Name: Eine Einführung in die parasitischen Wespen Drosophila Und die antiparasitäre Immune Response (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 4 s
Description: Erfahren Sie, wie man parasitoide Wespen auf Drosophila-Larven züchtet und Immunorgane wie Lymphdrüse und Fettkörper präpariert. Diese Methode ermöglicht die Analyse von Immunantworten nach Infektion.

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Wir danken Prof. Todd Schlenke für Trichopria drosophilae, Prof. Tony Ip für transgene Fliegen-Stämmen, und Prof. Carl Hashimoto für anti-Spätzle-Antikörper. Wir bedanken uns bei gegenwärtigen und früheren Mitgliedern des Labors für ihre Beiträge zu dieser Präsentation. Vom NIH (GM08168 S06, RISE 41399-009 und G12-RR03060), USDA (NRI / USDA CSREES 2006-03817 und 2009-35302-05277) und PSC-CUNY: Diese Arbeit wurde von den folgenden Zuschüssen unterstützt.

<ol><li>Schlenke, T. A., Morales, J., Govind, S., Clark, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrasting+infection+strategies+in+generalist+and+specialist+wasp+parasitoids+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Contrasting infection strategies in generalist and specialist wasp parasitoids of Drosophila melanogaster.</a> PLoS Pathog. 3, 1486-1501 (2007).</li>
<li>Chiu, H., Morales, J., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+immuno-electron+microscopy+localization+of+p40%2C+a+protein+component+of+immunosuppressive+virus-like+particles+from+Leptopilina+heterotoma%2C+a+virulent+parasitoid+wasp+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Virol%22%5BJournal%5D)">Identification and immuno-electron microscopy localization of p40, a protein component of immunosuppressive virus-like particles from Leptopilina heterotoma, a virulent parasitoid wasp of Drosophila.</a> J. Gen. Virol. 87, 461-470 (2006).</li>
<li>Gueguen, G., Rajwani, R., Paddibhatla, I., Morales, J., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VLPs+of+Leptopilina+boulardi+share+biogenesis+and+overall+stellate+morphology+with+VLPs+of+the+heterotoma+clade%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Res%22%5BJournal%5D)">VLPs of Leptopilina boulardi share biogenesis and overall stellate morphology with VLPs of the heterotoma clade.</a> Virus Res. 160, 159-165 (2011).</li>
<li>Paddibhatla, I., Lee, M. J., Kalamarz, M. E., Ferrarese, R., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+for+sumoylation+in+systemic+inflammation+and+immune+homeostasis+in+Drosophila+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Role for sumoylation in systemic inflammation and immune homeostasis in Drosophila larvae.</a> PLoS Pathog. 6, e1001234(2010).</li>
<li>Sorrentino, R. P., Carton, Y., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+immune+response+to+parasite+infection+in+the+Drosophila+lymph+gland+is+developmentally+regulated%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cellular immune response to parasite infection in the Drosophila lymph gland is developmentally regulated.</a> Dev. Biol. , 243-265 (2002).</li>
<li>Sorrentino, R. P., Melk, J. P., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+contributions+of+dorsal+group+and+JAK-Stat92E+pathway+genes+to+larval+hemocyte+concentration+and+the+egg+encapsulation+response+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of contributions of dorsal group and JAK-Stat92E pathway genes to larval hemocyte concentration and the egg encapsulation response in Drosophila.</a> Genetics. 166, 1343-1356 (2004).</li>
<li>Jung, S. H., Evans, C. J., Uemura, C., Banerjee, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+lymph+gland+as+a+developmental+model+of+hematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The Drosophila lymph gland as a developmental model of hematopoiesis.</a> Development. 132, 2521-2533 (2005).</li>
<li>Krzemien, J., Crozatier, M., Vincent, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ontogeny+of+the+Drosophila+larval+hematopoietic+organ%2C+hemocyte+homeostasis+and+the+dedicated+cellular+immune+response+to+parasitism%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Ontogeny of the Drosophila larval hematopoietic organ, hemocyte homeostasis and the dedicated cellular immune response to parasitism.</a> Int. J. Dev. Biol. 54, 1117-1125 (2010).</li>
