Name: Im September dieses Jahres in JoVE (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-01T10:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: Entdecken Sie innovative Methoden der Neurobiologie durch visualisierte Experimente. Diese Techniken ermöglichen Forschern neue Einblicke in komplexe biologische Prozesse und fördern die wissenschaftliche Entwicklung.

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<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3126">Live-Bildgebung von dorsalen Wurzelaxonen nach Rhizotomie</a></h2>
Andrew Skuba1, B. Timothy Himes2, 3, Young-Jin Son4 1Temple University, Shriners Hospitals Pediatric Research Center und Abteilung für Anatomie und Zellbiologie, 2Medical Research Service, Department of Veterans Affairs Hospital, 3Abteilung für Neurobiologie und Anatomie, Drexel University College of Medicine, 4Shriners Hospitals Pediatric Research Center und Abteilung für Anatomie und Zellbiologie, Temple University School of Medicine
Ein in vivo Bildgebungsprotokoll zur Überwachung primärer sensorischer Axone nach dorsaler Wurzelquetschung wird beschrieben. Die Verfahren nutzen die Weitfeld-Fluoreszenzmikroskopie und thy1-YFP-transgene Mäuse und ermöglichen eine wiederholte Abbildung der Axonregeneration über 4 cm im PNS und der Axoninteraktionen mit der Grenzfläche des ZNS.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3241">Einführung in die Scherspannung bei der Untersuchung der bakteriellen Adhäsion</a></h2>
Magali Soyer, Guillaume Duménil Blutgefäße als Ziel für Infektionen, Pariser Zentrum für Herz-Kreislauf-Forschung, INSERM U970
Während des Infektionsprozesses ist ein wichtiger Schritt die Adhäsion von Krankheitserregern mit Wirtszellen. In den meisten Fällen tritt dieser Adhäsionsschritt bei mechanischer Belastung durch strömende Flüssigkeit auf. Wir beschreiben eine Technik, die Scherspannung als wichtigen Parameter bei der Untersuchung der bakteriellen Adhäsion einführt.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=2837">Führungsdraht-assistierte Katheterisierung und farbige Farbstoffinjektion für die vaskuläre Kartierung von monochorionischen Zwillingsplazenten</a></h2>
Eric B. Jelin1, Samuel C. Schecter1, Kelly D. Gonzales1, Shinjiro Hirose1, Hanmin Lee1, Geoffrey A. Machin2, Larry Rand3, Vickie A. Feldstein4 1Abteilung für Kinder- und Fetalchirurgie, Abteilung für Chirurgie, Universität von Kalifornien, San Francisco, 2Abteilung für Pathologie, Universität von Alberta, 3Abteilung für Geburtshilfe und Gynäkologie, Universität von Kalifornien, San Francisco, 4Abteilung für Radiologie, Universität von Kalifornien, San Francisco
Die vaskuläre Kartierung von monochorionischen (MC) Zwillingsplazenten nach der Geburt bietet ein Mittel zur detaillierten Demonstration der vaskulären Verbindungen zwischen den Zirkulationen der Zwillinge. Es wird angenommen, dass ein Ungleichgewicht dieser Verbindungen eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung von Komplikationen der MC-Zwillingsbildung spielt, einschließlich des Zwillings-zu-Zwillings-Transfusionssyndroms.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3208">Genaue und einfache Bewertung von vaskulären Anastomosen in monochorionischen Plazenta mit farbigem Farbstoff</a></h2>
Enrico Lopriore1, Femke Slaghekke2, Johanna M. Middeldorp2, Frans J. Klumper2, Jan M. van Lith3, Frans J. Walther1, Dick Oepkes2 1Abteilung für Neonatologie, Abteilung für Pädiatrie, Universitätsklinikum Leiden, 2Abteilung für fetale Therapie, Abteilung für Geburtshilfe, Universitätsklinikum Leiden, 3Abteilung für Geburtshilfe, Universitätsklinikum Leiden
Zwillingstransfusionssyndrom und Zwillingsanämie-Polyzythämie-Sequenz sind zwei potenziell verheerende Probleme in der Perinatalmedizin. Beide Erkrankungen treten nur bei monochorionischen Zwillingen auf und resultieren aus einem unausgewogenen Blutfluss durch plazentare vaskuläre Anastomosen. Wir bieten ein einfaches Protokoll zur genauen Beurteilung des Vorhandenseins von vaskulären Anastomosen durch farbige Farbstoffinjektion von Plazentagefäßen nach der Geburt.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=2767">Diagnose von Ekto- und Endoparasiten bei Laborratten und -mäusen</a></h2>
Christina M. Parkinson1, Alexandra O'Brien1, Theresa M. Albers1, Meredith A. Simon1, Charles B. Clifford1, Kathleen R. Pritchett-Corning2, 3 1Forschungstierdiagnostik, Charles River, 2Forschungsmodelle und -dienstleistungen, Charles River, 3Abteilung für vergleichende Medizin, Universität von Washington
