Name: Lebertransplantation bei der Ratte (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 18 min 25 s
Description: Lernen Sie die orthotope Lebertransplantation bei der Ratte mit optimierten mikrochirurgischen Techniken. Diese Methode verbessert Präzision und Geschwindigkeit während der Implantation und dient als wertvolles Training für komplexe Transplantationsverfahren.

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CT wurde vom Schweizerischen Nationalfonds (SNF SCORE Zuschuss 3232230-126233) unterstützt. Die Studie wurde von der Artères Stiftung, der Stiftung Astellas Europa und den Boninchi Stiftung unterstützt.

1. Donor Betrieb <ol><li> Anesthetize männlichen Ratten mit einem Gewicht von 200 ± 20 Gramm mit Isofluran auf Kegel-Maske (3% für die Induktion, 2% während der Operation, 1 l / min Luftmenge, FiO2 70%). </li><li> Führen Sie eine große mediane und transversale Laparotomie und ätzen die epigastrischen Gefäße auf beiden Seiten. </li><li> Schneiden Sie das Lig. falciforme, und trennen Sie die linke Zwerchfell-Vene aus dem suprehepatic Hohlvene. Schließlich teilen die Zwerchfell-Ader zwischen zwei 7-0 Seidenligaturen. </li><li> Schneiden Sie den linken dreieckigen und die Magen-und Leber-Bänder. </li><li> Teilen Sie die Leber-und Speiseröhren-Band-und Arterie zwischen 7-0 Ligaturen (Koagulation ist eine gute Alternative). </li><li> Isolieren Sie die infrahepatische Hohlvene bis in die linke Nierenvene. Trennen der rechte Nierenvene von den umgebenden Geweben und teilt ihn zwischen einer 10-0 und einem 7:0-Ligatur an seinem proximalen und distalen Enden. </li><li> Teilen Sie die rechte Nebenniere Vene zwischen 7-0 LigaturES und frei von der Leber seiner hinteren Bänder durch Abschneiden unter leichtem Zug. </li><li> Isolieren der gastro-Vene und teilt ihn zwischen einer 10-0 und einem 7:0-Ligatur an seinem proximalen und distalen Enden. </li><li> Teilen Sie die A. hepatica propria zwischen 7-0 Krawatten. </li><li> Isolieren der duodenojejunalis Pankreas Vene und teilte sie zwischen einer 10-0 und einem 7:0-Ligatur an seinem proximalen und distalen Ende, jeweils. </li><li> Legen Sie eine 22G, 3,5-mm-Stent in den Gallengang durch Üben einen kleinen Schnitt bei 1 cm Abstand von der Leber Hilus. Sichern Sie den Stent in Position mit einer 7-0 Ligatur. </li><li> Injektion von 10 UI von Heparin in 1 ml physiologischer Kochsalzlösung verdünnt, durch die dorsale Vene des Penis. </li><li> Kanülieren die Pfortader (so weit wie möglich aus dem Hilus) mit einer 21G-Nadel und schonend spülen Sie die Leber mit 20 ml kaltem Ringer-Laktat (oder andere Konservierungslösungen). Gleichzeitig, schneiden die Vena cava unterhalb der Nierenarterien Venen, um eine ausreichende outfl ermöglichenow. Leber kalte Perfusion sollte zwischen einer und zwei Minuten dauern. </li><li> Schneiden Sie die Pfortader unterhalb der duodeno-pankreatischen Vene. </li><li> Schneiden Sie den Choledochus distal der Ligatur um den Stent herum. </li><li> Füllen Sie das Anschneiden des infrahepatische Hohlvene. </li><li> Schneiden Sie die suprahepatische Hohlvene zu überfliegen, um die Membran zu entfernen und die Leber. </li><li> Legen Sie die Leber in ein Becken mit kaltem Ringer-Laktat gefüllt und legen Sie das Becken auf einer Eis-Pad. </li></ol> 2. Graft Vorbereitung <ol><li> Legen Sie die Pfortader in die Manschette, dann evertieren das Schiff um den Rand, um die Intima aussetzen. Sichern Sie den umgestülpten Segment an der Manschette mit einem 7-0 Ligatur. </li><li> Den gleichen Vorgang auf der infrahepatische Hohlvene. </li><li> Positionieren eines Mikro-Klemme (4-6 mm Länge) auf dem proximalen Teil des infrahepatische Hohlvene. Dieser Vorgang vermeidet Blutverlust nach Reperfusion Portal. </li><li> Kippe das Leber und legen Sie zwei Prolene 8-0 Nähtenan den gegenüberliegenden seitlichen Kanten des suprahepatische Hohlvene, von außen nach innen. </li><li> Bewahren Sie das Transplantat (eingetaucht in die Ringer-Laktat-Lösung) im Kühlschrank bei 0-4 ° C </li></ol> 3. Der Betrieb des Empfängers: <ol><li> Anesthetize männlichen Ratten mit einem Gewicht von 200 ± 20 Gramm mit Isofluran auf Kegel-Maske (3% für die Induktion, 2% während der Operation, 1 l / min Luftmenge, FiO2 70%) und halten an einem warmen Pad. Zu beachten ist, sollten Empfänger und Spender Gewichte abgestimmt (± 40 Gramm) werden. </li><li> Injektion von 10 ml physiologischer Kochsalzlösung subkutan und 0,03 g Piperacillin / Tazobactam intramuskuläre vor Laparotomie. </li><li> Führen Sie eine Mittellinie xipho-Scham-Laparotomie. </li><li> Kehren Sie die Schwertfortsatz mit einer Auto-static Zange, um besser entlarven die Leber. </li><li> Schneiden Sie die vorderen Bänder und teilen Sie die linke Zwerchfell-Ader zwischen zwei Verbindungen 7-0. </li><li> Teilen Sie die Leber-und Speiseröhren-Band-und Arterie zwischen 7-0 Ligaturen (coagulation ist eine gute Alternative). Nicht im Video (identisch mit Spender-Betrieb) dargestellt. </li><li> Isolieren Sie die infrahepatische Hohlvene bis in den rechten Nierenvene. </li><li> Teilen Sie die rechte Nebenniere Vene zwischen 7-0 Ligaturen und frei von der Leber seiner hinteren Bänder durch Abschneiden unter leichtem Zug (nicht im Video gezeigt (identisch mit Spender Betrieb)). </li><li> Legen Sie eine 7-0 Ligatur um den Choledochus, knapp unterhalb seiner Division. Anders Ligatur unterhalb einem Millimeter geschnitten und dazwischen. </li><li> Isolieren Sie die Leberarterie am Hilus und teilen es zwischen 7-0 Ligaturen. </li><li> Sanft getrennte linke und rechte Portal Filialen. Achten Sie nicht auf die gemeinsame Leberarterie oder den Magen-Milzvene beschädigen. </li><li> Positionieren Sie den caval Ring um die Vena Cava, kranial auf der rechten Nierenvene. Dann sichern Sie die Gefäßwand in den Ring, indem sie vier Himmelsrichtungen 9-0 Nähten. </li><li> Den gleichen Vorgang mit dem Portal-Ring auf der Pfortader. </li&gt; <li> Injektion von 10 UI von Heparin in 1 ml physiologischer Kochsalzlösung verdünnt, durch die dorsale Vene des Penis. </li><li> Stellen Sie die Anästhesie auf 0,25% und die FiO2 auf 100%. </li><li> Klemmen Sie den infrahepatische Hohlvene knapp oberhalb der rechten Nierenvene, dann klemmen die Pfortader direkt über den Magen-Milzvene. Schließlich klemmen die suprahepatische Hohlvene dass auf jeden Fall mindestens 2 mm von Membran enthalten. </li><li> Schneiden Sie die suprahepatische Hohlvene in der Nähe des Parenchyms. </li><li> Schneiden Sie das linke und das rechte Portal Niederlassungen und teilen das Septum dazwischen. </li><li> Schneiden Sie die infrahepatische Hohlvene in der Nähe des Parenchyms, achten nicht auf eine der Nähte vorher einzuschneiden positioniert. Entfernen Sie die Leber und legen Sie das Transplantat in die Bauchhöhle. </li><li> Führen Sie eine End-to-End-Anastomose zwischen der suprahepatische Hohlvene des Transplantats und des Empfängers. Beginnen Sie mit der fortlaufenden Naht der Hinterwand von links nach rechts, dann an der vorderen Wand von rechts nach Le vorgehenm Halten der vordere Naht lose bis zum Ende, um eine großzügige Spülung des inneren Lumen vor dem Anziehen der Enden zu ermöglichen. </li><li> Legen Sie die kaudalen Zweig der Approximator in das Portal Ringgriff, dann legen Sie die Pfortader des Transplantats in den Schlitz des kranialen Zweig der Approximator, mit dem Portal zu finden Manschette seine Position in den Steckplatz. </li><li> Schließen Sie die Näherungseinrichtung bei der Spülung des Empfängers Pfortader mit normaler Kochsalzlösung und lassen sich die Manschette in das Gefäß einzuführen. Sichern des Empfängers Pfortader um seine Manschette mit einem umlaufenden Band 7-0. </li><li> Entfernen Sie die Approximator. Öffnen Sie die Klemme an der suprahepatische Hohlvene und die Pfortader in Ordnung: Portal Flow ist nun wieder hergestellt. </li><li> Entfernen Sie das Portal Ring durch