<li>Martinez-Agosto, J. A., Mikkola, H. K., Hartenstein, V., Banerjee, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hematopoietic+stem+cell+and+its+niche%3A+a+comparative+view%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">The hematopoietic stem cell and its niche: a comparative view.</a> Genes Dev. 21, 3044-3060 (2007).</li>
<li>Lemaitre, B., Hoffmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+host+defense+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The host defense of Drosophila melanogaster.</a> Annu. Rev. Immunol. 25, 697-743 (2007).</li>
<li>Schlegel, A., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lessons+from+%22lower%22+organisms%3A+what+worms%2C+flies%2C+and+zebrafish+can+teach+us+about+human+energy+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Lessons from "lower" organisms: what worms, flies, and zebrafish can teach us about human energy metabolism.</a> PLoS Genet. 3, e199(2007).</li>
<li>Ferrandon, D., Jung, A. C., Criqui, M., Lemaitre, B., Uttenweiler-Joseph, S., Michaut, L., Reichhart, J., Hoffmann, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+drosomycin-GFP+reporter+transgene+reveals+a+local+immune+response+in+Drosophila+that+is+not+dependent+on+the+Toll+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">A drosomycin-GFP reporter transgene reveals a local immune response in Drosophila that is not dependent on the Toll pathway.</a> EMBO J. 17, 1217-1227 (1998).</li>
<li>Bruckner, K., Kockel, L., Duchek, P., Luque, C. M., Rorth, P., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+PDGF%2FVEGF+receptor+controls+blood+cell+survival+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Cell%22%5BJournal%5D)">The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila.</a> Dev. Cell. 7, 73-84 (2004).</li>
<li>Tokusumi, T., Shoue, D. A., Tokusumi, Y., Stoller, J. R., Schulz, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+hemocyte-specific+enhancer-reporter+transgenes+for+the+analysis+of+hematopoiesis+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">New hemocyte-specific enhancer-reporter transgenes for the analysis of hematopoiesis in Drosophila.</a> Genesis. 47, 771-774 (2009).</li>
<li>Tokusumi, T., Sorrentino, R. P., Russell, M., Ferrarese, R., Govind, S., Schulz, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+lamellocyte+transcriptional+enhancer+located+within+the+misshapen+gene+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Characterization of a lamellocyte transcriptional enhancer located within the misshapen gene of Drosophila melanogaster.</a> PLoS One. 4, e6429(2009).</li>
<li>Morales, J., Chiu, H., Oo, T., Plaza, R., Hoskins, S., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biogenesis%2C+structure%2C+and+immune-suppressive+effects+of+virus-like+particles+of+a+Drosophila+parasitoid%2C+Leptopilina+victoriae%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Insect+Physiol%22%5BJournal%5D)">Biogenesis, structure, and immune-suppressive effects of virus-like particles of a Drosophila parasitoid, Leptopilina victoriae.</a> J. Insect Physiol. 51, 181-195 (2005).</li>
<li>Bettencourt, R., Asha, H., Dearolf, C., Ip, Y. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemolymph-dependent+and+-independent+responses+in+Drosophila+immune+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">Hemolymph-dependent and -independent responses in Drosophila immune tissue.</a> J. Cell Biochem. 92, 849-863 (2004).</li>
<li>Melk, J. P., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+analysis+of+Ganaspis+xanthopoda%2C+a+larval+parasitoid+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Developmental analysis of Ganaspis xanthopoda, a larval parasitoid of Drosophila melanogaster.</a> J. Exp. Biol. 202, 1885-1896 (1999).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Das Interesse an Schlupfwespen von Drosophila wird als molekulare Techniken, um ganze Genome entschlüsseln werden effiziente und kostengünstige sprunghaft zu. Jedoch im Verhältnis zu ihrem außergewöhnlich gut untersuchten Gastgeber, bleiben viele faszinierende Aspekte der Biologie Wespe im Dunkeln. Dazu gehören Fragen im Zusammenhang mit Reichweite, Immunsuppression, Superparasitismus und Verhalten zu hosten. Der Schwerpunkt dieser Präsentation war es, die Auswirkungen der Infektion auf der Fliege Immunsystem G...

