Name: Propagierung und Erkennen einer ansteckenden Molecular Clone von Maedi-Visna Virus, das Green Fluorescent Protein exprimiert (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: Lernen Sie die Propagierung eines infektiösen Maedi-Visna-Virus-Klons mit GFP-Marker in Schafchoroidplexuszellen. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung viraler Replikation durch Fluoreszenzmikroskopie und Durchflusszytometrie.

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Diese Arbeit wurde von der isländischen Research Fund und der Universität von Island Research Fund gefördert.

1. Transfektion Die molekulare Klon ist in zwei Plasmiden, p8XSp5-EGFP und p67r, von 12 kb und 4,5 kb bzw. enthalten. 9,10 <ol><li> Cut äquimolaren Mengen der beiden Plasmide, dh 4,4 pg p8XSp5-eGFP und 1,6 ug p67r mit XbaI und ligieren vor der Transfektion. </li><li> Für die Ligation, verwenden Sie 1 Weiss Einheit Ligase in einem 50 ul Reaktions-und Inkubieren bei 16 ° C über Nacht. </li><li> Wenn Ligation abgeschlossen ist, inkubieren Ligationsmix bei 65 ° C für 15 min zur Inaktivierung der Ligase. Dieser Schritt kann weggelassen werden. </li><li> Zwei Tage vor der Transfektion, Saatgut 10 6 SCP Zellen in einer T25 Zellkulturflasche und wachsen Zellen für zwei Tage in 5 ml DMEM + 10% Lamm Serum und 2 mM Glutamin, ohne Antibiotika, um eine Monoschicht von 90% Konfluenz. Wenn die Zellen nicht 90% Konfluenz nach zwei Tagen erreicht, lassen die Zellen wachsen einem zusätzlichen Tag. </li></ol> Hinweis: Das Lamm Serum kann durch fötales Rinderserum (FBS) ersetzt werden. Wir verwenden routinemäßig Lamm Serum, da einige Stämme von MVV von FBS sind gesperrt; dieser MVV Stamm ist nicht gehemmt durch FBS jedoch. <ol start="5"><li> Wenn die Zellen bereit für die Transfektion sind, ändern Sie mittel-bis DMEM mit 1% Serum (Lamm Serum oder FBS) ohne Antibiotika. Wir verwenden Lipofectamin 2000 (Invitrogen) für die Transfektion. </li><li> Verdünnen Sie die DNA in 500μl Opti-MEM-Medium. </li><li> Verdünnen Sie 20 &amp;mgr; l Lipofectamin 2000 in 500μl Opti-MEM-Medium und lassen bei Raumtemperatur (RT) für 5 min. </li><li> Nach dem 5 min Inkubation, kombinieren die verdünnte DNA mit verdünnter Lipofectamine 2000 (Gesamtvolumen = 1000 ul). Vorsichtig mischen und inkubieren für 20-30 min bei RT. </li><li> Fügen Sie die Transfektion Mix (1 ml) der T25 Kolben mit SCP Zellen und Medium (5 ml). Mix von rocking sanft. </li><li> Bei 37 ° C und 5% CO 2 über Nacht (18 bis 24 h). </li><li> Ändern Medium am folgenden Tag um DMEM mit 1% Serum, 2 mM Glutamin, Penicillin und 100IU 100IU Streptomycin. </li><li> Überwachen der Herstellung von GFP in der SCP-Zellen durch invertierte Fluoreszenz-Mikroskopie. 