Name: Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min
Description: Lernen Sie die Erzeugung chronischer okulärer Hypertonie durch Laser-Photokoagulation des Trabekelwerks bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Langzeitüberwachung des Augeninnendrucks und die Bewertung visueller Funktionsdefizite.

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Die Arbeit in diesem Papier enthaltenen Informationen wurden von der Dr. Douglas H. Johnson Award für Glaukomforschung vom American Health Assistance Foundation (XL), die William &amp; Mary Greve Besondere Scholar Award von der Forschung zur Verhütung Blindheit (XL), unterstützt die Illinois Gesellschaft zur Verhütung von Blindheit (HC) und NIH R01EY019034 (XL).

Verfahren C57BL/6J-Mäusen (Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME) sind an der Northwestern University Animal Care Facility angehoben. Alle Tiere werden in Übereinstimmung mit den Protokollen von der Northwestern University Institutional Animal Care und Verwenden Ausschuss gestellt und den Leitlinien für die Verwendung von Tieren in Neuroscience Forschung vom NIH genehmigt werden. 1. Laserphotokoagulation Das Verfahren der Laserkoagulation von zuvor veröffentlichten Protokollen 5-7 modifiziert. <ol><li> Anesthetize eine 40-60 Tage alten Maus durch eine intraperitoneale Injektion von Ketamin (100 mg / kg, Butler Schein Tiergesundheit, OH) und Xylazin (10 mg / kg, Lloyd Inc. von Iowa, Shenandoah, IA). </li><li> Dilate die Pupille des rechten Auges des Versuchstieres durch topische Behandlung mit einem oder zwei Tropfen von 1% Atropin-Sulfat-Lösung (Alcon Labs, Inc., Fort Worth, TX). </li><li> Nach Mydriasis, glätten die einnterior Kammer zu verbessern Laserinduktion 6. Legen Sie eine Glasmikropipette mit scharfen Spitze (World Precision Instruments Inc, Sarasota, FL) in den vorderen Raum unter der Spaltlampe (SL-3E, Topcon, Oakland, NJ) ablaufen lassen die Flüssigkeit in die vordere Kammer. </li><li> Haltet die Maus in einem Kunststoff-Kegel Halter (Braintree Sci Inc., MA) und bis auf eine hausgemachte Plattform gebunden (siehe Abbildung 1a). Halten Sie die Maus mit Verzögerer und macht das rechte Auge der Maus auf die Lichtquelle hinter der Spaltlampe. Richten des rechten Auges des narkotisierten Maus unter der Spaltlampe. </li><li> Halten Sie die Maus Restrainer mit beiden Händen, gelten die Laserbeleuchtung der Hornhaut Limbus mit einem Argon-Laser (Ultima 2000SE, Coherent, Santa Clara, CA). Liefern 80-100 Laserspots (514 nm, 100 mW, 50 ms Puls und 200 um spot) senkrecht um den Umfang des trabekulären Netzwerks. Die C57BL / 6 Mäuse pigmentierten Iris, die als Barriere für alle p dientotential Streuenergie 7. </li><li> Instill aktuell 0,5% Moxifloxacin (Alcon Labs, Inc., Fort Worth, TX) auf der Augenoberfläche, um den Laser-behandelte Fläche und 0,5% Proparacaine (Bausch &amp; Lomb, Rochester, NY), Schmerzen zu lindern desinfizieren. </li><li> Halten Sie das Tier auf einem Heizkissen (Sunbeam Products Inc, Boca Raton, FL) für die Verwertung für etwa eine Stunde, bis er ganz wach ist. </li><li> Das linke Auge ist unbehandelt als Kontrolle zu dienen. </li></ol> 2. IOP Maße <ol><li> Legen Sie die Maus wach in eine Röhre, in der Kunststoff-Kegel Halter laden und dann zurückhalten es auf der Plattform (siehe Abbildung 2A). </li><li> Lassen Sie fünf bis zehn Minuten, damit die Maus an den Inhaber Position angepasst bekommen. Nähern Sie sich dem Rebound-Tonometer (TonoLab, Colonial Medical Supply, Franconia, NH) an der Maus, bis das Auge Sondenspitze ist 2-3 mm von der Oberfläche der Hornhaut 14. </li><li> Drücken Sie die Taste, um die Messung lassen sich die Sondenspitze traf die Mitte Oberflächevon Hornhaut sanft. Drei aufeinanderfolgende Sätze von sechs Messungen der IOP desselben Auges erfasst und gemittelt als IOP des Auges. Die unbehandelten Kontrolle Auge wird immer zuerst eine Basislinie für die Laser-behandelten Auge, das nächste wird gemessen bekommen gemessen. </li></ol> 3. Optomotorischen-Test Sehschärfe und Kontrastempfindlichkeit sind 14,15 getestet. Die beiden Augen einzelner Mäuse werden einzeln durch die Umkehrung der Richtung driftet Gitter untersucht, dh im Uhrzeigersinn Driften Gitter verwendet wird, um die visuelle Funktion des linken Auges und des gegen den Uhrzeigersinn treibt Gitter für das rechte Auge 16 zu identifizieren. Jeder Test dauert etwa 15 min und wird durch zwei Beobachter unabhängig wiederholt. <ol><li> Platzieren Sie die Maus und lassen Sie die Maus frei bewegen auf einer erhöhten Plattform von vier Computermonitore (3A-B) umgeben. </li><li> Stellen Sie die Monitore so dass sie horizontal treiben Display sinusförmigeGittern als visuelle Reize zur mittleren Leuchtdichte von 39 cd / m 2. Die Bewegungsrichtung des Gitters sollten sich abwechseln nacheinander zwischen Uhrzeigersinn und gegen den Uhrzeigersinn. </li><li> Analysieren Sie die Bewegungen des Tieres. Bewegungen des Tieres in Abstimmung mit den treibenden Gitter werden als &quot;positive&quot; innerhalb von 15 Sekunden nach der visuelle Reiz ist und dann allmählich erhöht. Die höchste Antwort-auslösenden visuellen Stimulus als das Tier die Sehschärfe 17 definiert. </li><li> Untersuchen Sie die Kontrastempfindlichkeit bei drei vorgewählten räumlichen Frequenzen: 0,075, 0,16 und 0,3 Zyklen pro Grad (cpd). Der Kontrast Schwelle für jedes Auge wird als die niedrigste dagegen die visuelle Reaktionen hervorruft bei der Pre-festen Frequenz definiert. Der Kontrast-Empfindlichkeit ist der reziproke Wert der Schwelle 17. </li></ol>