<table border="1"><tbody><tr><td> Materialien </td><td> Typ </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Materialien für Insekten Kultur Wartung </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Hefe </td><td> Aktive Trockenhefe </td><td> Fisher Scientific </td><td> S802453 </td></tr><tr><td> Fly Lebensmittel </td><td> Maismehl, Zucker </td><td></td><td> Standard-Rezept </td></tr><tr><td> Honig </td><td> Klee </td><td> Niederländischen Gold- </td><td></td></tr><tr><td> Vials </td><td> Sitzschale aus Polypropylen Ampullen (schmal) </td><td> Fisher Scientific </td><td> AS514 </td></tr><tr><td> Vial Schließungen </td><td> Wattestopfen </td><td> Fisher Scientific </td><td> AS212 </td></tr><tr><td> Vial Schließungen </td><td> Buzz-Stecker </td><td&gt; Genesee Scientific </td><td> AS273 </td></tr><tr><td> Kühlbrutschrank </td><td> Precision 815 </td><td> Thermo Scientific </td><td> 3721 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Materialien für die Probenvorbereitung </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> CO 2-Tank </td><td> Knochentrocken Klasse </td><td> TW Smith </td><td> UN1013 </td></tr><tr><td> Spachtel </td><td> Micro Spatel (14 cm) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 21-401-15 </td></tr><tr><td> Pyrex Spot Testplatten </td><td> 9-gut sezieren Platte 85 mm x 100 mm </td><td> Thomas Scientific </td><td> 7812G17 </td></tr><tr><td> Pasteurpipetten </td><td> Atemkalk </td><td> J &amp; H Berge </td><td> 71-5200-05 </td></tr><tr><td> Zange </td><td> Style # 5 </td><td> Sigma </td><td> T-4662 </td></tr><tr><td> Ethanol </td><td> 190 Beweis USP </td><td> Fisher Scientific </td><td> 04-355-221 </td></tr><tr><td> Formaldehyd </td><td> 37% w / w </td><td> Fisher Scientific </td><td> F79-1 </td></tr><tr><td> Sekundärer Antikörper Cy3 AffiniPure Esel-anti-Kaninchen-IgG (H + L) </td><td> 01.50 Excitation 546 nm; Emission 565 nm </td><td> Jackson Immuno Research Laboratories, Inc. </td><td> 711-165-152 </td></tr><tr><td> Antifade (N-Propylgallat) </td><td> 4 ug / ml in 50% Glycerin in 1X PBS </td><td> MP Biomedicals </td><td> 10274790 </td></tr><tr><td> Glycerin </td><td></td><td> Fisher Scientific </td><td> G33-1 </td></tr><tr><td> Hoechst 33258 </td><td> 0,2 ug / ml Excitation 352 nm; Emission 461 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> H-1398 </td></tr><tr><td> Rhodamin-Phalloidin </td><td> 200 Einheiten / ml (6,6uM) Excitation 540 nm; Emission 565 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> R415 </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 488 Phalloidin </td><td> 300 Einheiten / ml Excitation 495 nm; Emission 518 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> A12379 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Verbrauchsmaterial </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Waschflasche </td><td> Fisherbrand </td><td> Fisher Scientific </td><td> 03 bis 409-22A </td></tr><tr><td> Kimwipes </td><td> Kimberly Clark </td><td> Fisher Scientific </td><td> 06-666A </td></tr><tr><td> Papierhandtuchspender </td><td> 1-lagig C-Falz </td><td> Federkiel </td><td> 901-7CFTB2400 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Mikroskopie </td><td> &amp;nbsp; </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Leica Stereomikroskop </td><td> MZFLIII </td><td> Reich Imaging Systems, Inc. </td><td> 10446208 </td></tr><tr><td> Zeiss Stereomikroskop </td><td> Stemi 1000 oder 2000-C </td><td> Carl Zeiss </td><td> 000000-1006-126 </td></tr><tr><td> Light Source - LED </td><td> Schwanenhals-Hilfslicht </td><td> Fisher Scientific </td><td> 12563501 </td></tr><tr><td> Bühne </td><td> Durchlicht-Box mit Platte </td><td> Carl Zeiss </td><td> 455137000 </td></tr><tr><td> Zeiss Laser-Scanning-konfokalen Mikroskop </td><td> LSM 510 </td><td> Carl Zeiss </td><td></td></tr><tr><td> Zeiss zusammengesetzte Mikroskop </td><td> Axioplan 2 aufrecht </td><td> Carl Zeiss </td><td></td></tr></tbody></table><table border="1"><tbody><tr><td> Wespen-Stämme </td><td> Fly abseihens </td></tr><tr><td> Leptopilina victoriae 16 </td><td> yw </td></tr><tr><td> Leptopilina boulardi 17 1 </td><td> UAS-GFP-Dorsal 17 </td></tr><tr><td> Leptopilina heterotoma 2 </td><td> SerpentHemoGal4 13 </td></tr><tr><td> Leptopilina heterotoma 14 1 </td><td> MSNF9-moCherry 14 </td></tr><tr><td> Trichopria drosophilae </td><td> MSNF-GFP 15 </td></tr><tr><td> Ganaspis xanthopoda 18 </td><td> yw Serpent UAS-Gal4 GFP-Dorsal/Basc 4 </td></tr><tr><td></td><td> yw; Drosomycin-GFP/CyO y + 12 </td></tr></tbody></table>

eine einführung in die parasitischen wespen<em&gt; drosophila</em&gt; und die antiparasitäre immune response