Schneiden der 9-0 Ligaturen mit extra-feinen Schere. </li><li> Legen Sie die kaudalen Zweig der Approximator in den Griff caval Ring, dann legen Sie die infrahepatische Hohlvene des Transplantats in den Schlitz an der Schädelbasis<html> Zweig der Approximator, mit der Manschette zu finden caval seine Position in den Steckplatz. </li><li> Schließen Sie die Näherungseinrichtung bei der Spülung des Empfängers infrahepatische Hohlvene mit normaler Kochsalzlösung und lassen sich die Manschette in das Gefäß einzuführen. Sichern des Empfängers Hohlvene um seine Manschette mit einem umlaufenden Band 7-0. </li><li> Entfernen Sie die Approximator. Öffnen Sie die microclamps auf der infrahepatische Hohlvene des Transplantats und des Empfängers in dieser Reihenfolge: venöse Strömung wird jetzt wieder hergestellt. </li><li> Führen Sie eine partielle Inzision des Empfängers Choledochus, wenden Sie einen leichten Zug in Richtung des Kopfes, und legen Sie die freie Seite des Stents zuvor in den Gallengang des Transplantats eingesetzt. Sichern Sie den Stent mit einem umlaufenden 7-0 Unentschieden. </li><li> Schließen Sie das Tier durch Schichten mit 5-0 Nähten. Erlauben Sie kostenlos Wasser und Nahrung aus Erwachen. </li><li> Verwalten effektive Analgesie nach lokaler institutioneller Protokolle. Eine Mindestdauer von 24 h wird empfohlen. </li></ol>_content &quot;&gt; Zu beachten ist: End-to-End-Leberarterie Anastomose durchgeführt werden, wenn durch den Experimenten (die Arterie nicht für ein langfristiges Überleben nach der Transplantation erforderlich Rattenleber) erforderlich. 4. Repräsentative Ergebnisse Die beschriebene Technik konnte erfolgreich von unserem Team werden nach etwa 10 Operationen Ausbildung gemeistert. Es erlaubt 100% langfristig (&gt; 21 Tage) Überleben auf 36 aufeinander folgenden Lewis-to-Lewis und Dark Agouti-to-Lewis Transplantationen, nach der kurzen Einarbeitungszeit (eine Reihe von syngenen Leber Transplantat-Empfänger wurden am Leben gehalten werden seit über 12 Monate jetzt). Post-syngene Transplantation Tag 1 Leberwerte zeigten mediane Aspartat-Transaminase (AST): 84 U / l (51,7-92,7) und die mediane Alanin-Transaminase (ALT): 172,5 U / l (127,5-240,2). Die mittlere anhepatischen Phase (ab Pfortader Spannen zu pfropfen Re-Perfusion) lag bei 14 ± 2 min, mit der längsten Schritt die suprahepatische Hohlvene Anastomose (s läuftukunft) Zeit 9 ± 2 min. Die Schnell-Linker-System erlaubt die Positionierung der 1,55 mm-Bohrung Bündchen an Pfortader und 2,40 mm-Bohrung Bündchen an Hohlvene (Empfänger mit einem Gewicht von 200 ± 20 g). Im Gegensatz dazu, wenn wir die Transplantation mit Kamada die Technik ausprobiert, konnten sie nicht mehr als 1,40 mm und 2,16 mm bzw. (Ratten passend für Belastung und Gewicht). Wie in 7 gezeigt, sind praktischen-Linker Ringe zur Empfängers Schiffe optimale Dehnung zu halten, so dass mindestens Dicke und Länge Verschwendung, die näher zu physiologischen hämodynamischen Ergebnisse ergibt. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig1.jpg" alt="1" /> Abbildung 1. Ringe Maßnahmen. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig2.jpg" alt="2" /> Abbildung 2. Microclamps Maßnahmen. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig3.jpg" alt="Abbildung 3" /> Abbildung 3. Quick-Linker-Kit. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig4.jpg" alt="Abbildung 4" /> Abbildung 4. Quick-Linker bewaffnet. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig5.jpg" alt="Abbildung 5" /> Abbildung 5. Quick-Linker geschlossen. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig6.jpg" alt="6" /> Abbildung 6. SHVC Klemme. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig7.jpg" alt="7" /> Abbildung 7. Classic vs Quick-Linker assistierten Manschette-Anastomose Hämodynamik. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig8.jpg" alt="8" /> Abbildung 8. Spender und Empfänger die Haut Vorbereitung und Schnitt.

