Name: Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Lernen Sie die Roux-en-Y-Magenbypass-Operation in Ratten zur Erforschung physiologischer Mechanismen von Adipositas und Diabetes. Dieses Modell ermöglicht langfristige Studien zur Nahrungsaufnahme und Gewichtsreduktion.

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Marco und Florian Seyfried Bueter wurden von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) unterstützt. Thomas Lutz A wurde durch den Schweizerischen Nationalfonds (SNF) unterstützt. Marco Bueter und Thomas Lutz Eine weitere Mittel aus dem National Institute of Health (NIH) und aus dem Zürcher Zentrum für Integrative Humanphysiologie (ZIHP). Carel W le Roux wurde von einem Department of Health Clinician Scientist Award unterstützt. Imperial College London wird unterstützt von der NIHR Biomedical Research Centre Förderprogramm.

1. Präoperative Betreuung <ol><li> Entfernen Sie Lebensmittel aus Ratte über Nacht vor der Operation. </li><li> Induzieren Anästhesie in der Kammer mit 4-5% Isofluran und O2-Flow von 2 l / min. </li><li> Shave Bauch vom Brustbein bis zum Becken mit elektrischen Rasierer. </li><li> Platzieren Sie narkotisierten Ratte in Rückenlage auf isotherme Heizkissen. </li><li> Bewerben Augensalbe (Vitagel), bevor die Ratten &quot;Schnauze in Nasenkonus. </li><li> Aufrechterhaltung der Narkose mit Isofluran-Konzentration von 2-3% und O2-Flow von 2 l / min. </li><li> Desinfizieren Sie die Haut mit Betadine-Lösung. </li><li> Bestätigen Tiefe der Anästhesie mit einer Pinzette Prise zwischen den Zehen der Hinterhand. </li><li> Verwalten 5,7 mg / kg Enrofloxacin intraperitoneal als perioperative Antibiotikaprophylaxe und 1 mg / kg Flunixin zur Analgesie. </li></ol> 2. Mediane Laparotomie <ol><li> Führen Medianschnitt mit Skalpell ab knapp unter Schwertfortsatz (Blade Nr. 10). </li><li> Mobilisieren Haut Umfang von Unterlying Bauchmuskeln mit Metzenbaum-Schere. </li><li> Öffnen Sie Bauchhöhle. </li><li> Installieren Sie Retraktoren auf bestmögliche Belichtung des Operationsfeldes zu erleichtern. </li></ol> 3. Biliopankreatische und Ernährungskultur Limb <ol><li> Identifizieren Sie, wo das Duodenum oder proximalen Jejunum verläuft unter dem Doppelpunkt. </li><li> Transekt Dünndarm etwa 10 cm aboral von hier und Ligieren der beiden Enden des Darms (PDS 5-0). </li><li> Platzieren Sie proximalen Stumpf der beiden Enden im linken oberen Quadranten des Bauches, wie sie später verwendet werden soll, um die biliopankreatischer Schenkel des Roux-en-Y-Rekonstruktion zu bilden. </li><li> Platzieren Sie distalen Stumpf der beiden Enden in im rechten oberen Quadranten des Bauches, wie sie später verwendet werden soll, um die alimentäre Schenkel der Roux-en-Y-Rekonstruktion zu bilden. </li></ol> 4. Jejuno-Jejunostomie <ol><li> Identifizieren Blinddarm mit ileocoecal Ventil und Ileum. </li><li> Folgen Sie Ileum mündlich für ca. 25 cm. Die Jejuno-Jejunostomie wird hier als Ausgangspunkt platziert werdendes gemeinsamen Kanals von Roux-en-Y-Rekonstruktion. </li><li> Abrufen biliopankreatischer Glied vom linken oberen Quadranten des Bauches und positionieren Sie es neben dem gemeinsamen Kanal, wo Sie planen, Jejuno-Jejunostomie durchzuführen. </li><li> Sichere biliopankreatischer Leib und gemeinsamen Kanal mit Retention Stich (PDS 6-0). </li><li> Inzision beide Schleifen über annähernd 10 mm mit Mikro-Schere. </li><li> Erstellen Jejuno-Jejunostomie, indem Sie Seite-an-Seit-Anastomose mit Einzelknopfnähten (PDS 6-0). </li><li> Erste komplette dorsale Seite und dann Ventralseite Anastomose. </li></ol> 5. Magentasche <ol><li> Identifizieren gastroösophagealen Übergangs. </li><li> Mobilisieren Sie diesen Bereich durch Sezieren Magen-Leber-und Magen-Milz-Bänder mit Metzenbaum-Schere. </li><li> Bewegen Sie gastrica sinistra und Vagusfasern von links para-Ösophagus-Bündel seitlich zu starken Blutungen und Vagusnerv Schaden, wenn kleine Magentasche erstellt wird, zu verhindern. </li><li> Expose gastroösophagealer junction indem Wattestäbchen Retro-ösophageal. </li><li> Gerinnen kleinen Gefäßen der frontalen Magen durch Verwendung von handelsüblichen Kauterisierungsvorrichtung - auch, um Blutungen zu verhindern. </li><li> Transekt Magen etwa 5 mm unter gastro-ösophagealen Übergang schaffen Magentasche mit einer Größe von nicht mehr als 2-3% der ursprünglichen Größe Magen mit feinen, gebogenen Schere. </li><li> Schließen Restmagen (PDS 5-0). </li></ol> 6. Gastro-Jejunostomie <ol><li> Abrufen alimentäre Schenkel von rechten oberen Quadranten des Bauches und positionieren Sie es neben Magentasche. </li><li> Erstellen Gastro-Jejunostomie durch Ausführen Ende-zu-Seite-Anastomose (PDS 7-0). </li><li> Erste komplette Rückseite und dann Vorderseite der Anastomose. </li></ol> 7. Bauchdeckenverschluss <ol><li> Reduzieren Sie Anästhesie durch die Reduzierung Isofluran-Konzentration auf 1,5%. </li><li> Schließen Sie Muskelschicht der Bauchwand mit kontinuierlichen Fäden (PDS 4-0). </li><li> Administrieren 100 ul 0,3 mg / mlBuprenorphin-Lösung subkutan zur Analgesie. </li><li> Weitere Reduzierung Isofluran-Konzentration auf 1%. </li><li> Schließen Sie die Haut mit Einzelknopfnähten (Vicryl 4-0). </li></ol> 