Dieser Artikel beschreibt verschiedene Verfahren zum Screening von Ratten und Mäusen zum Nachweis von Endo- oder Ektoparasitismus. Es werden mehrere diagnostische Assays vorgestellt, sowohl solche, die für die Anwendung an lebenden Tieren geeignet sind, als auch solche, die nach der Euthanasie des Tieres verwendet werden. Fotos, die bei der Identifizierung von Ratten- und Mausparasiten helfen, werden beigefügt.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3197">Autologe endotheliale Vorläuferzell-Seeding-Technologie und Biokompatibilitätstests für kardiovaskuläre Geräte im Großtiermodell</a></h2>
Alexandra E. Jantzen1, Whitney O. Bahn2, Shawn M. Gage3, Justin M. Haseltine1, Lauren J. Galinat1, Ryan M. Jamiolkowski4, Fu-Hsiung Lin3, George A. Truskey1, Hardean E. Achneck3 1Department of Biomedical Engineering, Duke University , 2School of Medicine, Duke University , 3Department of Surgery, Duke University Medical Center, 4School of Medicine, University of Pennsylvania 
Ein Verfahren zur Aussaat von Biomaterialien, die mit Titanblut in Berührung kommen, mit autologen Zellen und zum Testen der Biokompatibilität wird beschrieben. Bei dieser Methode werden endotheliale Vorläuferzellen und Titanröhrchen verwendet, die innerhalb von Minuten nach der chirurgischen Implantation in die Hohlvene des Schweins ausgesät werden. Diese Technik ist an viele andere implantierbare biomedizinische Geräte anpassbar.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3160">Multiparametrische optische Abbildung des Langendorff-perfundierten Kaninchenherzens</a></h2>
Qing Lou, Wenwen Li, Igor R. Efimov Department of Biomedical Engineering, Washington University in St. Louis
Dieser Artikel beschreibt die grundlegenden Verfahren zur Durchführung optischer Kartierungsexperimente im Langendorff-perfundierten Kaninchenherz unter Verwendung des Panorama-Bildgebungssystems und der dualen (Spannung und Kalzium) Bildgebungsmodalität.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3275">Optische Kartierung von Aktionspotentialen und Kalziumtransienten im Mausherz</a></h2>
Di Lang, Matthew Sulkin, Qing Lou, Igor R. Efimov Department of Biomedical Engineering, Washington University in St. Louis
Dieser Artikel beschreibt das Dissektionsverfahren, den instrumentellen Aufbau und die experimentellen Bedingungen während der optischen Kartierung des Transmembranpotentials (Vm) und des intrazellulären Calciumtransienten (CaT) in intakten isolierten Langendorff-perfundierten Mausherzen.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3128">Bildgebung von G-Protein Coupled Receptor (GPCR)-vermittelten Signalereignissen, die die Chemotaxis von Dictyostelium discoideum steuern</a></h2>
Xuehua Xu, Tian Jin Chemotaxis Signal Section, Labor für Immungenetik, Nationales Institut für Allergien und Infektionskrankheiten, Nationale Institute für Gesundheit
Hier beschreiben wir detaillierte Lebendzell-Bildgebungsmethoden zur Untersuchung der Chemotaxis. Wir stellen fluoreszenzmikroskopische Methoden vor, um die raumzeitliche Dynamik von Signalereignissen in wandernden Zellen zu überwachen. Die Messung von Signalereignissen ermöglicht es uns, besser zu verstehen, wie ein GPCR-Signalnetzwerk die Gradientenerfassung von Chemolockstoffen erreicht und die gerichtete Migration eukaryotischer Zellen steuert.
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3173">Verwendung eines vergleichenden Speziesansatzes zur Untersuchung der Neurobiologie väterlicher Reaktionen</a></h2>
Catherine L. Franssen1, Massimo Bardi2, Kelly G. Lambert1 1Abteilung für Psychologie, Randolph-Macon College, 2Abteilung für Psychologie, Marshall University
Der Ansatz der vergleichenden Spezies ermöglicht es Verhaltensneurowissenschaftlern, verschiedene neurobiologische Faktoren zu untersuchen, die mit bestimmten Verhaltensweisen verbunden sind, die als charakteristisch für ein bestimmtes Tiermodell angesehen werden. Diese Technik nutzt natürlich vorkommende Unterschiede im Verhalten zwischen eng verwandten Arten und erfordert keine invasiven Techniken, um den Ausdruck des Verhaltens zu manipulieren.

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September 2011: This Month in JoVE

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Entdecken Sie innovative Methoden der Neurobiologie durch visualisierte Experimente. Diese Techniken ermöglichen Forschern neue Einblicke in komplexe biologische Prozesse und fördern die wissenschaftliche Entwicklung.

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Aaron Kolski-Andreaco

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