<ol><li>Starzl, T. E., Marchioro, T. L., Porter, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+and+clinical+observation+after+homotransplantation+of+the+whole+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Revue+internationale+d%27hepatologie%22%5BJournal%5D)">Experimental and clinical observation after homotransplantation of the whole liver.</a> Revue internationale d'hepatologie. 15, 1447(1965).</li>
<li>Starzl, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Evolution of liver transplantation.</a> Hepatology. 2, 614S-636S (1982).</li>
<li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47(1979).</li>
<li>Kashfi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+various+techniques+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation+proceedings%22%5BJournal%5D)">A review of various techniques of orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation proceedings. 37, 185-188 (2005).</li>
<li>Hori, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+and+innovative+techniques+for+liver+transplantation+in+rats%3A+A+surgical+guide%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Gastroenterology%3A+WJG%22%5BJournal%5D)">Comprehensive and innovative techniques for liver transplantation in rats: A surgical guide.</a> World Journal of Gastroenterology: WJG. 16, 3120(2010).</li>
<li>Oldani, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+technique+for+rat+liver+transplantation+using+Quick+Linker+system%3A+a+preliminary+result%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">A novel technique for rat liver transplantation using Quick Linker system: a preliminary result.</a> Journal of Surgical Research. 149, 303-309 (2008).</li>
<li>Nosaka, T., Bowers, J. L., Cay, O., Clouse, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biliary+complications+after+orthotopic+liver+transplantation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Today%22%5BJournal%5D)">Biliary complications after orthotopic liver transplantation in rats.</a> Surg. Today. 29, 963-965 (1999).</li>
<li>Li, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+incidence+of+biliary+complications+in+rat+liver+transplantation%3A+can+we+avoid+it%5BTitle%5D)+AND+%22World+J.+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">High incidence of biliary complications in rat liver transplantation: can we avoid it.</a> World J. Gastroenterol. 17, 3140-3144 (2011).</li>
<li>Peng, Y., Gong, J. P., Yan, L. N., Li, S. B., Li, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+two-cuff+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatobiliary+Pancreat.+Dis.+Int%22%5BJournal%5D)">Improved two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.</a> Hepatobiliary Pancreat. Dis. Int. 3, 33-37 (2004).</li>
<li>Urata, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreased+survival+in+rat+liver+transplantation+with+extended+cold+preservation%3A+role+of+portal+vein+clamping+time%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Decreased survival in rat liver transplantation with extended cold preservation: role of portal vein clamping time.</a> Hepatology. 28, 366-373 (1998).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Die vorliegende Ratte Lebertransplantation Modell kann leicht festgestellt werden. Nach unserer Erfahrung helfen, ein paar wichtige Punkte, um das Risiko des Todes (≤ 20%). Frühen Tod, innerhalb der ersten drei Stunden von Reperfusion, sind meistens auf einer Darminfarkt, als Folge einer langen Portal Spannen. Es wird daher empfohlen, um die anhepatischen Phase innerhalb der idealen Grenze von 15 Minuten (20 Minuten noch akzeptabel) zu halten. Zentral Luftembolie kann auch eine Ursache des plötzlichen Todes sein und ist es Pflicht, alle Adern vor der Anastomose zu spülen. Todesfälle zwischen postoperativen Tag eins und drei sind häufig durch Leberversagen oder Thrombose der Vena Cava. Man sollte daher vermeiden aggressive Transplantat Spülung vor der Explantation beim Spender (wir mit 20 ml spülen über ca. 60 Sekunden) und eine angemessene Konservierung (vollständiges Eintauchen in die 0-4 ° C Ringer-Laktat-Lösung). Das Risiko von Thrombosenkann durch die Minimierung der Manipulation der Intima und zur Gewährleistung ihrer Integrität verringert werden. Wir empfehlen nicht den Einsatz von Antikoagulation nach der Operation. Todesfälle zwischen postoperativen Tag vier und neun werden oft zu bakterieller Cholangitis 7 bezogen. Basierend auf unserer Erfahrung, eine einzige Dosis von Piperacillin / Tazobactam (0,03 g) gegeben, bevor Laparotomie ist genug, um das Risiko von Choledochus Infektion zu minimieren. Der Tod ist ein seltenes Ereignis nach dem 10. Tag. Jedoch, aufgrund der Abwesenheit von arterieller Strömung, können einige Probleme mit Gallengang cholastasis 8 beobachtet werden. Je nach den Anforderungen der Forscher ein Arterialisation kann dies von 9 werden. Zu beachten ist, kann eine kalte Ischämiezeit bis zu 24 Stunden als akzeptabel angesehen werden 10. Die Schnell-Linker-System wurde ursprünglich entwickelt, um Lebertransplantation mit drei Manschette Anastomosen (sehr kurze anhepatischen Phase) durchzuführen. Allerdings ist die Drei-te Manschettechnique erfordert den Einsatz von sehr kleinen Bremssättel für die suprahepatische Hohlvene (SHVC) Manschette und es wurde noch nicht weit verbreitet, da das Risiko von Leber-Probleme Abfluss 11-14 akzeptiert. Wir favorisieren daher eine Quick-Linker unterstützte Drei-Manschette Technik nur, wenn warme Ischämie mal kürzer als 10 Minuten erforderlich sind. In den meisten Studien jedoch Implantation Phasen bis zu 15-18 Minuten akzeptabel sind, wodurch die Verwendung des Zwei-Manschette Technik und einer physiologischen SHVC Drainage. Wie in diesem Video Papier gezeigt, verwenden wir routinemäßig die praktischen-Linker-System im zweiten Teil der Implantation nur. Während einige zusätzliche chirurgische Zeit ist erforderlich, um die Quick-Linker Griff zu positionieren, wird dieser Teil des Verfahrens, mit minimalen Risiken verbunden und ermöglicht eine Verkürzung der kritischen anhepatischen Phase dank einfacher Manschetten Insertionen. Weitere Vorteile der praktischen-Linker-System sind eine bessere Transplantat-Empfängers Gefäßausrichtungsrichtung und die Verwendung von breiteren Manschetten mit bessere hämodynamische Ergebnisse im Vergleichbisher beschriebenen Techniken (einschließlich der von Kamada et al.) 6 (Abb. 7).

