann den Scan durch. Fügen Sie dem Puffer, der DNA, ATP, Magnesium und Protein enthält, EDTA hinzu, um die ATP-Hydrolyse zu stoppen. Um die ATPase-Aktivität vollständig zu hemmen, erhöhen Sie die EDTA-Konzentration und die Inkubationszeit.
Subtrahieren Sie die Basislinien von den entsprechenden Reaktionen in der Software und glätten Sie die Daten entweder in der CD-Spektrum-Software oder in der Daten-Plotting-Software. Erstellen Sie dann ein Diagramm der Wellenlänge gegen die mittlere Restelliptizität und analysieren Sie die Peaks.