Bestimmung Boden übertragenen Wurminfektionen Status und körperliche Fitness der School-Aged Children

Das Ziel der folgenden Methoden besteht darin, Versuche zur Beurteilung des Übertragungsstatus von Helmuth-Infektionen zu erleichtern und zu standardisieren sowie festzustellen, ob übertragene Helmuth-Infektionen einen Einfluss auf die körperliche Fitness von Schulkindern haben. Dies wird durch die Anwendung der Kato-Katz-Technik zur Diagnose von Infektionen mit häufigen, durch den Boden übertragenen Helminthen erreicht, insbesondere Ascaris Lumoid TUS Tria sowie den Hakenwürmern und CLIs stoma Duo Denali und NTO ERUs. Als zweiter Schritt wird die Erman-Technik durchgeführt, die die am weitesten verbreitete Methode zur Diagnose von Strully Stir Corrales darstellt.

Danach wird, um die körperliche Fitness von Kindern zu beurteilen, der 20-Meter-Shuttle-Run-Test durchgeführt. Es werden Ergebnisse erzielt, die die Unterschiede in den körperlichen Fitnessniveaus zwischen mit Helmut infizierten und nicht infizierten Kindern auf der Grundlage der oben genannten Methoden aufzeigen. Eine Kombination dieser Methoden kann helfen, zentrale Fragen zu beantworten, beispielsweise, ob über die Sojabohne übertragene Helmintheninfektionen einen Einfluss auf die körperliche Fitness infizierter Personen haben, und welche tatsächliche Belastung durch solche Infektionen entsteht.

Die Cato-Catz-Technik wird angewendet, um den Nachweis von Parasiteneiern zu erleichtern, die infizierte Probanden in ihrem Stuhl ausscheiden. Legen Sie dazu zunächst eine Standard-Cato-CATT-Schablone in die Mitte eines Mikroskopobjektträgers. Die Schablone weist in der Mitte eine Öffnung auf, um 41,7 Milligramm Stuhl unter Handschuhbenutzung aufzunehmen.

Entnehmen Sie zwei bis drei Gramm einer frischen Stuhlprobe und geben Sie sie auf ein Stück Zeitungspapier oder Aluminiumfolie. Drücken Sie anschließend ein Stück Draht- oder Kunststoffsieb auf den Stuhl, um die Probe zu sieben. Verwenden Sie einen kleinen Kunststoffspatel, um das gesiebte Material vom Sieb abzukratzen, und füllen Sie damit vollständig das Stanzloch in der Cato-Kat-Schablone.

Glätten Sie den Inhalt der Aussparung mit dem Spatel, um überschüssiges Fäkalmaterial zu entfernen. Entfernen Sie anschließend die Schablone vertikal, ohne das Fäkalmaterial zu stören, das nun auf dem Objektträger haftet. Die Schablone und der Spatel können nach Reinigung mit Seife und Wasser wiederverwendet werden.

Als Nächstes wird ein Stück Cellophan, das mindestens 24 Stunden lang in Glycerin-Malachitgrün-Lösung eingeweicht wurde, über die Fäkalprobe auf dem Objektträger gelegt. Um die Fäkalien zu einem dicken Abstrich zu verteilen, wird vorsichtig ein sauberer Objektträger gegen den Objektträger mit der Fäkalprobe gedrückt und das Material gleichmäßig innerhalb eines Kreises verteilt, dessen Durchmesser etwas kleiner ist als die Breite des Objektträgers. Danach wird der Objektträger vor direktem Sonnenlicht geschützt und 30 bis 60 Minuten lang zum Klären belassen.

Nach 30 bis 60 Minuten die Objektträger entnehmen und den Dickschichtpräparat systematisch unter dem Lichtmikroskop mit einer 40- bis 100-fachen Vergrößerung untersuchen. Die Anzahl der Eier zählen und nach Art einteilen. Anschließend die Eieranzahl mit 24 multiplizieren, um eine standardisierte Infektionsabschätzung zu erhalten, die üblicherweise als Anzahl der Eier pro Gramm Stuhl oder EPG angegeben wird.

Um die Erman-Technik durchzuführen, richten Sie zunächst einen Stativ auf, der einen Glastrichter halten kann. Nehmen Sie den Glastrichter und verbinden Sie ein Stück Gummischlauch mit dessen Stiel. Verschließen Sie den Schlauch mit einer Klemme oder einer Federklammer und befestigen Sie anschließend den Trichter am Stativ.

Platzieren Sie als Nächstes ein Sieb oder ein kegelförmiges Stück Drahtgitter in dem Trichter. Bedecken Sie dieses Gitter mit einem Stück medizinischer Mullbinde. Füllen Sie dann den Trichter mit Leitungswasser und stellen Sie sicher, dass die Apparatur nicht undicht ist, während Sie Handschuhe tragen.

20 bis 30 Gramm frischen Stuhl in die Mitte der medizinischen Gaze geben und sicherstellen, dass er vollständig unter Wasser eingetaucht ist; gegebenenfalls mehr Wasser hinzufügen. Anschließend die medizinische Gaze über die Probe falten. Danach zwei Stunden lang künstliches Licht von unten auf den Trichter richten.

Das liegt daran, dass die Erman-Technik nach dem Prinzip funktioniert, dass die Corrales-Larven lichttaktisch reagieren und sich daher aus einer beleuchteten Fäkalprobe herausbewegen. Nach zwei Stunden öffnen Sie vorsichtig die Klemme in dem Gummischlauch und lassen 50 Milliliter des untersten Wassers aus dem Trichter in ein Zentrifugenröhrchen ablaufen. Zentrifugieren Sie anschließend das gesammelte Wasser bei 600 ×g für fünf Minuten.

