Name: Single Cell Messung der Freisetzung von Dopamin mit gleichzeitiger Voltage-Clamp-und Amperometry (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: Lernen Sie die kombinierte Patch-Clamp- und Amperometrie-Methode zur Messung des DAT-vermittelten Dopamin-Transports in spannungsgeclampften Neuronen. Diese Technik ermöglicht die Echtzeit-Analyse dopaminerger Signalwege.

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Wir danken Dr. Sanika Chirwa für die kritische Durchsicht des Manuskripts. Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health (DA026947, DA021471 und NS071122) unterstützt.

Ein. Ausstattung und Zubehör <ol><li> Montieren Sie einen Faraday-Käfig auf dem Anti-Vibrations-Tabelle (TMI), um die Hintergrundgeräusche zu verringern. </li><li> Die gleichzeitige Patch-Clamp-Amperometrie Aufzeichnungssystem erfordert eine inverse Mikroskop mit exzellenter DIC Optik und einem langen Arbeitstag Abstand Linse. Schließen Sie das Mikroskop Leuchtturm an eine Autobatterie. Dieser DC-Lichtquelle für das System weiter sinken die elektrisches Rauschen. </li><li> Hydraulische Mikromanipulatoren (Siskiyou) weiter den Geräuschpegel zu senken. In unserer Konfiguration verwenden wir einen Rechtshänder Manipulator für die gesamte Zelle Aufnahme, und die linke für Amperometrie übergeben. </li></ol> 2. Bereiten Elektroden für die Aufnahme <ol><li> Ziehen Patch-Elektroden unter Verwendung von Quarz Pipetten auf einem P-2000 Ziehvorrichtung (Sutter). Unser Zug dauert ca. 5 sec, mit zwei Wärmezyklen. Diese Wärme Zeit in konstanten Widerstand (3-4 MOhm) in unserem ganzen Zelle Patch-Pipetten geführt. </li><li> Füllen Sie die Elektrode mit demPipette Lösung mit 2 mM Dopamin und montieren Sie ihn auf der rechten Manipulator. Wickeln Sie den Behälter mit der Pipette Lösung DA mit Aluminiumfolie. Halten Sie auf dem Eis. Dopamin ist oxidierbare. Halten Sie die Lösung auf Eis, vor Licht geschützt verringert die Oxidation von Dopamin. </li><li> Entfernen Sie vorsichtig eine ProCFE (Dagan) geräuscharm Kohlefaser amperometrischen Elektrode aus der Aufbewahrungsbox, füllen mit Quecksilber, mount auf die amperometrische Adapter (wie in Abbildung 1 dargestellt), und montieren Sie auf der rechten maniupulator. Schutz der Spitze der Kohlenstoff-Faser von Schäden durch Halten des anderen Ende des Kohlenstofffaser. Überprüfen Sie die Elektrode mit einem Labor-Mikroskop, um sicherzustellen, die Spitze ist sauber und intakt. </li><li> Untersuchen der Integrität der amperometrischen Elektrode, indem die Elektrode in einem Glasboden Petrischale mit externen Lösung. Aufzeichnen einer Basislinienstrom in Abwesenheit von Dopamin. Fügen Sie 10 ul einer 1mM DA Lösung für das Gericht. Eine gute amperometrischen Elektrode reKorde eine Erhöhung des oxidativen Strom. Wiederholen Sie diesen Schritt am Anfang und am Ende jedes Experiments, um sicherzustellen, das amperometrischen Elektrode richtig funktioniert. </li></ol> 3. Bereiten Sie den primären neuronalen Kultur der Dopamin-Neuronen oder Zellen Entwickelt, um Dopamin Transporter in Glass Bottom Petrischalen Express <ol><li> Vorsichtig waschen die Zellen oder Dopamin-Neuronen dreimal mit warmem externe Lösung. </li><li> Montieren Sie den Glasboden Petrischale auf den Mikroskoptisch. </li></ol> 4. Visualisieren Cell und Führen Experiment <ol><li> Finden Sie die richtige Anlaufstelle, klar zu visualisieren die Zellen. Platzieren positiven Druck auf die Flächenelektrode. Dann sanft bringen beide Elektroden nach unten in der Lösung und in der Nähe der Zelle. </li><li> Positionieren des amperometrischen Elektrode neben der Zelle (auf der linken Seite), und der Patch-Elektrode auf der rechten Seite. </li><li> Erreichen eine Gigaohm Dichtung auf der Zelle mit dem Patch-Elektrode. Rupture die Dichtung mit Absaugenzu erreichen Ganzzellkonfiguration. </li><li> Lassen Sie 5-8 min für die Dialyse der internen Lösung mit Dopamin in die Zelle. </li><li> Verwenden gewünschte Spannung Schritt oder Rampe Protokoll. Gleichzeitig erwerben Daten sowohl aus der Patch-Pipette und der amperometrischen Elektrode ganze Zelle Ströme messen und Rücktransport von Dopamin durch die Dopamin-Transporter während die Membran Potential über die Patch-Pipette gesteuert wird. </li></ol>