8. Postoperative Pflege <ol><li> Stoppen Isofluran und fahren Sie mit O2. </li><li> Verwalten 5 ml warmer Kochsalzlösung für Flüssigkeitsersatz in drei subkutanen Depots. </li><li> Position Ratte unter Rotlicht bis zur vollständigen Genesung. </li><li> Liefert die Ratte zu Hause Käfig. </li></ol> 9. Repräsentative Ergebnisse Tiere und Gehäuse Männliche Wistar-Ratten (Harlan Laboratories Inc., Schlehe, UK;. Elevage Janvier, Le Genest-St-Isle, Frankreich) mit einem Gewicht zwischen 350 und 500 g wurden einzeln unter einem 12 h / 12 h Hell-Dunkel-Zyklus bei einer Raumtemperatur untergebracht von 21 ± 2 ° C. Wasser und standardmäßigem Futter waren ad libitum zur Verfügung, sofern nicht anders angegeben. Alle Experimente wurden unter einer Lizenz von der Startseite Offi ausgestellt durchgeführtce, UK (PL70-6669) oder genehmigt durch das Veterinäramt des Kantons Zürich, Schweiz. Alle Ratten wurden eine Woche der Akklimatisation, bevor sie randomisiert, um Magen-Bypass-oder Sham-Operation gegeben. Nach der Operation erhielten die Ratten flüssige Nahrung für 3 Tage vor dem Zugang zum normalen Futter wurde neu installiert. Das Körpergewicht Daten unserer Ratte Magen-Bypass-Modell stehen im Einklang mit früheren Befunden, dass Magenbypass-Operation wirksam, um das Körpergewicht zu reduzieren und vor allem auf den Verlust an Körpergewicht (Abbildung 2) zu halten ist. Durchschnittliche präoperative Körpergewicht der Ratten, die für Magen-Bypass-und Sham-Operationen verwendet wurde, war ähnlich (Sham: 433,4 ± 8,3 g vs Bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Fünf Tage nach der Operation scheinoperierten Kontrollen wog deutlich mehr im Vergleich zum Magen-Bypass-Ratten (Sham: 422,2 ± 8,3 g vs Bypass: 374,7 ± 7,6 g, p &lt;0,001). Am ersten postoperativen Tag 60, wurde Unterschied im Körpergewicht fast 170 g (Sham: 533,2 ± 8,1 g vs Bypass: 366,2 ± 10,8 g, p &lt;0,001). Die Nahrungsaufnahme Die Nahrungsaufnahme folgen ähnlichen Mustern wie Körpergewicht und wurde im Magen-Bypass-Ratten reduziert, wenn zu Sham-ad libitum gefütterten Ratten verglichen. Abbildung 3 zeigt die durchschnittliche tägliche Nahrungsaufnahme für beide Gruppen (postoperativen Tag 1-60). Tägliche Nahrungsaufnahme war durchweg niedriger nach Magenbypass (Sham: 29,9 ± 0,2 g vs Bypass: 25,7 ± 0,3 g, p &lt;0,001). Darmhormone Blut aus allen Ratten wurde am Tag der Beendigung Studie 8,16 erhoben. Tiere hatten ad libitum Zugang zu Nahrung in der Nacht vor und wurden zu Beginn des Zyklus Licht am postoperativen Tag 60 enthauptet. Blut wurde von unmittelbar bei 3000 UpM für 10 Minuten bei 4 ° C zentrifugiert und bei -20 ° C, bis die Proben wurden in doppelter Ausführung in einem einzigen Durchlauf getestet. PYY-like Immunreaktivität war meagemessen mit einem spezifischen und sensitiven Radioimmunoassay, die misst sowohl die volle Länge (PYY1-36) und das Fragment (PYY3-36). GLP-1 wurde geschaffen durch in-house Radioimmunoassays 17,18 gemessen. Unterschiede in der Nahrungsaufnahme kann teilweise durch eine erhöhte postprandiale Plasmaspiegel von Peptid YY (PYY) und Glucagon-like Peptide 1 (GLP-1) als Magen-Bypass-Ratten erklären zeigten signifikant höhere Werte für PYY (Sham: 26 ± 2 pmol / l vs . Bypass: 141 ± 14 pmol / l, p &lt;0,001) und GLP-1 (Sham: 40 ± 5 pmol / l vs Bypass: 215 ± 23 pmol / l, p &lt;0,001; Abbildung 4). <img alt="1" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig1.jpg" /> Abbildung 1. Magen-Bypass-Anatomie. Schematische Darstellung des Dünndarms vor Anatomie (A) und nach (B) Magen-Bypass-Operation. Die verschiedenen Schattierungen von rot ca. repräsentieren entsprechenden Segmente des Dünndarms mit dem Medium Rot die Vorderdarm(Speiseröhre, Magen und Zwölffingerdarm proximalen Jejunum), das Licht rot, die den Mitteldarm (proximalen und mittleren Jejunum, Ileum proximalen) und die dunkelrote, die den Enddarm (Ileum, Caecum). <img alt="2" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig2.jpg" /> Abbildung 2. . Verlust an Körpergewicht nach Magenbypass-Operation bei Ratten Veränderung des Körpergewichts bei einer repräsentativen Gruppe von Ratten nach Magenbypass (-) (n = 52) und Sham-Ratten (-) (n = 52) über einen Beobachtungszeitraum von 60 Tage. Die Daten wurden aus früheren Publikationen 6,8-10 gebündelt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt (*** = p &lt;0,001). <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Abbildung 3. Durchschnittliche Nahrungsaufnahme nach der Magenbypass-Operation bei Ratten. Durchschnittliche tägliche Nahrungsaufnahme von einer repräsentativen Gruppe von Ratten nach Magenbypass (schwarz, n = 52) und Sham-Ratten (weiß, n = 52) über einpostoperativen Zeitraum von 60 Tagen. Die Daten wurden aus früheren Veröffentlichungen 6,8-10 gepoolt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt. <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Abbildung 4. Postprandiale PYY und GLP-1-Serumspiegel nach Magenbypass-Operation bei Ratten. Postprandiale PYY und GLP-1-Serumspiegel für Magen-Bypass-Ratten (schwarz, n = 18) und Sham-Ratten (weiß, n = 22). Die Daten wurden aus bisherigen Veröffentlichungen 8,16 gebündelt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt.