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<li>Rangarajan, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+visual+deficits+in+aging+DBA%2F2J+mice+by+two+behavioral+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Detection of visual deficits in aging DBA/2J mice by two behavioral assays.</a> Curr. Eye Res. 36, 481-491 (2011).</li>
<li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direction-specific+disruption+of+subcortical+visual+behavior+and+receptive+fields+in+mice+lacking+the+beta2+subunit+of+nicotinic+acetylcholine+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Direction-specific disruption of subcortical visual behavior and receptive fields in mice lacking the beta2 subunit of nicotinic acetylcholine receptor.</a> J. Neurosci. 29, 12909-12918 (2009).</li>
<li>Douglas, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Independent+visual+threshold+measurements+in+the+two+eyes+of+freely+moving+rats+and+mice+using+a+virtual-reality+optokinetic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Visual+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Independent visual threshold measurements in the two eyes of freely moving rats and mice using a virtual-reality optokinetic system.</a> Visual Neuroscience. 22, 677-684 (2005).</li>
<li>Prusky, G. T., Alam, N. M., Beekman, S., Douglas, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+quantification+of+adult+and+developing+mouse+spatial+vision+using+a+virtual+optomotor+system%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Rapid quantification of adult and developing mouse spatial vision using a virtual optomotor system.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45, 4611-4616 (2004).</li>
<li>Morrison, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+of+chronic+pressure-induced+optic+nerve+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Eye+Research%22%5BJournal%5D)">A rat model of chronic pressure-induced optic nerve damage.</a> Experimental Eye Research. 64, 85-96 (1997).</li>
<li>Cone, F. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+anesthesia%2C+mouse+strain+and+age+on+intraocular+pressure+and+an+improved+murine+model+of+experimental+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Eye+Research%22%5BJournal%5D)">The effects of anesthesia, mouse strain and age on intraocular pressure and an improved murine model of experimental glaucoma.</a> Experimental Eye Research. 99, 27-35 (2012).</li>
<li>Liu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain-derived+neurotrophic+factor+and+TrkB+modulate+visual+experience-dependent+refinement+of+neuronal+pathways+in+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Brain-derived neurotrophic factor and TrkB modulate visual experience-dependent refinement of neuronal pathways in retina.</a> J. Neurosci. 27, 7256-7267 (2007).</li>
<li>Liu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+neonatal+development+of+retinal+ganglion+cell+dendrites+by+neurotrophin-3+overexpression%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Regulation of neonatal development of retinal ganglion cell dendrites by neurotrophin-3 overexpression.</a> The Journal of Comparative Neurology. 514, 449-458 (2009).</li>
<li>Sun, W., Li, N., He, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+morphological+survey+of+mouse+retinal+ganglion+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Large-scale morphological survey of mouse retinal ganglion cells.</a> The Journal of Comparative Neurology. 451, 115-126 (2002).</li>
<li>Feng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+Ocular+Hypertension+Induces+Dendritic+Degeneration+of+Mouse+Retinal+Ganglion+Cells+that+Depends+on+Cell-type+and+Location%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Sustained Ocular Hypertension Induces Dendritic Degeneration of Mouse Retinal Ganglion Cells that Depends on Cell-type and Location.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. , (2013).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen haben. Die Autoren sind Vollzeit-Mitarbeiter von der Northwestern University. Die Autoren erhielten keine Mittel, die von Unternehmen, die Reagenzien und Instrumente in diesem Artikel verwendet produzieren bereitgestellt.