15% - Niedrige Transfektionseffizienz können mit diesen primären Zellen, in der Regel 5 zu erwarten. </li><li> Inkubieren bei 37 ° C, 5% CO 2 für mehrere Tage, damit die Verbreitung des Virus in den Kolben. Es dauert in der Regel 7-14 Tage für volle Infektion. </li><li> Ernte des Virus durch Aliquotierung der Überstand in Eppendorf-Röhrchen. Spin in einer Mikrozentrifuge bei 3000 rpm für 5 min um Zelltrümmer zu entfernen. Übertragen Sie den Überstand mit dem Virus auf neue Röhren. Lagerung bei -80 ° C. </li></ol> 2. Titration von Viren <ol><li> Seed 3x10 4 SCP-Zellen in 100 ul DMEM Medium mit 10% Serum, 2 mM Glutamin, Penicillin und 100IU/ml 100IU/ml Streptomycin pro Well in einer 96-Well-Platte ergänzt. Bei 37 ° C, 5% CO 2. </li><li> Wenn die Zellen konfluent sind am folgenden Tag, ändern mittel-bis DMEM mit 1% Serum, 2 mM Glutamin, Penicillin und 100IU/ml 100IU/ml Streptomycin, 100 ul in jede Vertiefung. </li><li> Verdünnen Sie das Virus in folgender Weise: <ol><li> Add 180 ul DMEM mit 1% Serum, 2 mM Glutamin, Penicillin und 100IU/ml 100IU/ml Streptomycin pro Vertiefung zu 4 x 10 Wells in einer 96-Well-Rundboden-oder V-Bodenplatte. </li><li> Für die serielle Zehnfachverdünnungen in vierfacher Ausfertigung, mit 20 ul des Virus auf jeden 4wells in der ersten Spalte der Platte, und mit einem Vier-Kanal-Pipette Pipette auf und ab, um sicherzustellen, dass die Proben gründlich gemischt werden. Ändern Pipettenspitzen und Transfer 20 pl auf die nächsten 4 Brunnen und so weiter. Lassen Sie die letzten Brunnen ohne Virus für eine negative Kontrolle. </li></ol></li><li> 100 l des Virus Verdünnungen der SCP-Zellen und Medium. </li><li> Bei 37 ° C und 5% CO 2. Beachten Sie für die GFP-Fluoreszenz und zytopathischen Effekte für zwei Wochen. Zytopathischen Effekte bestehen aus Zellen immer gerundet und weniger transparent als normale Zellen mit Prozessen ausstreckt, endend mit mehrkernigen Zellen erscheinen und Zelltod. </li><li> Berechnen Virustiter (TCID50) mit der Reed Muench-Methode 11. </li></ol> 3. FACS-Analyse von infizierten Zellen Hinweis: Für die schnelle Kontrolle der Replikation des Virus, infizierten Zellen können mittels Durchflusszytometrie untersucht werden. <ol><li> Trypsinize infizierten Zellen (ca. 10 5), waschen 1x mit PBS und Resuspendieren in 500μl PBS. </li><li> Add 500 ul 4% Paraformaldehyd-Lösung (2% Endkonzentration) bei RT für 30 min inkubieren. </li><li> Pellet-Zellen in einer Mikrozentrifuge bei 3000 rpm für 5 min. </li><li> Waschen mit PBS 2x5 min und zu analysieren, auf einem FACScan-Analysator. Count 10.000 Veranstaltungen. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse: Dieser Virus sollte voll ansteckender und zu replizieren, um einen Titer von 10. Juni - 10 Juli TCID 50 / ml. Infizierte Zellen werden Fluoreszenz und kann det werdenected mittels Durchflusszytometrie und Fluoreszenzmikroskopie. In der Regel können GFP in mehr als 60% der Zellen in die infizierten Zellkulturen mittels Durchflusszytometrie (Abb. 1) festgestellt werden. Ebenso, wenn visualisiert durch Fluoreszenz-Mikroskopie, sind ein Großteil der Zellen fluoreszierende (Abb. 2A und B). <img src="/files/ftp_upload/3483/3483fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. FACScan Analyse der SCP-Zellen mit KV1772-eGFP Viren nach 7 Tagen der Infektion infiziert. <img src="/files/ftp_upload/3483/3483fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Phasenkontrast-Mikroskopie von SCP-Zellen mit KV1772-egfp nach 7 Tagen Inkubation (A) infiziert. Gleiche Zellen visualisiert mittels Fluoreszenzmikroskopie (B).