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<li>Choban, P. S., Flancbaum, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+Roux+limb+lengths+on+outcome+after+Roux-en-Y+gastric+bypass%3A+a+prospective%2C+randomized+clinical+trial.+Obes%5BTitle%5D)+AND+%22Surg%22%5BJournal%5D)">The effect of Roux limb lengths on outcome after Roux-en-Y gastric bypass: a prospective, randomized clinical trial. Obes.</a> Surg. 12, 540-545 (2002).</li>
<li>Gleysteen, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Five-year+outcome+with+gastric+bypass%3A+Roux+limb+length+makes+a+difference%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Obes.+Relat.+Dis%22%5BJournal%5D)">Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference.</a> Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).</li>
<li>Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+varying+Roux+limb+lengths+and+weight+loss+in+gastric+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass.</a> Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).</li>
<li>Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+common+hepatic+branch+of+the+vagus+is+not+required+to+mediate+the+glycemic+and+food+intake+suppressive+effects+of+glucagon-like-peptide-1%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Der Roux-en-Y-Magenbypass Verfahren beim Menschen wurde erstmals von Mason im Jahr 1967 beschrieben und modifiziert, um seiner jetzigen Form von Torres im Jahr 1983 19. Derzeit besteht das Verfahren aus einem kleinen Magentasche und den Bypass des proximalen Dünndarms. Eine schematische Darstellung der prä-und postoperativen Anatomie ist in Abbildung 1 wiedergegeben. Magenbypass bei Menschen hervorruft und unterhält Gewichtsverlust von etwa 15-30% 2. De...