Wir berichten über diesem anhaltenden Augenhypertension können durch Laser-Beleuchtung in Mäuseaugen induziert werden. Im Vergleich zur Injektion von Kochsalzlösung Modell 18 und der Vene cautery Modell 11 beide umfangreichen mikrochirurgischen Fähigkeiten erfordern, ist die Laserbestrahlung relativ einfach und leicht durchzuführen. Normalerweise können wir den Laser-Beleuchtung für 4-6 Mäuse in 2-3 Stunden durchzuführen. Die kritischen Schritte aufrechterhalten IOP Höhe erreichen sind die vordere ...

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagenz</td></tr><tr><td>Moxifloxacin</td><td>Alcon Labs, Inc.</td><td>NDC 0065-4013-03</td><td>0,5 %, nur Rx</td></tr><tr><td>Proparacainhydrochlorid</td><td>Bausch Lomb</td><td>NDC 24208-730-06</td><td>0,5 %, nur Rx</td></tr><tr><td>Ophthalmic Solution USP</td><td>Bausch Lomb</td><td>NDC 24208-730-06,5</td> <td>%, nur Rx</td></tr><tr><td>Ketamin</td><td>Butler Schein Animal Health</td><td>NDC 11695-0550-1</td><td>100 mg / kg </td></tr><tr><td>Xylazin</td><td>LLOYD Inc. of Iowa</td><td>NADA 139-236</td><td>10 mg / kg </td></tr><tr><td>Atropinsulfat-Lösung</td><td>Alcon Labs, Inc.</td><td>NDC 61314-303-02</td><td>1 %, nur</td></tr><tr> Rx<td colspan="4">Equipment </td></tr><tr><td>Spaltlampe, TOPCON </td><td>Visual Systems Inc</td><td>SL-3E</td><td>powered by PS-30A</td></tr><tr><td>OptoMotry 1.8.0 virtual</td><td>CerebralMechanics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>optokinetisches Prüfsystem</td><td>CerebralMechanics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tonometer, TonoLab, für Mäuse</td><td>Colonial Medical Supply</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heizkissen</td><td>Sunbeam Products Inc</td><td>722-810</td><td></td></tr><tr><td>Argonlaser </td><td>Coherent Inc</td><td>Ultima 2000SE</td><td></td></tr><tr><td>DECAPICONE Kunststoff-Kegelhalter </td><td>Braintree Sci Inc.</td><td>MDC-200</td><td>für Maus</td></tr></tbody></table>

ein laser-induzierten maus-modell der chronischen ocular hypertension zu sehfehler charakterisierung

A Laser-induced Mouse Model of Chronic Ocular Hypertension to Characterize Visual Defects