<ol><li>Michael, A. C., Ikeda, M., Justice, J. B. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+contributing+to+the+recovery+of+striatal+releasable+dopamine+following+MFB+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Mechanisms contributing to the recovery of striatal releasable dopamine following MFB stimulation.</a> Brain Res. 421, 325-335 (1987).</li>
<li>Gonon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+and+extrasynaptic+excitatory+action+of+dopamine+mediated+by+D1+receptors+in+the+rat+striatum+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Prolonged and extrasynaptic excitatory action of dopamine mediated by D1 receptors in the rat striatum in vivo.</a> J. Neurosci. 17, 5972-5978 (1997).</li>
<li>Sulzer, D., Pothos, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+quantal+size+by+presynaptic+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Regulation of quantal size by presynaptic mechanisms.</a> Rev. Neurosci. 11, 159-212 (2000).</li>
<li>Napolitano, A., Cesura, A. M., Da Prada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+monoamine+oxidase+and+catechol+O-methyltransferase+in+dopaminergic+neurotransmission%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neural.+Transm.+Suppl%22%5BJournal%5D)">The role of monoamine oxidase and catechol O-methyltransferase in dopaminergic neurotransmission.</a> J. Neural. Transm. Suppl. 45, 35-45 (1995).</li>
<li>Sulzer, D., Maidment, N. T., Rayport, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphetamine+and+other+weak+bases+act+to+promote+reverse+transport+of+dopamine+in+ventral+midbrain+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Amphetamine and other weak bases act to promote reverse transport of dopamine in ventral midbrain neurons.</a> J. Neurochem. 60, 527-535 (1993).</li>
<li>Salahpour, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+amphetamine-induced+hyperactivity+and+reward+in+mice+overexpressing+the+dopamine+transporter%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Increased amphetamine-induced hyperactivity and reward in mice overexpressing the dopamine transporter.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 4405-4410 (2008).</li>
<li>Khoshbouei, H., Wang, H., Lechleiter, J. D., Javitch, J. A., Galli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphetamine-induced+dopamine+efflux.+A+voltage-sensitive+and+intracellular+Na%2B-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Amphetamine-induced dopamine efflux. A voltage-sensitive and intracellular Na+-dependent mechanism.</a> J. Biol. Chem. 278, 12070-12077 (2003).</li>
<li>Goodwin, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphetamine+and+methamphetamine+differentially+affect+dopamine+transporters+in+vitro+and+in%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Amphetamine and methamphetamine differentially affect dopamine transporters in vitro and in.</a> , 284-2978 (2009).</li>
<li>Kahlig, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphetamine+induces+dopamine+efflux+through+a+dopamine+transporter+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Amphetamine induces dopamine efflux through a dopamine transporter channel.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 3495-3500 (2005).</li>
<li>Swant, J., Chirwa, S., Stanwood, G., Khoshbouei, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methamphetamine+reduces+LTP+and+increases+baseline+synaptic+transmission+in+the+CA1+region+of+mouse+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Methamphetamine reduces LTP and increases baseline synaptic transmission in the CA1 region of mouse hippocampus.</a> PLoS One. 5, e11382(2010).</li>
<li>Gnegy, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+Ca2%2B+regulates+amphetamine-induced+dopamine+efflux+and+currents+mediated+by+the+human+dopamine+transporter%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Intracellular Ca2+ regulates amphetamine-induced dopamine efflux and currents mediated by the human dopamine transporter.</a> Mol. Pharmacol. 66, 137-143 (2004).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Gleichzeitige Voltage-Clamp und Amperometrie hat die folgenden Vorteile. Alle Zelltypen sind zugänglich und können zur Aufzeichnung verwendet werden. Die Identifizierung der Zellen oder Neuronen, wo die Aufnahmen gemacht ist einfach und unkompliziert. Insbesondere, wenn die Zelle durch Hinzufügen eines fluoreszenzmarkierten fluoreszierende Markierung auf das Protein von Interesse markiert der Experimentator kann problemlos das Zielzelle oder Neurons. Der experimentelle Aufbau ermöglicht eine gleichmäßige und kontrollier...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Ausrüstung </td></tr><tr><td> Anti-Vibrations-Tabelle w / Faradayschen Käfig </td><td> Technische Manufacturing Corporation </td><td> 63-500 Serie </td><td> verwenden wir Modell 63-543 </td></tr><tr><td> Inverses Mikroskop Nikon TE-2000 </td><td> Nikon </td><td> abgebrochen </td><td> Jetzt Eclipse-Ti </td></tr><tr><td> Zwei rauscharmen Verstärkern Axopatch 200b </td><td> Molecular Devices </td><td></td><td> 800-635-5577 </td></tr><tr><td> 1-CV 203 BU Headstage </td><td> Molecular Devices </td><td></td><td> 800-635-5578 </td></tr><tr><td> 1-HL-U Pipettenhalter </td><td> Molecular Devices </td><td></td><td> 800-635-5579 </td></tr><tr><td> Digidata 1440A A / D-Wandler </td><td> Molecular Devices </td><td></td><td> 800-635-5580 </td></tr><tr><td> Zwei Manipulatoren Siskyou, linksund Rechtshänder </td><td> Siskiyou </td><td> MX6600R MX6600L </td><td> 877-313-6418 </td></tr><tr><td> Laser Pipette puller </td><td> Sutter Instruments </td><td> P-2000 </td><td> 888-883-0128 </td></tr><tr><td> Rauscharme Kohlefaser amperometrischen Elektrode </td><td> ProCFE </td><td></td><td> <a href="http://www.dagan.com" target="_blank">www.dagan.com</a> </td></tr><tr><td> Rauscharme Quarz Pipette </td><td> Sutter Instruments </td><td> QF100-70-7,5 </td><td> 888-883-0128 </td></tr><tr><td> 12-Volt-Autobatterie </td><td></td><td></td><td> weithin verfügbar </td></tr><tr><td> Autobatterie-Ladegerät </td><td></td><td></td><td> weithin verfügbar </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Reagens </td></tr><tr><td> Natriumchlorid (NaCl) </td><td> Sigma </td><td> S7653 </td><td></td></tr><tr><td> HEPES </td><td> Sigma </td><td> H3375 </td><td></td></tr><tr><td> Traubenzucker </td><td> Sigma </td><td> G7528 </td><td></td></tr><tr><td> Magnesiumsulfat (MgSO 4) </td><td> Sigma </td><td> M2643 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumphosphat einbasischen (KH 2 PO 4) </td><td> Sigma </td><td> P5655 </td><td></td></tr><tr><td> Kaliumchlorid (KCl) </td><td> Sigma </td><td> P9333 </td><td></td></tr><tr><td> Calciumchloriddihydrat (CaCl 2 • 2H 2 0) </td><td> Sigma </td><td> 223506 </td><td></td></tr><tr><td> Magnesiumchlorid-Hexahydrat (MgCl 2 • 6H 2 0) </td><td> Sigma </td><td> M2670 </td><td></td></tr><tr><td> EGTA </td><td> Sigma </td><td> E0396 </td><td></td></tr></tbody></table>