<table border="1"><tbody><tr><td> Generische Bezeichnung </td><td> Markenname </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Enrofloxacin </td><td> Baytril 2,5% </td><td> Provet AG </td><td> 1036 </td></tr><tr><td> Flunixin </td><td> Finadyne </td><td> Graeub </td><td> 908040 </td></tr><tr><td> Buprenorphin </td><td> Temgesic </td><td> Reckitt Benckiser </td><td> 138976 </td></tr><tr><td> Isofluran </td><td> Isoflo </td><td> Graeub </td><td> 902035 </td></tr><tr><td> Vitamin A </td><td> Vitagel </td><td> Bausch &amp; Lomb </td><td> 690 </td></tr><tr><td> Jod-Lösung </td><td> Betadine </td><td> Mundipharma </td><td> 111141 </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> NaCl 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 534534 </td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Drogen. <table border="1"><tbody><tr><td> Name </td><td> Größe </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z924H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 5-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z925H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 6-0 </td><td> Ethicon </td><td> PUU2971E </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 7-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z1370E </td></tr><tr><td> Vicryl </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V451H </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Nahtmaterial. <table border="1"><tbody><tr><td> Name </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Skalpellgriff Nr. 3 </td><td> Aesculap </td><td> BB073R </td></tr><tr><td> Skalpellklingen Keine. 10 </td><td> Swann-Morton </td><td> 0301 </td></tr><tr><td> Nadelhalter </td><td> Aesculap </td><td> BM124R </td></tr><tr><td> Chirurgische Pinzette </td><td> Aesculap </td><td> BD555R </td></tr><tr><td> Metzenbaum Schere, gerade </td><td> Aesculap </td><td> BC022R </td></tr><tr><td> Metzenbaum-Schere, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BC023R </td></tr><tr><td> Zarte Schere, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BC061R </td></tr><tr><td> Arterienklemme, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BH109R </td></tr><tr><td> Arterienklemme, gebogen, 1x2 Zähne </td><td> Aesculap </td><td> BH121R </td></tr><tr><td> Probe-, Doppel-ended </td><td> Aesculap </td><td> BN113R </td></tr><tr><td> Micro Nadelhalter </td><td> Aesculap </td><td> FM 541R </td></tr><tr><td> Mikropinzetten </td><td> Aesculap </td><td> FM571R </td></tr><tr><td> Micro Schere </td><td> AescUlap </td><td> FM470R </td></tr><tr><td> Einweg-Augen-Kauter </td><td> John Weiss Internationalen </td><td> 0111122 </td></tr><tr><td> Wattestäbchen </td><td> Hartmann AG </td><td> 9679369 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Chirurgische Geräte.