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Die meisten bekannten Arten parasitärer Schlupfwespen befallen die Larven- oder Puppenstadien von Drosophila. Während Trichopria drosophilae die Puppenstadien des Wirts befällt (Abb. 1A–C), greifen Weibchen der Gattung Leptopilina (Abb. 1D, 1F, 1G) und Ganaspis (Abb. 1E) die Larvenstadien an. Wir nutzen diese Parasiten, um die molekularen Grundlagen eines biologischen Wettlaufs zu untersuchen. Parasitische Schlupfwespen besitzen einen hohen Wert als biologische Kontrollagenten. Die meisten von ihnen tragen Virulenzfaktoren und andere Faktoren, die die Physiologie und Immunität des Wirts verändern. Die Analyse von Drosophila-Schlupfwespen liefert Erkenntnisse darüber, wie artenspezifische Interaktionen die genetischen Strukturen natürlicher Populationen prägen. Diese Studien dienen zudem als Modell, um die Immunphysiologie der Wirte und die Art und Weise zu verstehen, wie koordinierte Immunreaktionen durch diese Klasse von Parasiten unterlaufen werden.
Die larvale/pupale Kutikula bildet die erste Verteidigungslinie. Der Eileger der Wespe ist eine nadelförmige, scharfe Struktur, die Eier effizient in den Hämocöl des Wirts einführt. Auf die Eiablage folgt eine Wundheilungsreaktion an der Kutikula (Abb. 1C, Pfeilspitzen). Einige Wespen können zwei oder mehr Eier in denselben Wirt legen, obwohl sich nur ein Ei weiterentwickelt. Überzählige Eier oder sich entwickelnde Larven werden durch einen bislang nicht verstandenen Prozess eliminiert. Diese Wespen werden daher als solitäre Parasitoide bezeichnet.
Je nach Fliegenstamm und Wespenspezies erleidet das Wespenei eines von zwei Schicksalen. Es wird entweder eingeschlossen, sodass seine Entwicklung blockiert wird (Wirt schlüpft; Abb. 2 links); oder das Wespenei schlüpft, entwickelt sich, häutet sich und wächst zu einem erwachsenen Tier heran (Wespe schlüpft; Abb. 2 rechts). L. heterotoma ist eine der am besten untersuchten parasitären Wespenspezies von Drosophila. Sie ist ein „Generalist“, was bedeutet, dass sie die meisten Drosophila-Arten als Wirte nutzen kann1. L. heterotoma und L. victoriae sind Schwesterarten und produzieren virusähnliche Partikel, die aktiv in die Einschließungsreaktion eingreifen2. Im Gegensatz zu L. heterotoma ist L. boulardi ein Spezialisten-Parasit, und das Spektrum an Drosophila-Arten, die sie nutzt, ist relativ begrenzt1. Stämme von L. boulardi produzieren ebenfalls virusähnliche Partikel3, unterscheiden sich jedoch erheblich in ihrer Fähigkeit, bei D. melanogaster erfolgreich zu sein1. Einige dieser L. boulardi-Stämme sind schwer auf D. melanogaster zu züchten1, da der Fliegenwirt häufig erfolgreich ihre Eier einschließt. Daher ist es wichtig, über das Wissen beider Partner in bestimmten experimentellen Protokollen zu verfügen.
Neben Barriergeweben (Cuticula, Darm und Tracheen) verfügen Drosophila-Larven über systemische zelluläre und humorale Immunantworten, die jeweils auf der Funktion von Blutzellen und des Fettkörpers beruhen. Die Eiablage durch L. boulardi aktiviert beide Immunarme1,4. Blutzellen finden sich im Kreislauf, in sessilen Populationen unterhalb der segmentierten Cuticula sowie in der Lymphdrüse. Die Lymphdrüse ist ein kleines hämatopoetisches Organ an der dorsalen Seite der Larve. Gruppen hämatopoetischer Zellen, sogenannte Lappen, sind segmental paarweise entlang des dorsalen Gefäßes angeordnet, das sich entlang der anterioren-posterioren Achse des Tieres erstreckt (Abb. 3A). Der Fettkörper ist ein großes multifunktionales Organ (Abb. 3B). Er sekretiert antimikrobielle Peptide als Reaktion auf mikrobielle und metazoische Infektionen.
Die Infektion mit Wespen aktiviert die Immunsignalübertragung (Abb. 4)4. Auf zellulärer Ebene löst sie Teilung und Differenzierung von Blutzellen aus. Zur Selbstverteidigung bilden sich Aggregate und Kapseln im Hämocoel infizierter Tiere (Abb. 5)5,6. Aktivierte Blutzellen wandern zur Wespenlarve (oder zum Wespeiei) und beginnen, eine Kapsel darum zu bilden (Abb. 5A–F). Einige Blutzellen aggregieren und bilden Noduli (Abb. 5G–H). Eine sorgfältige Analyse zeigt, dass die Infektion mit Wespen die am weitesten anterior gelegenen Lappen der Lymphdrüse dazu veranlasst, sich an ihren Rändern aufzulösen (Abb. 6C, D).
Wir präsentieren repräsentative Daten zu Komponenten des Toll-Signaltransduktionswegs, Dorsal und Spätzle (Abb. 4,5,7), sowie dessen Zielgen Drosomycin (Abb. 6), um zu veranschaulichen, wie spezifische Veränderungen in der Lymphdrüse und im Hämocoel nach einer Infektion mit Schlupfwespen untersucht werden können. Die hier beschriebenen Präparationsprotokolle ermöglichen zudem die Gewinnung der Wespeneier (oder entwickelnden Stadien der Wespen) aus dem Hämolymphe des Wirts (Abb. 8).