single cell messung der freisetzung von dopamin mit gleichzeitiger voltage-clamp-und amperometry

Single Cell Measurement of Dopamine Release with Simultaneous Voltage-clamp and Amperometry

Nach seiner Freilassung in den synaptischen Spalt, Dopamin übt seine biologischen Eigenschaften über seine Pre-und Post-synaptischen Ziele 1. Die Dopamin-Signal wird durch Diffusion 2-3, extrazelluläre Enzyme 4 und Membrantransportern 5 beendet. Die Dopamin-Transporter in der peri-synaptischen Spalt von Dopamin-Neuronen angeordnet löscht die freigesetzten Amine durch eine nach innen Dopamin Flusses (Uptake). Die Dopamin-Transporter kann auch in umgekehrter Richtung arbeiten, um Amine von innen nach außen freigeben in einem Prozess namens Abtransport oder Efflux von Dopamin 5. . Mehr als 20 Jahren Sulzer et al berichtete die Dopamin-Transporter kann in zwei Modi der Tätigkeit zu betreiben: forward (Aufnahme) und rückwärts (Efflux) 5. Der Neurotransmitter über Efflux durch den Transporteur freigesetzt werden eine große Menge an Dopamin in den extrazellulären Raum bewegen, und hat gezeigt, dass eine große regulatorische Rolle der extrazellulären Dopamin h spielenomeostasis 6. Hier beschreiben wir, wie die gleichzeitige Patch-Clamp-und Amperometrie Aufzeichnung verwendet werden, um veröffentlicht Dopamin über den Effluxmechanismen mit Millisekunden Zeitauflösung, wenn das Membranpotential gesteuert wird messen. Hierzu werden Ganzzell-Strom und oxidative (amperometrisch) Signale gleichzeitig unter Verwendung eines Axopatch 200B Verstärkers (Molecular Devices, mit einer Tiefpaß-Bessel-Filter Satz bei 1000 Hz für Ganzzell-Strom-Aufzeichnung) gemessen. Für Amperometrie Aufzeichnen eines Kohlenstofffaser-Elektrode ist mit einem zweiten Verstärker (Axopatch 200B) verbunden ist und angrenzend und in die Plasmamembran bei +700 mV gehalten. Die Ganzzell-und oxidativen (amperometrische) Ströme können aufgezeichnet werden und die Strom-Spannungs-Beziehung kann mit Hilfe einer Spannung Schritt-Protokoll. Im Gegensatz zu der üblichen amperometrischen Kalibrierung, die Umwandlung in Konzentration erfordert, wird der Strom direkt ohne Berücksichtigung des effektiven Volumens 7 berichtet. Somit werden die resultierenden Datenstellen eine untere Grenze zu Dopamin Efflux weil einige Sender zu dem Schüttgut-Lösung verloren geht.