roux-en-y-magenbypass operation in ratten

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Derzeit ist die effektivste Therapie für die Behandlung der morbiden Adipositas, die signifikante und gepflegt Verlust an Körpergewicht mit einer bewährten Sterblichkeit Nutzen induzieren Adipositaschirurgie 1,2. Folglich hat es einen stetigen Anstieg der Zahl der bariatrischen Operationen getan in den letzten Jahren weltweit mit der Roux-en-Y-Magenbypass (Magenbypass) die am häufigsten durchgeführte Operation 3. Vor diesem Hintergrund ist es wichtig, die physiologischen Mechanismen, durch die Magen-Bypass induziert und hält den Verlust an Körpergewicht zu verstehen. Diese Mechanismen sind noch nicht vollständig verstanden, kann aber reduziert Hunger und zählen erhöhte Sättigung 4,5, 6,7 erhöhten Energieverbrauch, verändert Vorliebe für Lebensmittel mit hohem Fett-und Zucker 8,9, Salz und Wasser verändert Umgang mit der Niere 10 als sowie Änderungen in Darmmikrobiota 11. Solche Veränderungen nach Magen-Bypass gesehen kann zumindest teilweise aus, wie Stammzellendie Operation verändert die Hormonmilieu weil Magenbypass erhöht die postprandiale Freisetzung von Peptid-YY (PYY) und Glucagon-like-Peptid-1 (GLP-1), Hormone, die durch den Darm in Gegenwart von Nährstoffen freigesetzt werden und zu reduzieren essen 12. In den letzten zwei Jahrzehnten zahlreiche Studien mit Ratten wurden zur weiteren Untersuchung physiologische Veränderungen nach Magen-Bypass durchgeführt. Der Magen-Bypass-Ratten-Modell hat sich als ein wertvolles experimentelles Werkzeug nicht zuletzt sein, wie es ahmt genau den zeitlichen Verlauf und das Ausmaß der menschlichen Gewichtsverlust, sondern auch ermöglicht es den Forschern zu kontrollieren und zu manipulieren kritische anatomische und physiologische Faktoren, einschließlich der Verwendung von geeigneten Kontrollen. Folglich gibt es eine breite Palette von Ratten-Magen-Bypass-Modelle sind in der Literatur, an anderer Stelle ausführlicher 13-15. Die Beschreibung der genauen Operationstechnik dieser Modelle ist sehr unterschiedlich und unterscheidet sich in Bezug auf die Größe zB Beutel, des KörpersLängen, und die Erhaltung der Vagusnerv. Wenn berichtet, scheinen die Sterblichkeitsrate auf 0 bis 35% 15 reichen. Darüber hinaus hat der Operation wurde fast ausschließlich bei männlichen Ratten verschiedener Stämme und Altersstufen durchgeführt. Prä-und postoperative Ernährung ebenfalls variiert erheblich. Technische und experimentellen Variationen veröffentlicht Magen-Bypass-Ratte Modelle erschweren den Vergleich und die Identifizierung von potentiellen physiologischen Mechanismen im Magen-Bypass beteiligt. Es gibt keine eindeutigen Beweise dafür, dass jedes dieser Modelle überlegen ist, aber es ist ein aufstrebendes Notwendigkeit zur Standardisierung des Verfahrens, um einheitliche und vergleichbare Daten zu erzielen. Dieser Artikel soll daher darzulegen und zu diskutieren technische und experimentelle Details unserer zuvor validiert und veröffentlicht Magen-Bypass-Ratten-Modell.

Zahlreiche Studien über Magen-Bypass-Ratte Modelle wurden erst kürzlich durchgeführt, um die zugrunde liegenden physiologischen Mechanismen der Roux-en-Y-Magenbypass-Operationen aufzudecken. Dieser Artikel soll zeigen, und diskutieren die technische und experimentelle Details unserer veröffentlichten Magen-Bypass-Ratten-Modell, um Vorteile und Grenzen dieser experimentelles Werkzeug zu verstehen.