<ol><li>Sigurdsson, B., Palsson, P. A., Grimsson, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visna%2C+a+demyelinating+transmissable+disease+of+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuropathol.+Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Visna, a demyelinating transmissable disease of sheep.</a> J. Neuropathol. Exp. Neurol. 14, 389-403 (1957).</li>
<li>Gorrell, M. D., Brandon, M. R., Sheffer, D., Adams, R. J., Narayan, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ovine+lentivirus+is+macrophagetropic+and+does+not+replicate+productively+in+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Ovine lentivirus is macrophagetropic and does not replicate productively in T lymphocytes.</a> J. Virol. 66, 2679-2688 (1992).</li>
<li>Andresdottir, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+and+genetic+differences+between+lung-+and+brain-derived+isolates+of+maedi-visna+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Genes%22%5BJournal%5D)">Biological and genetic differences between lung- and brain-derived isolates of maedi-visna virus.</a> Virus Genes. 16, 281-293 (1998).</li>
<li>Georgsson, G., Houwers, D. J., Palsson, P. A., Petursson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+viral+antigens+in+the+central+nervous+system+of+visna-infected+sheep%3A+an+immunohistochemical+study+on+experimental+visna+induced+by+virus+strains+of+increased+neurovirulence%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathol%22%5BJournal%5D)">Expression of viral antigens in the central nervous system of visna-infected sheep: an immunohistochemical study on experimental visna induced by virus strains of increased neurovirulence.</a> Acta Neuropathol. 77, 299-306 (1989).</li>
<li>Turelli, P., Guiguen, F., Mornex, J. F., Vigne, R., Querat, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((dUTPase-minus+caprine+arthritis-encephalitis+virus+is+attenuated+for+pathogenesis+and+accumulates+G-to-A+substitutions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">dUTPase-minus caprine arthritis-encephalitis virus is attenuated for pathogenesis and accumulates G-to-A substitutions.</a> J. Virol. 71, 4522-4530 (1997).</li>
<li>Petursson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visna+virus+dUTPase+is+dispensable+for+neuropathogenicity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Visna virus dUTPase is dispensable for neuropathogenicity.</a> J. Virol. 72, 1657-1661 (1998).</li>
<li>Sigurdsson, B., Thormar, H., Palsson, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cultivation+of+visna+virus+in+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Gesamte+Virusforsch%22%5BJournal%5D)">Cultivation of visna virus in tissue culture.</a> Arch Gesamte Virusforsch. 10, 368-380 (1960).</li>
<li>Gudmundsdottir, H. S., Olafsdottir, K., Franzdottir, S. R., Andresdottir, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+and+characterization+of+an+infectious+molecular+clone+of+maedi-visna+virus+that+expresses+green+fluorescent+protein%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Construction and characterization of an infectious molecular clone of maedi-visna virus that expresses green fluorescent protein.</a> J. Virol. Methods. 168, 98-102 (2010).</li>
<li>Andresson, O. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleotide+sequence+and+biological+properties+of+a+pathogenic+proviral+molecular+clone+of+neurovirulent+visna+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Nucleotide sequence and biological properties of a pathogenic proviral molecular clone of neurovirulent visna virus.</a> Virology. 193, 89-105 (1993).</li>
<li>Skraban, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Naturally+occurring+mutations+within+39+amino+acids+in+the+envelope+glycoprotein+of+maedi-visna+virus+alter+the+neutralization+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Naturally occurring mutations within 39 amino acids in the envelope glycoprotein of maedi-visna virus alter the neutralization phenotype.</a> J. Virol. 73, 8064-8072 (1999).</li>
<li>Reed, L. J., Muench, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+estimating+fifty+percent+endpoints%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Hygiene%22%5BJournal%5D)">A simple method of estimating fifty percent endpoints.</a> American Journal of Hygiene. 27, 493-497 (1938).</li>
<li>Berkowitz, R. D., Ilves, H., Plavec, I., Veres, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+systems+derived+from+Visna+virus%3A+analysis+of+virus+production+and+infectivity%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Gene transfer systems derived from Visna virus: analysis of virus production and infectivity.</a> Virology. 279, 116-129 (2001).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Die GFP-exprimierenden molekularen Klon des MVV hier vorgestellten sollte für die Analyse der Host-Zell-Interaktionen und Pathogenität von MVV sowohl in vitro und in vivo. Das Virus nach 7-14 Tagen der Replikation erhalten hat zweifellos einige Mutationen aufgrund der Ungenauigkeit der reversen Transkriptase erworben. Allerdings gibt es Einschränkungen bei der Verwendung dieser Klon als Single-Cycle-Vektor. Einer ist, dass die Verwendung der Klon-Zellen von Schafen und Ziegen Herkunft beschränkt ist. Die Transfektionsef...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Gibco </td><td> 10938025 </td></tr><tr><td> Opti-MEM </td><td> Gibco </td><td> 51985018 </td></tr><tr><td> Lipofectamine 2000 </td><td> Invitrogen </td><td> 11668019 </td></tr></tbody></table>