<table border="1"><tbody><tr><td> Tool / Reagent </td><td> Firma </td><td> N Katalog. </td><td> Kommentar </td></tr><tr><td> Portal Manschette </td><td> <a href="http://altecweb.com" target="_blank">altecweb.com</a> oder <a href="http://smiths-medical.com" target="_blank">Schmiede-medical.com</a> </td><td> Coil 01-96-1729 800/100/420 </td><td> Bohrung: 1,55 mm Wand: 0.30mm Länge: 3,5 mm </td></tr><tr><td> Infrahepatische v. cava Manschette </td><td> <a href="http://altecweb.com" target="_blank">altecweb.com</a> oder <a href="http://smiths-medical.com" target="_blank">Schmiede-medical.com</a> </td><td> Coil 01-96-1733 800/100/540 </td><td> Bohrung: 2,40 mm Wand: 0.30mm <br/&gt; Länge: 3,5 mm </td></tr><tr><td> Choledochus Stent </td><td> gemeinsame 22G Venflon </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 7-0 Seidenkrawatten </td><td> <a href="http://georgetiemann.com" target="_blank">georgetiemann.com</a> </td><td> 160-1226-7 / 0 </td><td></td></tr><tr><td> 10-0 Prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 9-0 Prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 8-0 Prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Gerade Mikropinzette </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">s-und-t</a>. Net </td><td> FRC-15RM-8 </td><td></td></tr><tr><td> Gebogene Mikropinzette </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">s-und-t.net</a> </td><td> FRS-15-RM-8 </td><td></td></tr><tr><td> Dissection Nadelhalter </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">s-und-t.net</a> </td><td> B-15-8,2 </td><td></td></tr><tr><td> Anastomose Nadelhalter </td><td> <a href="http://rumex.net" target="_blank">rumex.net</a> </td><td> 8-021T </td><td></td></tr><tr><td> Micro Schellen </td><td> <a href="http://finescience.com" target="_blank">finescience.com</a> </td><td> 18055-03 </td><td> 6 x 1mm </td></tr><tr><td> Micro Schellen Applikator </td><td> <a href="http://finescience.com" target="_blank">finescience.com</a> </td><td> 18057-14 </td><td></td></tr&gt; <tr><td> Suprahepatische v. cava Klemme </td><td> <a href="http://pharmap.ch" target="_blank">pharmap.ch</a> </td><td> 13.349.14 </td><td></td></tr><tr><td> Quick-Linker Ringe </td><td> <a href="http://dltchiropody.co.uk" target="_blank">dltchiropody.co.uk</a> </td><td> PAR 10 </td><td> geändert Skalpellklingen </td></tr><tr><td> Quick-Linker Approximator </td><td> <a href="http://pharmap.ch" target="_blank">pharmap.ch</a> </td><td> UD-04-275 </td><td> modifizierte Kochers forcep </td></tr></tbody></table>