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

Derzeit ist die wirksamste Therapie zur Behandlung von morbider Adipositas, um einen signifikanten und dauerhaften Gewichtsverlust mit einer nachgewiesenen Senkung der Mortalität zu induzieren...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, ein reproduzierbares RY-Magenbypass-Modell an Ratten zu demonstrieren, das erforderlich ist, um die zugrundeliegenden physiologischen Mechanismen beim Menschen aufzuklären. Dies wird erreicht, indem zunächst ein bilio-pankreatischer und ein enteraler Schenkel angelegt werden. Anschließend wird eine Seiten-zu-Seiten-Anastomose zwischen dem bilio-pankreatischen Schenkel und dem enteralen Schenkel durchgeführt, wodurch ein zukünftiger gemeinsamer Kanal entsteht.Dann wird der Magen nahe der gastroösophagealen Verbindung durchtrennt, um einen kleinen Magenbeutel zu erzeugen, der an der proximalen Enteralseite mit dem enteralen Schenkel anastomosiert wird, um die RNY-Rekonstruktion des Bypass-Verfahrens abzuschließen. Die Ergebnisse zeigen eine langfristig aufrechterhaltene Reduktion der Nahrungsaufnahme und des Körpergewichts der Tiere nach Magenbypass infolge erhöhter postprandialer Plasmaspiegel von Peptid YY und Peptid 1. Der Hauptvorteil dieser Technik im Vergleich zu bestehenden Methoden wie Magenbypass-Modellen mit größerem Magenbeutelvolumen besteht darin, dass unser Modell das chirurgische Vorgehen beim Menschen genau nachahmt, indem ein sehr kleiner Magenbeutel erzeugt wird, der weniger als 5 % des ursprünglichen Magenvolumens ausmacht. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen auf dem Gebiet der Physiologie und Pathophysiologie von Essverhalten, Adipositas und daraus resultierenden Erkrankungen wie Typ-2-Diabetes oder kardiovaskulären Erkrankungen zu beantworten.Am Abend vor der Magenbypass-Operation entfernen Sie am folgenden Tag jegliche Nahrung aus dem Käfig der Ratte, nachdem das Tier in einer Flusskammer mit vier bis 5 % Fluoranästhesie anästhesiert wurde; rasieren Sie dann den Bauch der Ratte mit einem Elektrorasierer vom Sternum bis zum Becken. Danach bringen Sie die Ratte in Rückenlage auf eine isotherme Heizplatte. Tragen Sie Salbe auf die Augen der Ratte auf und platzieren Sie ihr Gesicht in eine Nasenmaske.Die Anästhesie mit zwei bis 3 % Isofluran und Sauerstoff bei zwei Litern pro Minute aufrechterhalten. Anschließend die Haut mit Betadine-Lösung desinfizieren. Danach den Anästhesiegrad mit einer Pinzette überprüfen, indem zwischen den Zehen des Hinterbeins geklemmt wird, für perioperative Antibiotika, die intraperitoneal verabreicht werden: Enrofloxacin.Und zur Analgesie fügen Sie ein Milligramm pro Kilogramm Flu Nixon hinzu. Beginnen Sie die Operation, indem Sie mit einem Skalpell einen medianen Schnitt vornehmen, der knapp unterhalb des Xiphoidfortsatzes beginnt. Verwenden Sie Mets und Balm, schneiden Sie mit der Schere zirkulär und mobilisieren Sie die Haut von den darunterliegenden Bauchmuskeln. Öffnen Sie die Bauchhöhle und setzen Sie Retraktoren ein, um das Operationsfeld freizulegen, um einen pankreatischen und elementaren Lappen zu schaffen.Zunächst feststellen, ob das Duodenum oder das proximale Jejunum etwa 10 Zentimeter oral von dieser Stelle unter dem Kolon verläuft, den Dünndarm durchtrennen und beide Enden des Darms ligieren. Die proximalen und distalen Stümpfe der beiden Enden später zur Verwendung jeweils im linken oberen und rechten oberen Quadranten des Bauchraums platzieren. Um die beiden Schenkel aus Pankreas und Darm für die Ru-MY-Rekonstruktion zu bilden, den Zäkum mit der Ileozökalklappe und dem Ileum identifizieren.Folgen Sie dem Ileum oral für etwa 25 Zentimeter. Danach heben Sie den bialen Pankreasschenkel aus dem linken oberen Quadranten des Bauchraums hervor und positionieren Sie ihn neben dem gemeinsamen Kanal. An dieser Stelle nähen Sie einen Haltestich.Um den bilio-pankreatischen