Kombinierte Patch Clamp mit Amperometrie messen kann spannungsabhängigen DAT-vermittelte DA Efflux. 2A zeigt eine repräsentative experimentellen Konfiguration und Aufzeichnung der DAT-vermittelte DA Efflux wenn der intrazellulären Milieu und das Membranpotential durch ein Whole-Cell-Patch-Pipette eingespannt sind. Mit dieser Technik sind Zellen exprimieren YFP-DAT Proteine ​​spannungsgesteuerten eingespannt mit einem Ganzzell Patch-Pipette, während eine amperometrische Elektrode auf der Plasmamembran <s...

Der amperometrische Technik misst Dopamin-Freisetzung aus einer einzelnen Zelle durch Detektieren der aktuellen durch spontane oxidative Dopamin Oxidation produziert. Gleichzeitige Voltage-Clamp und Amperometrie Methodik zeigen die mechanistische Beziehung zwischen der Gesamt-Wertung &quot;Aktivität&quot; Dopamin-Transporter und die regulatorische Rolle dieser Aktivität auf den Rücktransport von Dopamin.

Single Cell Messung der Freisetzung von Dopamin mit gleichzeitiger Voltage-Clamp-und Amperometry

Nach seiner Freisetzung in den synaptischen Spalt entfaltet Dopamin seine biologischen Wirkungen über seine prä- und postsynaptischen Zielstrukturen1. Das Dopaminsignal ist ...

Das Ziel dieses Verfahrens besteht darin, den umgekehrten Transport von Dopamin in einem Neuron zu messen, das mittels simultaner Patch-Clamp- und Pyrometrie-Methode unter Spannungsfixierung steht, um die von DAT vermittelte Dopaminfreisetzung zu quantifizieren. Dies wird erreicht, indem zunächst die Integrität der pyrometrischen Elektrode mit Dopamin überprüft wird. Im zweiten Schritt wird die pyrometrische Elektrode nahe der Zelle positioniert und mittels einer Patch-Pipette ein Ganzzell-Patch des Neurons hergestellt.Anschließend wird die Zellspannung mittels der Patch-Pipette gesteuert, und die von der Zelle über den Dopamintransporter (DAT) freigesetzte Dopaminmenge wird gleichzeitig mit einer pyrometrischen Elektrode aufgezeichnet. Im letzten Schritt wird der DAT-Blocker hinzugefügt, und die Ganzzell- sowie die Pyrometrie-Ströme werden erneut registriert, um den spezifisch durch den Dopamintransporter vermittelten Strom durch Subtraktion zu ermitteln. Die Bedeutung dieser Methode liegt in der Möglichkeit, den umgekehrten Transport von Dopamin über den Dopamintransporter zu messen, während gleichzeitig die Spannung des dopaminergen Neurons kontrolliert wird.Das gleichzeitige Pa

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Forschung

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In diesem Video zeigen wir, wie man einen Leitwert in einem dopaminergen Neuronen in der ganzen Zelle Konfiguration in Hirnschnitten der Ratte festgestellt werden. Diese Technik nennt man das dynamische Klemme.

Die Anwendung eines NMDA-Rezeptor-Leitwert in Rat Mittelhirn dopaminergen Neuronen Mit der Dynamic-Clamp-Technik

Mit Fast-Scan-Cyclovoltammetrie zu elektrisch evozierten präsynaptischen Dopamin-Dynamik in striatalen Hirnschnitten zu messen.