lebertransplantation bei der ratte

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Klinische Fortschritte auf dem Gebiet der Lebertransplantation wurde weitgehend durch Tiermodelle 1,2 unterstützt. Seit der Veröffentlichung des ersten orthotopen Ratten-Lebertransplantation im Jahr 1979 von Kamada et al. 3, ist dieses Modell blieb der Goldstandard trotz verschiedener vorgeschlagenen alternativen Techniken 4. Dennoch wird seine breitere Nutzung durch seine steile Lernkurve 5 beschränkt. In diesem Video-Papier zeigen wir, eine einfache und leicht zu etablieren Revision Kamada Zwei-Manschette Technik. Die suprahepatische Hohlvene Anastomose wird manuell mit einer fortlaufenden Naht durchgeführt, und die Pfortader und Hohlvene infrahepatische Anastomosen unter der Verwendung einer Schnell-Linker Ärmel-System 6. Die Herstellung des Quick-Linker-Kit wird in einem separaten Video-Papier gezeigt.

Wir präsentieren einen einfach zu etablieren Revision der klassischen Zwei-Manschette Technik zur orthotopen Lebertransplantation in der Ratte.

Lebertransplantation bei der Ratte

Der klinische Fortschritt auf dem Gebiet der Lebertransplantation wurde maßgeblich durch Tiermodelle unterstützt1,2. Seit der Publikation der ersten orthotopen Ratten- ...