Schenkel und den gemeinsamen Kanal zu sichern. Beide Schleifen mit einer Mikroschere über eine Strecke von etwa 10 Millimetern einritzen. Anschließend mit Einzelnahtfäden eine nebeneinander liegende Anastomose anlegen.Zuerst die Rückseite, dann die Vorderseite. Identifizieren Sie die gastroösophageale Grenze zur Anlage des Magenbeutels. Mobilisieren Sie diesen Bereich mit Matson-Balm-Scheren, indem Sie die Ligamente hepatogastricum und ligamentum gastrosplenicum dissezieren.Bewegen Sie anschließend die linke Magenarterie und die vagalen Fasern des linken parösophagealen Bündels lateral, um schwere Blutungen und Schädigungen des Vagusnervs zu vermeiden, wenn der kleine Magenbeutel angelegt wird. Legen Sie die gastroösophageale Verbindung frei, indem Sie einen Wattestäbchen retroösophageal platzieren. Koagulieren Sie mit einem handelsüblichen Cordery-Gerät die kleinen Gefäße des vorderen Magens, um Blutungen zu verhindern, und verwenden Sie dabei feine gebogene Scheren.Schneiden Sie den Magen etwa fünf Millimeter unterhalb der gastroösophagealen Grenze durch, wodurch ein Magenbeutel entsteht, dessen Größe nicht mehr als zwei bis 3 % der ursprünglichen Magengröße beträgt. Danach verschließen Sie den Magenrest für die Gastrostomie. Entnehmen Sie den elementaren Schenkel aus dem rechten oberen Bauchquadranten und positionieren Sie ihn neben dem Magenbeutel.Führen Sie eine anokale Seitenanastomose durch, beginnend mit dem hinteren und anschließend dem vorderen Abschnitt. Reduzieren Sie die Isoflurankonzentration auf 1,5 % unter Verwendung kontinuierlicher Nähte. Schließen Sie die Muskelschicht der Bauchwand subkutan als analgetische Maßnahme.Geben Sie 100 Mikroliter einer 0,3 Milligramm pro Milliliter Lösung verabreichen. Buprenorphin reduziert das Isofluran anschließend auf 1 %. Anschließend die Haut mit unterbrochenen Nähten verschließen, die Anästhesie beenden und mit Sauerstoff fortfahren. Danach fünf Milliliter warme Kochsalzlösung an drei subkutanen Stellen verabreichen.Stellen Sie die Ratte unter ein rotes Licht, bis sie vollständig erwacht ist. Geben Sie die Ratte schließlich in ihren Heimkäfig zurück und verabreichen Sie drei Tage lang eine flüssige Diät, bevor Sie den Tieren Zugang zu normalem Futter gewähren. Dieses Diagramm zeigt, dass fünf Tage nach der Operation die Kontrolltiere mit Scheinoperation signifikant mehr wiegen als die Ratten mit Magenbypass.Und am Tag 60 war der Unterschied im Körpergewicht deutlich ausgeprägter, was darauf hindeutet, dass eine Magenbypass-Operation wirksam bei der Gewichtsreduktion und der Aufrechterhaltung des Gewichtsverlusts ist. Diese Abbildung zeigt, dass die tägliche Nahrungsaufnahme bei Ratten mit Magenbypass im Vergleich zu sham-operierten, ad libitum gefütterten Ratten konstant niedriger war. Unterschiede in der Nahrungsaufnahme könnten teilweise durch erhöhte postprandiale Plasmaspiegel von Peptid YY und glucagonähnlichem Peptid 1 erklärt werden, wie hier dargestellt. Ratten nach Magenbypass zeigten signifikant höhere Spiegel sowohl von Peptid YY als auch von glucagon-ähnlichem Peptid eins. Sobald die Technik beherrscht ist, kann sie nach ihrer Entwicklung in etwa einer Stunde durchgeführt werden, sofern sie korrekt ausgeführt wird. Diese Technik ebnete den Weg für Forscher im Bereich der Adipositas- und Diabetesforschung, um operationabhängige Veränderungen der Darmenterologie bei Ratten und Mäusen zu untersuchen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video beschreibt ein bariatrisches Chirurgie-Roux-en-Y-Verfahren. Dabei wird das Jejunum - der mittlere Teil des Darms - durchtrennt, um zwei Darmgliedmaßen zu erzeugen. Die Gallengliedmaße wird an die bestehende Darmschlinge und die Verdauungsgliedmaße an den Magen angehängt, wodurch ein Magenbypass entsteht. Der hier angelegte Magenbypass hilft, die Nährstoffaufnahme zu verringern und das Körpergewicht effizient zu reduzieren.