propagierung und erkennen einer ansteckenden molecular clone von maedi-visna virus, das green fluorescent protein exprimiert

Propagating and Detecting an Infectious Molecular Clone of Maedi-visna Virus that Expresses Green Fluorescent Protein

Maedi-Visna Virus (MVV) ist ein Lentivirus von Schafen, was langsam fortschreitende interstitielle Pneumonie und Enzephalitis 1. Die primären Zielzellen von MVV in vivo gelten als der Monozyten-Linie 2 sein. Bestimmte Stämme von MVV können in andere Zelltypen zu replizieren, jedoch 3,4. Das grün fluoreszierende Protein ist ein häufig verwendeter Marker für die Untersuchung Lentiviren in lebenden Zellen. Wir haben die EGFP-Gen in das Gen für dUTPase der MVV eingefügt. Die dUTPase Gen ist in den meisten Lentivirus Stämme von Schafen und Ziegen erhalten und hat sich gezeigt, dass bei der Replikation von CAEV 5 wichtige. Allerdings hat dUTPase konnte gezeigt werden, entbehrlich für die Replikation des molekularen Klon des MVV in dieser Studie sowohl in vitro und in vivo 6 verwendet. MVV-Replikation ist streng auf Zellen von Schafen oder Ziegen Herkunft beschränkt. Wir verwenden eine primäre Zelllinie, die aus dem Plexus von Schafen (SCP-Zellen) für die Transfektion und Vermehrung der Virus 7. Die fluoreszierenden MVV ist voll Infektions-und EGFP-Expression über mindestens 6 Durchgänge 8 stabil. Es ist eine gute Korrelation zwischen den Messungen der TCID 50 und EGFP. Dieses Virus ist daher sinnvoll sein, für die schnelle Erkennung von infizierten Zellen in Studien Zelltropismus und Pathogenität in vitro und in vivo 8.

Wir beschreiben einen molekularen Klon des Maedi-Visna Virus, das GFP exprimiert und ist voll ansteckend. Die Replikation von diesem Virus kann durch die Verwendung der Fluoreszenzmikroskopie und Durchflusszytometrie nachgewiesen werden.

Propagierung und Erkennen einer ansteckenden Molecular Clone von Maedi-Visna Virus, das Green Fluorescent Protein exprimiert