Die orthotope Lebertransplantation bei der Ratte ist ein anspruchsvolles Verfahren und erfordert eine mikrochirurgische Ausbildung, um es erfolgreich zu beherrschen. Genauigkeit und Schnelligkeit, insbesondere während der Implantationsphase, sind entscheidend für den Erfolg. In den nächsten Videos werden wir jeden grundlegenden Schritt einer erfolgreichen Transplantation aufzeigen und erklären, wie eine schnelle klinische Vorrichtung die Implantationsphase erleichtern kann.Genießen Sie die Videos. Der Spender ist über einen transversalen Schnitt geöffnet. Das falciforme Ligament wird durchtrennt und die untere Hohlvene freigelegt.Die linke Zwerchfellvene wird von der Vena cava abgelöst und dann zwischen zwei Seidenbindfäden durchtrennt. Das Ligamentum gastrophrenicum wird durchschnitten, anschließend wird das Ligamentum esophrenophrenicum zwischen den Fäden durchtrennt. Die obere Vena cava wird durch vorsichtiges Zurückziehen des Dünndarms und Dickdarms freigelegt.Auf der linken Seite wird das Peritoneum eröffnet und die Vena cava vorsichtig vom umgebenden Gewebe freigelegt. Die rechte Nebennierenvene wird isoliert und anschließend zwischen sieben Nahtligaturen durchtrennt. Die Leber wird nach links gezogen und sanft unter Zug gehalten.Die retrohepatischen und rechten dreieckigen Bänder werden durchtrennt. Die rechte Nierenvene wird an ihrem proximalen Ende mit einer 10-0-Nylon-Ligatur verschlossen. Die rechte Nierenvene und -arterie werden gemeinsam an ihrem distalen Ende ligiert, danach wird die rechte Nierenvene durchtrennt.Übersicht über die vollständig isolierte Vena cava ist dargestellt. Übersicht über die regionale Anatomie des hepatischen Hilus und der Pfortader, der A. hepatica propria, des Ductus choledochus, der gastrosplenischen Vene. Die Bauchspeicheldrüse Glu.Die gastrosplenetische Vene wird zwischen einer 10-oh- und einer 7-oh-Ligatur isoliert und durchtrennt. Die obere Hepaterterie wird zwischen 7-oh-Ligaturen abgeschnitten. Schließlich wird die veno-pankreatische Vene durchtrennt.Ein Überblick über die isolierte Vena portae wird gezeigt. Der Ductus choledochus wird an seiner Verbindung mit dem Pankreasgewebe teilweise geöffnet. Ein 3,5-Millimeter-22-G-Stent wird eingeführt und fest fixiert.Es werden 10 Einheiten Heparin injiziert. Anschließend wird die Leber über die Vena portae mit 20 Milliliter kalter Ringer-Lactat-Lösung durchgespült, während die distale Vena cava incisiert wird, um einen ausreichenden Abfluss zu ermöglichen; der distale Abschnitt der Vena portae wird durchtrennt, nachdem der gemeinsame Darmgang vollständig durchtrennt wurde. Danach wird die vordere Lebervene an ihrem distalen Ende durchtrennt, während die suprahepatische Vena cava durchtrennt und bis zum Zwerchfell freigelegt wird, das entfernt und in eine vier Grad Celsius kalte Wrangler-Lactat-Lösung eingetaucht wird.Die Vena portae wird in ihr Kalb eingeführt, anschließend umgeleitet, um die Intima freizulegen, und schließlich mit einer 7-0-Naht am Kälberstück befestigt. Dasselbe wird am Kälberstück der Vena cava repath durchgeführt. Ein Mikroclips wird am kranialen Ende der Vena cava repath positioniert.Die Leber wird umgestülpt und zwei ATO-Prolen-Nähte werden von außen nach innen an den gegenüberliegenden seitlichen Rändern der statischen Vena cava angelegt. Der Empfänger wird unter Isofluran-Fluor-Anästhesie auf einer Wärmeplatte gehalten, 10 Milliliter. Normale Zelllinien werden subkutan vor der Laparotomie injiziert. Ein medianer Schnitt über dem Schambein wird durchgeführt und die Bauchhöhle wird retrovertiert, um die Leber besser darzustellen.Der Ductus choledochus wird mit einer 7-0-Naht gesichert und kurz vor seiner Aufzweigung in linke und rechte Seite durchtrennt. Die portalen Äste werden sorgfältig getrennt. Der kavale Ring wird um die Vena cava kranial zur linken Nierenvene platziert.Ein erster Neun-Null-Faden wird durch die Gefäßwand an ihrem rechten Rand geführt und dann an dem vorgegebenen Position am Kavalring befestigt. Ein zweiter Faden wird durch den gegenüberliegenden Rand geführt und befestigt. Der dritte wird in ventraler Position befestigt.Schließlich wird der vierte in dorsaler Position befestigt. Nachdem der Ring auf der linken Seite umgestülpt wurde, wird der erste Stich durch die hintere Wand geführt, wobei das Gefäß angehoben wird. Anschließend wird der Portalknoten positioniert und die Ligatur an seinem hinteren Ast fixiert.Ein zweiter Stich wird durch den Rand des linken Portalseitenastes geführt und ein dritter durch den Rand des rechten Portalastes befestigt. Anschließend wird dieser fixiert. Der letzte Stich durchbohrt die vordere Wand des Portes und wird vor dem Abklemmen an seiner Position befestigt.Eine letzte Reinigung der Vena cava erfolgt im Rezipienten. Vena cava und Vena porta werden der Reihe nach abgeklemmt. Die Vena cava wird dann quer abgeklemmt und bis zum Parenchym eingeschnitten. Die linken und rechten Portastämme werden durchtrennt und das dazwischenliegende Septum wird geteilt. Anschließend wird die Vena cava bis zum Parenchym durchtrennt. Danach wird die Leber entfernt.Die Vena cava und die Vena porta werden sicher durch die beiden Ringe geöffnet gehalten. Das Transplantat wird in die Bauchhöhle positioniert und die NATO-Naht wird am linken Rand der Vena cava fixiert. Eine zweite Naht wird am rechten Rand befestigt.Die iranische Naht der hinteren Wand wird von links nach rechts durchgeführt, um das Leberparenchym nicht in die Naht einzubeziehen. Die Naht der vorderen Wand wird locker gehalten, um vor der vollständigen Verschließung ein großzügiges Spülen zu ermöglichen. Diese Maßnahme verhindert eine Luftembolie.Der Coddle-Zweig des Approximators wird in den Griff der Portalschleife eingeführt, und das Portalrind wird durch den Schlitz seines kranialen Zweigs geschoben. Während der Approximator geschlossen wird, wird der Vina-Porter des Empfängers mit physiologischer Kochsalzlösung durchgespült. Um die Einführung des Rinds beim Empfänger zu unterstützen, wird der Porter mit einer 7-0-Naht am Rind befestigt.Der Approximator wird entfernt und der Portalkreislauf wird wiederhergestellt, indem nacheinander die Atic-VNA-CVA-Klemme und die Portalklemmung entfernt werden; der Portalkragen wird durch Durchtrennen entfernt. Die Mikroligaturen hingegen werden mit derselben Technik bei den Empfängern wiederhergestellt. Der Ductus choledochus wird unter Zug gehalten, und der Stent wird durch einen kleinen Einschnitt eingeführt.Eine kreisförmige Ligatur sichert seine Position. Ein Überblick über das fusionierte Transplantat ist in a dargestellt.