Roux-en-Y Magenbypass-Verfahren: Ein bariatrisches chirurgisches Verfahren zur Magenresektion im Mausmodell

Bariatrische Chirurgie ist der effizienteste Weg, um das Körpergewicht und die tödlichen metabolischen Komplikationen (Diabetes, Fettleibigkeit und Dyslipidämie) zu reduzieren, die häufig mit krankhafter Fettleibigkeit verbunden sind. Mausmodelle der bariatrischen Chirurgie stellen einen einzigartigen Vorteil dar, um die molekularen Mechanismen zu entschlüsseln, die hinter den positiven Auswirkungen dieser Operationen auf Diabetes, Bluthochdruck und Dyslipidämie stehen.

Techniken der Schlauchmagen-Operation und Modified Roux-en-Y-Magenbypass bei Mäusen

Das folgende beschreibt die Leistung der vertikalen Sleeve-Gastrektomie bei Mäusen. Dies ist eine Art von Gewichtsverlust Chirurgie, die etwa 70 % des Magens entfernt wird.

Ein Mausmodell der vertikalen Sleeve-Gastrektomie

Dieses Protokoll ist für die Erfüllung einer Anastomose Magenbypass (OAGB) auf Ratte. Der Operator führt einen langen, röhrenförmigen geheftet Magen Beutel gefolgt von handgenähter Anastomose. Für dieses Modell reproduziert der Betreiber das gleiche Verhältnis zwischen biliopankreatischen und gemeinsame Gliedmaßen beim Menschen; Daher misst die Biliopancreatic Limb 35 cm.

Eine Anastomose Magenbypass (OAGB) bei Ratten

Die Prävalenz von Diabetes und Adipositas nimmt weltweit kontinuierlich zu. Die Mechanismen zwischen Diabetes, Adipositas und der damit verbundenen Sterblichkeit und Komorbiditäten müssen weiter untersucht werden. Hier stellen wir ein Protokoll zur Hülsengastrektomie (SG) bei Tieren als unkompliziertes präklinisches Modell der bariatrischen Chirurgie vor.

Ärmel-Gastrektomie bei Mäusen mit chirurgischen Clips

Roux-en-Y Magenbypass (RYGB) wird zur Behandlung von Fettleibigkeit und Diabetes durchgeführt. Die Mechanismen, die der Wirksamkeit von RYGB zugrunde liegen, sind jedoch nicht vollständig verstanden, und die Studien sind durch technische Schwierigkeiten begrenzt, die zu einer hohen Mortalität in Tiermodellen führen. Dieser Artikel enthält Anweisungen zur Durchführung von RYGB bei Ratten mit hohen Erfolgsraten.

Ein Protokoll für Roux-en-Y Magenbypass bei Ratten mit linearen Heftern

Der Duodeno-ileale Bypass mit einfacher Anastomose (SADI-S) ist ein aufstrebendes bariatrisches Verfahren mit wichtigen metabolischen Auswirkungen. In diesem Artikel stellen wir ein zuverlässiges und reproduzierbares Modell von SADI-S in Mäusen vor.

Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen

Das Rattenmodell der akuten Myokardinfarkt (AMI) ist nützlich, um die Folge eines MI auf die kardiale pathophysiologischen und physiologischen Funktion zu untersuchen.

Akuter Myokardinfarkt bei Ratten

Wir präsentieren einen einfach zu etablieren Revision der klassischen Zwei-Manschette Technik zur orthotopen Lebertransplantation in der Ratte.

Lebertransplantation bei der Ratte

Bei Magenkrebs im Frühstadium besteht das Ziel der Operation darin, den distalen Magen einschließlich des Primärtumors präzise zu entfernen. Um dies zu erreichen, ist eine genaue Lokalisierung des Tumors entscheidend, insbesondere bei der vollständig laparoskopischen Chirurgie. Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur intraoperativen Gastroskopie bei der totallaparoskopischen subtotalen Gastrektomie.

Die intraoperative Gastroskopie für Tumorlokalisation in der laparoskopischen Chirurgie für Adenokarzinom des Magens

Lernen Sie die Roux-en-Y-Magenbypass-Operation in Ratten zur Erforschung physiologischer Mechanismen von Adipositas und Diabetes. Dieses Modell ermöglicht langfristige Studien zur Nahrungsaufnahme und Gewichtsreduktion.

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

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