Das Maedi-Visna-Virus (MVV) ist ein Lentivirus des Schafes, das eine langsam fortschreitende interstitielle Pneumonie und Enzephalitis verursacht1. Die primären Zielzellen von MVV in ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, einen infektiösen Klon von Mildy vs. No Virus zu vermehren und nachzuweisen, der grün fluoreszierendes Protein exprimiert. Dieses grün fluoreszierende Protein wurde in das Hüllgen für D utp Ace im Myy Ner-Virusgenom eingeklont.Der infektiöse Klon ist in zwei Plasmiden enthalten. Zunächst werden die beiden Plasmide, die die myy Ner-Sequenzen tragen, mit dem xpa1-Restriktionsenzym geschnitten und ligiert. Anschließend werden Schaf-Choroidplexuszellen mit dem Konstrukt transfiziert.Schließlich werden myy-Vinovirus-infizierte Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie und Durchflusszytometrie nachgewiesen. Hallo, ich bin Stefano Neron am TER-Institut für experimentelle Pathologie der Universität Island. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur Vermehrung und Detektion eines infektiösen molekularen Klons des my vaskulären Virus, das das grün fluoreszierende Protein exprimiert.Der molekulare Klon ist in den Plasmiden P acht XSP fünf EGFP und P sechs sieben oder mit 12 Kilobasen bzw. 4,5 Kilobasen enthalten. Schneiden Sie äquimolare Mengen der beiden Plasmide, nämlich 4,4 Mikrogramm von P acht XSP fünf EGFP und 1,6 Mikrogramm von P sechs sieben oder, mit XPA ein und ligieren Sie diese vor der Transfektion. Sobald die Ligierung abgeschlossen ist, inkubieren Sie das Ligationsgemisch zwei Tage vor der Transfektion 15 Minuten bei 65 Grad Celsius. Säen Sie 10 hoch sechs SCP-Zellen in einem T-25-Zellkulturgefäß und kultivieren Sie die Zellen zwei Tage lang in fünf Milliliter DMEM mit 10 % Lammserum und zwei Millimolar Glutamin ohne Antibiotika bis zu einer Konfluenz von 90 %.Wenn die Zellen nach zwei Tagen noch nicht 90 % CO erreicht haben, lassen Sie die Zellen einen zusätzlichen Tag wachsen. Das Lammserum kann durch fetalen Kälberserum (FBS) ersetzt werden. Wir verwenden routinemäßig Lammserum, da einige Stämme von MVV durch FBS gehemmt werden.Dieser MVV-Stamm wird jedoch nicht durch FBS gehemmt. Wenn die Zellen zur Transfektion bereit sind, wechseln Sie das Medium zu DMEM mit 1 % Lammserum oder FBS ohne Antibiotika. Wir verwenden Lipofectamine 2000 für die Transfektion, verdünnen die DNA in 500 µL Opti-MEM-Medium und verdünnen 20 µL Lipofectamine 2000 in 500 µL Opti-MEM-Medium und lassen dies fünf Minuten bei Raumtemperatur stehen.Nach der fünfminütigen Inkubation das verdünnte DNA mit verdünntem Lipofectamin 2000 zu einem Gesamtvolumen von 1000 Mikrolitern kombinieren. Vorsichtig mischen und 22–30 Minuten inkubieren. Die Transfektionsmischung bei Raumtemperatur zu dem T-25-Fläschchen mit SCP-Zellen und Medium geben und durch vorsichtiges Schaukeln mischen.Übernachtliche Inkubation bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid. Am folgenden Tag das Medium wechseln zu DMEM mit 1 % Serum, zwei Millimolar Glutamin, 100 IE pro Milliliter Penicillin und 100 IE pro Milliliter Streptomycin. Die Produktion von GFP in den SCP-Zellen mittels invertierter Fluoreszenzmikroskopie überwachen.Bei diesen primären Zellen ist eine geringe Transfektionsrate zu erwarten, üblicherweise fünf bis 15 %. Inkubieren Sie weitere Tage bei 37 Grad Celsius, 5 % Kohlendioxid, um die Ausbreitung des Virus im Kolben zu ermöglichen. Für eine vollständige Infektion sind gewöhnlich sieben bis 14 Tage erforderlich. Gewinnen Sie das Virus durch Ali, indem Sie das Überstand in Einmaltuben abfüllen.Zentrifugieren Sie fünf Minuten lang in einer Mikrozentrifuge bei 3000 × g, um Zelltrümmer zu entfernen. Überführen Sie das Überstand enthaltende Virus in neue Röhrchen.Lagern Sie dreimal 10 hoch 4 SCP-Zellen bei minus 80 Grad Celsius in 100 Mikroliter DMEM-Medium, ergänzt mit 10 % Serum, zwei Millimolar Glutamin, 100 IE pro Milliliter Penicillin und 100 IE pro Milliliter Streptomycin pro Mulde.In einer 96-Well-Platte bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid inkubieren. Falls die Zellen am folgenden Tag konfluent sind, wechseln Sie das Medium auf DMEM mit 1 % Serum. Mit jeweils 100 Mikrolitern pro Well verdünnen Sie das Virus auf die folgende Weise.Fügen Sie 180 Mikroliter DMEM mit 1 % Serum pro Vertiefung zu viermal 10 Vertiefungen in einer 96-Vertiefungs-Rundboden- oder V-Boden-Platte für eine serielle zehnfache Verdünnung im Vierfachduplikat hinzu. Geben Sie 20 Mikroliter Virus in jede der vier Vertiefungen der ersten Spalte der Platte. Und mischen Sie mithilfe einer Vierkanalpipette mehrmals auf und ab, um sicherzustellen, dass die Proben gründlich vermischt sind.Wechseln Sie die Pipettenspitzen und übertragen Sie 20 Mikroliter in die nächsten vier Vertiefungen und so weiter. Lassen Sie die letzten Vertiefungen ohne Virus für eine negative Kontrolle. Geben Sie 100 Mikroliter der Virusverdünnung zu den SEP-Zellen und dem Mediuminkubator hinzu.37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid. Beobachten Sie zwei Wochen lang die GFP-Fluoreszenz und zytopathische Effekte. Zytopathische Effekte bestehen darin, dass die Zellen sich runden und weniger transparent werden als normale Zellen, wobei Fortsätze ausgebildet werden; am Ende erscheinen mehrkernige Zellen und es kommt zum Zelltod.Berechnen Sie die Virus-Titer mithilfe der Reid-Münch-Methode zur schnellen Überwachung der Virusreplikation. Infizierte Zellen können mittels Durchflusszytometrie und Trypsin untersucht werden. Augen etwa 10 hoch fünf infizierte Zellen.Einmal mit PBS waschen und in 500 Mikrolitern PBS resuspendieren. 500 Mikroliter einer 4 %igen Paraformaldehyd-Lösung hinzufügen, um eine Endkonzentration von 2 % zu erreichen, und 30 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren. Die Zellen bei 3000 × g oder PMM fünf Minuten lang zentrifugieren.Zweimal mit PBS waschen, jeweils fünf Minuten, und an einem Fact-Scan-Analysator analysieren. 10.000 Ereignisse zählen. Der hier vorgestellte molekulare Klon meines Virus mit GFP-Expression kann nützlich sein, um Virus-Wirt-Interaktionen und die Pathogenität meines Neurovirus sowohl in vivo als auch in vitro zu analysieren.Obwohl noch nicht gezeigt wurde, dass mein Neurovirus menschliche Zellen beeinflussen kann, ist es wichtig, alle Vorsichtsmaßnahmen der Biosicherheitsstufe einzuhalten; sowohl Zellen als auch das Plasmid können von unserem Labor bezogen werden. Viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

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