Gießen Sie dann vorsichtig den Überstand ab, ohne das Sediment zu stören. Lassen Sie die letzten Tropfen im Gefäß zurück, resuspendieren Sie den Niederschlag und pipettieren Sie zwei Tropfen der Lösung auf einen Objektträger. Untersuchen Sie den Objektträger zunächst unter dem Lichtmikroskop mit 40-facher Vergrößerung zur Detektion von Parasiten und anschließend mit 100- bis 400-facher Vergrößerung zur Artdifferenzierung.

Erste Stadiumslarven von OID stires sind lebendig und bewegen sich aktiv unter dem Mikroskop, um den Shuttle-Run-Test vorzubereiten. Messen Sie zunächst eine 20 Meter lange, flache und gerade Laufstrecke ab und markieren Sie die Distanz mit Hütchen. Legen Sie ein Herzfrequenzmonitor-Armband am Handgelenk des Testteilnehmers an und den entsprechenden Sender um die Brust des Teilnehmers.

Diese Ausrüstung misst die Herzfrequenz vor und nach dem Test und überwacht somit, ob die Versuchsperson maximale Anstrengung aufgebracht hat. Nachdem die Monitore befestigt wurden, bitten Sie das Kind, auf der Strecke hin und her zu laufen, wobei es dem Rhythmus voraufgezeichneter akustischer Signale folgen soll, die 20-Meter-Runden entsprechen, beginnend mit einer Lauftempo von 8,5 Kilometern pro Stunde. Die Frequenz der Signale, die 20-Meter-Intervalle anzeigen, erhöht sich automatisch jede Minute um das Äquivalent von 0,5 Kilometern pro Stunde, um sicherzustellen, dass die Versuchsperson eine neue 20-Meter-Runde beginnt.

Jedes Mal, wenn das Signal ertönt und endet, bevor das nächste Signal eintrifft. Stoppen Sie das Kind, falls es bei zwei aufeinanderfolgenden 20-Meter-Intervallen nicht dem vorgegebenen Tempo folgen kann. Danach notieren Sie die Laufgeschwindigkeit des letzten Intervalls.

Die Teilnehmerin hat den Test vollständig absolviert, zusammen mit Alter, Geschlecht und erreichter Herzfrequenz. Am Ende des Tests sicherstellen, dass diese Herzfrequenz die maximale Herzfrequenz des Kindes ist. Falls die maximale Herzfrequenz nicht erreicht wurde, hat das Kind möglicherweise keine maximale Anstrengung unternommen, und der Test sollte wiederholt werden.

Schätzen Sie nun die maximale aerobe Kapazität oder die VO₂max des Teilnehmers anhand der folgenden Gleichung. Die VO₂max entspricht 31,025 plus 3,238 mal der Lauftempo in Kilometern pro Stunde minus 3,248 mal dem Alter in Jahren plus 0,1536 mal der Lauftempo in Kilometern pro Stunde mal dem Alter in Jahren. Die folgenden beiden Abbildungen zeigen die Eier eines seltenen Lumoiden, die etwa 45 bis 74 Mikrometer lang und 35 bis 50 Mikrometer breit sind und dicke Schalenwände aufweisen, hier dargestellt als befruchtetes Lumoid-Ei.

Beachten Sie das Erscheinungsbild der Alta-Albumin-Schicht, die eine goldbraune Färbung verleiht. Im Gegensatz dazu ist hier ein nicht befruchtetes Lumoid-Ei dargestellt. Beachten Sie das Fehlen der äußeren Schicht und dass das Ei leicht verlängert und größer ist als das befruchtete Ei.

Insgesamt zeigt dieses Bild die Eier von Tea Trico. Sie sind etwa 50 Mikrometer lang und 22 Mikrometer breit, länglich geformt und weisen deutliche Polstopfen auf. Im Gegensatz dazu haben die hier dargestellten Hakenwurmeier eine sehr dünne Wand sowie einen klaren Ring um einen dichten Zellhaufen im Zentrum des Eies.

S stir Corrales L1-Larven sind in diesem Bild dargestellt. Sie sind etwa 180 bis 380 Mikrometer lang und weisen einen sehr kurzen bukkalen Hohlraum auf. Ein deutliches Genitalanlage kann beobachtet werden und ist durch den blauen Pfeil hervorgehoben.

Der rote Pfeil zeigt das Schwanzende der Larven, das eine scharfe Spitze aufweist. Der 20-Meter-Shuttle-Run-Test wurde durchgeführt, um die körperliche Fitness zu messen. Die Interpretation der Shuttle-Run-Testergebnisse kann auf verschiedene Weisen erfolgen.

Die körperliche Fitness von Kindern kann zwischen infizierten und nicht infizierten Probanden verglichen werden, die hinsichtlich Alter und Geschlecht, anderer möglicherweise relevanter Gesundheitszustände, sozioökonomischem Status und kulturellen Gewohnheiten ähnlich sind. Man kann außerdem versuchen, einen möglichen Dosis-Wirkungs-Zusammenhang zwischen der Intensität von STH-Infektionen und der körperlichen Fitness zu identifizieren sowie verschiedene Grade der Multi-Parasitismus-Belastung mit der körperlichen Fitness zu vergleichen. Beispielsweise zeigt der hier dargestellte Graph, dass die körperliche Fitness bei Kindern, die mit T Tri Coria infiziert waren, signifikant niedriger war als bei Kindern, die nicht mit T Tri Coia infiziert waren.

Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man die Cut-Cuts-Technik, die Blankpräparationstechnik und den 20-Meter-Shuttle-Lauf-Test durchführt. Diese Methoden helfen dabei zu beurteilen, ob Infektionen mit dem Soja-Transmitter-Helm Auswirkungen auf die körperliche Fitness von schulalterlichen Kindern haben.