Parasitoiden (parasitäre) Wespen stellen eine große Klasse von natürlichen Feinde vieler Insekten einschließlich<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;. Wir stellen Ihnen die Techniken, diese Parasiten in propagieren<em&gt; Drosophila</em&gt; Spp. und demonstrieren, wie man ihre Wirkung auf das Immunsystem Gewebe analysieren<em&gt; Drosophila</em&gt; Larven.

Eine Einführung in die parasitischen Wespen<em&gt; Drosophila</em&gt; Und die antiparasitäre Immune Response

Die meisten bekannten parasitoiden Wespenarten greifen die Larven- oder Puppenstadien von Drosophila an. Während Trichopria drosophilae die Puppenstadien des Wirtes infizieren (Abb. ...

Die allgemeinen Ziele dieses Verfahrens bestehen darin, zu zeigen, wie man Kulturen von parasitischen Schlupfwespen auf Drosophila-Wirten pflegt und wie man die Lymphdrüse und das Fettkörpergewebe präpariert. Dies wird erreicht, indem man zunächst Schlupfwespen auf Drosophila-Larven kultiviert. Anschließend werden die Tiere seziert, um entweder die Larven-Lymphdrüsen zu isolieren, was das Abziehen der Cuticula sowie das Entfernen der Fettkörper und anderer feinerer Strukturen zur Isolierung der Lymphdrüsen beinhaltet.Ebenso können die Fettkörper selbst mithilfe einer ähnlichen Methode unter Verwendung der Immunzytochemie und Fluoreszenzmikroskopie isoliert werden. Genexpression und zellspezifische Veränderungen werden in den Immunorganen sichtbar gemacht. Nach einer Befall mit Wespen untersuchen wir ein einzigartiges System aus Infektion und Immunität, das Drosophila-Larven und ihre parasitäre Wespe nutzt.Unser Labor gehört zu den wenigen, in denen Dauerzuchten von Drosophila-Parasitoiden gepflegt werden. Daher werden wir häufig gebeten, unsere Methoden weiterzugeben. Parasitoide sind natürliche Feinde vieler Insekten.Die von uns untersuchten Arten befallen die Larvenstadien vieler

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Wolbachia Bakterielle Infektion in Drosophila

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Ganaspis brasiliensis - ein Larvenparasitoid von Drosophila suzukii (ein globaler invasiver Obstkulturpest) - wurde zur biologischen Bekämpfung dieses Schädlings in Europa und den Vereinigten Staaten zugelassen oder wird für die Einführung in Europa und die Vereinigten Staaten in Betracht gezogen. Dieser Artikel enthält Protokolle für die Aufzucht dieses parasitoiden Parasitoids in kleinem und großem Maßstab.

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Erfahren Sie, wie man parasitoide Wespen auf Drosophila-Larven züchtet und Immunorgane wie Lymphdrüse und Fettkörper präpariert. Diese Methode ermöglicht die Analyse von Immunantworten nach Infektion.

Eine Einführung in die parasitischen Wespen

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