Präsynaptische Dynamics in striatalen Hirnschnitten mit Fast-Scan-Cyclovoltammetrie

Dieses Video zeigt die Implantation von Elektroden und Kanülen in einer anästhesierten Ratte, um die Dopaminfreisetzung im Nucleus accumbens mit einem Potentiostaten und die Infusion von Medikamenten zur Modulation der dopaminergen Aktivität im ventralen tegmentalen Bereich zu messen.

Überwachung der Dopaminfreisetzung in einem Rattenmodell mit VTA-Manipulation des dopaminergen Neuronenrezeptors

Das Video zeigt, wie die elektrische Aktivität in den Photorezeptorneuronen des Ommatidiums von Drosophila aufgezeichnet wird, indem eine Ganzzellkonfiguration etabliert wird. Es hebt die Aktivierung transienter Rezeptorpotentialkanäle durch Lichtimpulse hervor, was zu messbaren Quantenbumps führt.

Ganzzell-Spannungsklemmen-Aufzeichnungen von Drosophila-Photorezeptoren

Subzelluläre Patch-Clamp-Aufzeichnungen bieten die Möglichkeit, die funktionellen Eigenschaften von Dendriten zu untersuchen. Diese feinen Strukturen sind jedoch aufgrund ihres geringen Durchmessers nicht leicht zugänglich. Das hier beschriebene Protokoll zielt darauf ab, die Sammlung stabiler und zuverlässiger Aufzeichnungen von den Dendriten von Dopamin-Neuronen in Schnitten in vitro zu erleichtern.

Subzellulärer Patch-Clamp-Aufnahmen aus der somatodendritische Domain nigraler Dopamine Neurons

Fast-Scan zyklische Voltammetrie kann in vivo Dopamin Neurotransmission im Zusammenhang mit Drogen, Krankheit und anderen experimentellen Manipulationen zu überwachen. Diese Arbeit beschreibt die Implementierung von QNsim1.0, einer Software zur Modellierung von elektrisch stimulierten Dopaminreaktionen gemäß dem quantitativen neurobiologischen Modell zur Quantifizierung von Schätzungen der Dopaminfreisetzung und Wiederaufnahmedynamik.

Modellierung Fast-Scan Zyklische Voltammetrie Daten aus elektrisch stimulierten Dopamin Neurotransmission Daten mit QNsim1.0

Ganzzellige Aufnahmen von Drosophila Melanogaster Photorezeptoren ermöglichen die Messung von spontanen Dunkelstößen, Quantenstößen, makroskopischen Reaktionen auf Licht und Strom-Spannungs-Beziehungen unter verschiedenen Bedingungen. In Kombination mit D. melanogaster genetischen Manipulationswerkzeugen ermöglicht diese Methode die Untersuchung des ubiquitären Inositol-Lipid-Signalwegs und seines Ziels, des TRP-Kanals.

Elektrophysiologische Methode für Ganzzell-Spannungsklemmen Aufnahmen von<em&gt; Drosophila</em&gt; Fotorezeptoren

Dieses Papier beschreibt behoben-Potential amperometrischen Bildaufzeichnungen mit Kohlefaser-Elektroden und enzymatische Biosensor-Technologie zur Messung der Freisetzung von Dopamin und Glutamat mit hoher zeitlicher Auflösung während natürliche lohnende Verhalten in der weibliche Hamster.

Messung In Vivo Veränderungen der extrazellulären Neurotransmitter während natürlich lohnende Verhaltensweisen in weiblichen syrischen Hamster

Hier beschreiben wir die optische Erfassung und Charakterisierung von Aktionspotentialen aus induzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Kardiomyozyten mit einem modularen Hochgeschwindigkeits-Photometriesystem.

Einzelzellige optische Aktionspotentialmessung in human induzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Kardiomyozyten

Diese Methode führt eine einfache Technik zum Nachweis der endogenen Monoaminfreisetzung unter Verwendung akuter Hirnschnitte ein. Das Setup verwendet eine 48-Well-Platte, die einen Gewebehalter für die Monoaminfreisetzung enthält. Freigesetztes Monoamin wird mittels HPLC in Verbindung mit elektrochemischem Nachweis analysiert. Darüber hinaus bietet diese Technik eine Screening-Methode für die Arzneimittelentdeckung.

Ein plattenbasierter Assay zur Messung der endogenen Monoaminfreisetzung in akuten Hirnschnitten

Lernen Sie die kombinierte Patch-Clamp- und Amperometrie-Methode zur Messung des DAT-vermittelten Dopamin-Transports in spannungsgeclampften Neuronen. Diese Technik ermöglicht die Echtzeit-Analyse dopaminerger Signalwege.

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