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Lebertransplantation bei Ratten ist ein unverzichtbares experimentelles Modell für die biomedizinische Forschung. Hier präsentieren wir unsere chirurgischen Verfahren zur orthotopen Ratten Lebertransplantation mit arteriellen Rekonstruktion mit 50% partielle Transplantat.

Chirurgische Verfahren für eine Ratte Modell Teilweise Lebertransplantation mit arteriellen Rekonstruktion

Wir beschreiben das Design des "Quick-Linker" Gerät zur leichteren orthotopen Lebertransplantation Ratte.

Fertigung von Geräten und Instrumenten für eine einfachere Rat Liver Transplantation

Hilfslebertransplantation bietet eine temporäre Unterstützung in akuten Leberversagen, bis die Regeneration der Leberversagen. Die heterotope Hilfslebertransplantation (HALT) mit Pfortader Arterialisation (PVA) macht ausreichende Leberfunktion. Wir entwickelten eine analoge Technik in der Ratte, um den Einfluss der Pfortader Arterialisation auf die Morphologie und Funktion des Transplantats zu untersuchen.

Heterotope Hilfs Ratte Leber-Transplantation mit strömungs geregelt Pfortader Arterialisation in akutes Leberversagen

Hier ist ein Protokoll mit neu arterialized Ratte teilweise Lebertransplantation vorgestellt. Insbesondere war 70 % Leber resezierten in Vivo durch eine aktualisierte Technik des Schiffes-orientierte Hepatektomie. Die leberarterie wurde in einer End-to-Side Weise rekonstruiert. Die Manschette Technik wurde modifiziert, um die Anastomose Infrahepatic Vena Cava verkürzen.

Re Arterialized Ratte teilweise Leber Transplantation mit einem in Vivo Schiff-orientierte 70 % Hepatektomie

Die Rekonstruktion der Suprahepatic Vena Cava (SHVC) bleibt ein schwieriger Schritt in der Ratte orthotopen Leber Transplantation. In diesem Artikel zeigen wir Schritt für Schritt-Protokoll für den Wiederaufbau der SHVC bei Ratten mit einer neuartigen magnetischen Anastomose-Technik.

Einem Rattenmodell der orthotopen Lebertransplantation mit einer neuartigen magnetischen Anastomose-Technik für Suprahepatic Vena Cava Wiederaufbau

Das Ziel dieser Studie ist es, das orthotopische Lebertransplantationsmodell der Ratte zu modifizieren, um die Transplantation menschlicher Leber besser darzustellen und das Überleben der Empfänger zu verbessern. Die vorgestellte Methode stellt den hepatischen arteriellen Zufluss wieder her, indem die gemeinsame Leberarterie der Spenderleber mit der richtigen Leberarterie der Empfängerleber verbunden wird.

Reduzierte Komplikationen nach arterieller Wiederverbindung in einem Rattenmodell der orthotopischen Lebertransplantation

Dieses Papier enthält eine detaillierte Beschreibung, wie man ein Tiermodell der anhepatischen Phase (Leberischämie) bei Ratten baut, um die Grundlagenforschung zur Ischämie-Reperfusionsverletzung nach einer Lebertransplantation zu erleichtern.

OrganIschemia-Reperfusion Verletzung durch Simulation hämodynamischer Veränderungen im Lebertransplantationsmodell der Ratte

In diesem Protokoll diskutieren wir die Implementierung eines Modells für eine erfolgreiche orthotope Lebertransplantation (OLT) bei Mäusen. Darüber hinaus werden auch Adjuvantien zur weiteren Analyse der Durchgängigkeit von Transplantaten nach erfolgreicher OLT in einer Maus diskutiert, insbesondere unter Verwendung von Mikrocomputertomographie (microCT)-Scans.

Erfolgreiche orthotope Lebertransplantation bei Mäusen mittels Mikrocomputertomographie-Angiographie

Das hier beschriebene heterotope Hilfslebertransplantationsprotokoll der Ratte bietet ein praktisches Untersuchungswerkzeug zur Erforschung der Mechanismen der Abstoßung von Lebertransplantaten. Dieses Modell trägt dazu bei, die chirurgischen Hürden und den Stress der orthotopen Lebertransplantation bei Ratten zu verringern.

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Dieses Protokoll beschreibt eine verbesserte Technik für die orthotope linke Lungentransplantation bei Ratten, wobei der Schwerpunkt auf der Reduzierung von Operationsschwierigkeiten und der Verbesserung der Überlebensraten liegt.

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