Glaukom, häufig mit erhöhtem Augeninnendruck (IOP) verbunden sind, ist eine der führenden Ursachen für Erblindung. Wir versuchten, ein Maus-Modell von Augenhypertension die menschliche High-Tension Glaukom imitieren zu etablieren. Hier Laserbeleuchtung mit dem Hornhautrand, um die wässerige Abfluß photocoagulate, induzieren Engwinkel. Die Änderungen des IOP erfolgt über ein Rebound-Tonometer vor und nach der Laserbehandlung. Ein optomotor Verhaltens-Test wird verwendet, um die entsprechenden Änderungen in der visuellen Leistungsfähigkeit zu messen. Die repräsentatives Ergebnis von einer Maus, die nachhaltig IOP Erhebung nach der Laser-Beleuchtung entwickelt gezeigt. Eine verminderte Sehschärfe und Kontrastempfindlichkeit wird in diesem Augeninnendruck Maus beobachtet. Gemeinsam stellt unsere Studie einen wertvollen Modellsystem zur neuronalen Degeneration und die zugrunde liegenden molekularen Mechanismen in glaukomatöse Mäusen zu untersuchen.

Wie in den Verfahren beschrieben, ist die Laser-Beleuchtung an der Trabekelnetzwerk im Limbus Region, um die Kammerwasserabfluss photocoagulate Ziel, Induktion Winkel Verschluss (Abbildung 1). Die meisten gelaserten Augen zeigten keine erheblichen Sachbeschädigungen, Pigment Ablösung oder Infektion, im Einklang mit früheren Befunden 6. Wenn eine kleine Gruppe von Mäusen (weniger als 5% aller gelaserten Tiere) körperliche Anzeichen von schweren Schäden wie entleert Augäpfel, schwere Katarakt, ...

Chronische Augenhypertension induziert wird mittels Laserkoagulation der Trabekelnetzwerk in Maus Augen. Der Augeninnendruck (IOP) wird für mehrere Monate nach der Laser-Behandlung erhöht. Die Abnahme der Sehschärfe und Kontrastempfindlichkeit von Versuchstieren werden anhand des optomotor Test.

Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung

Glaucoma, frequently associated with elevated intraocular pressure (IOP), is one of the leading causes of blindness. We sought to establish a mouse model ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, eine chronische okulare Hypertension mittels Laser-Photokoagulation des Trabekelgewebes an der Maus zu induzieren. Nach der Anästhesie der Maus wird die Pupille der behandelten Augen dilatiert und anschließend die vordere Augenkammer abgeflacht. Der zweite Schritt besteht darin, die okulare Hypertension zu induzieren, indem ein Laserstrahl entlang des Umfangs des Trabekelgewebes senkrecht zur Oberfläche appliziert wird.Anschließend wird der Augeninnendruck der Maus über einen Zeitraum mithilfe eines Tonometers verfolgt. Der letzte Schritt besteht darin, automatisierte Tests durchzuführen, um Veränderungen der Sehschärfe aufzuzeigen. Letztendlich können so visuelle Defekte, die durch Hypertonie verursacht werden, über die Zeit hinweg beobachtet werden.Nach Genehmigung eines I-A-C-U-C-Protokolls wird eine 40 bis 60 Tage alte C57BL/6-Maus durch eine intraperitoneale Injektion von Ketamin und Xylazin anästhesiert. Anschließend trägt man vorsichtig Augensalbe auf das linke Kontrollauge auf und weitet die Pupille des rechten Auges durch topische Applikation von ein oder zwei Tropfen einer 1 %igen Atropinsulfat-Lösung. Sobald die Pupille vollständig geweitet ist, führt man eine scharfe Glas-Mikropipette in den vorderen Augenraum ein, um die Flüssigkeit aus der vorderen Augenkammer abzuleiten.Dadurch wird die vordere Augenkammer abgeflacht und die Laserinduktion verbessert. Anschließend positionieren Sie die Maus unter der Spaltlampe, fixieren Sie in einem Kunststoff-Kegelhalter und sichern Sie auf einer selbstgebauten Plattform. Bereiten Sie dann die Argon-Laserquelle vor, indem Sie die Wellenlänge auf 514 Nanometer, die Leistung auf 100 Milliwatt, die Impulsdauer auf 50 Millisekunden und die Fleckgröße auf 200 Mikrometer einstellen.Wenn der Laser vorbereitet ist, halte die Maus mit dem Fixierungsgerät und exponiere das rechte Auge der Maus gegenüber der Lichtquelle hinter der Spaltlampe, um den Laser auszurichten. Anschließend wird die Laserbestrahlung mit dem Argon-Laser senkrecht zum kornealen Limbus appliziert, wobei 80 bis 100 Laserimpulse entlang des Umfangs des Trabekelmaschenwerks platziert werden. Siehe 57 schwarze sechs Mäuse.Verfügen über eine pigmentierte Iris, die als Barriere gegen potenzielle Streuenergie dient. Nach dem Eingriff topisch 0,5 % Moxifloxacin auf der Okularoberfläche applizieren, um den laserbehandelten Bereich zu desinfizieren, sowie 0,5 % Propane, um die Schmerzen zu lindern. Das Tier zur Erholung etwa eine Stunde lang auf einer Heizplatte lassen, bis es vollständig wach ist.Platzieren Sie eine wache Maus in ein Rohr und setzen Sie sie dann in die Halterung aus Kunststoffkegel ein. Danach fixieren Sie die Maus auf der Plattform. Achten Sie darauf, die Maus nicht übermäßig zu fixieren, da dies zu künstlich erhöhten Messwerten des intraokularen Drucks führen könnte.Lassen Sie fünf bis zehn Minuten verstreichen, damit sich die Maus an die Halterposition gewöhnen kann. Nähern Sie sich dann langsam dem Rückstoß-Chronometer in Richtung des Kontrollauges, bis die Probenspitze zwei bis drei Millimeter von der Oberfläche der Hornhaut entfernt ist. Das unbehandelte Kontrollauge wird immer zuerst gemessen, um einen Basiswert für das anschließend gemessene laserbehandelte Auge zu erhalten.Wenn der Rebound-Chronometer in Position ist, drücken Sie die Messungstaste, wodurch die Sonde sanft die zentrale Oberfläche der Hornhaut trifft. Nehmen Sie drei aufeinanderfolgende Serien mit jeweils sechs Messungen des Augeninnendrucks desselben Auges vor. Diese Messungen werden anschließend für jeden Augentest gemittelt, um die Sehschärfe und Kontrastempfindlichkeit mithilfe eines Motortests zu ermitteln.Dies wird erreicht, indem man die Maus zunächst auf eine erhöhte Plattform stellt, die von vier Computermonitoren umgeben ist, und ihr freie Bewegung ermöglicht. Richten Sie die Monitore der Optometrieapparatur so ein, dass sie horizontal wandernde sinusförmige Gitter als visuelle Reize mit einer mittleren Leuchtdichte von 39 Candela pro Quadratmeter anzeigen. Die Bewegungsrichtung des Gitters sollte sich jeweils abwechselnd im Uhrzeigersinn und gegen den Uhrzeigersinn ändern.Während des Tests. Zeichnen Sie die Bewegungen der Maus mit einer über der Maus angebrachten Kamera auf. Verwenden Sie eine im Uhrzeigersinn wandernde Gitterung, um die Sehfunktion des linken Auges zu bestimmen, und eine gegen den Uhrzeigersinn wandernde Gitterung für das rechte Auge.Jeder Test dauert etwa 15 Minuten und wird unabhängig von zwei Beobachtern wiederholt, die während des Tests Bewegungen zählen, die synchron mit den treibenden Abstufungen erfolgen, und diese als positive Bewegungen werten. Treten sie innerhalb von 15 Sekunden nach Testbeginn auf, erhöht man den visuellen Reiz, um den höchsten Antwortwert zu ermitteln; dieser Reiz wird als visuelle Schärfe des Tieres gewertet. Anschließend wird die Kontrastempfindlichkeit jedes Tieres bei drei vorab ausgewählten räumlichen Frequenzen untersucht, wobei der Kontrast-Schwellenwert für jedes Auge als der niedrigste Kontrast definiert wird, der visuelle Reaktionen bei den festgelegten Frequenzen hervorruft.Der Augeninnendruck neigte sich bei nahezu jedem mit Laser behandelten Auge dazu, erhöht zu sein. Weniger als 5 % der Mäuse wiesen jedoch körperliche Anzeichen schwerer Schäden auf, wie eingefallene Augäpfel, schwere Katarakte, signifikante Pigmentierung, Ablösung oder Blutungen. Ein Beispiel für eine Veränderung des Augeninnendrucks wird hier gezeigt.Eine Woche nach der Laserbehandlung. Der Augeninnendruck des behandelten Auges war fast doppelt so hoch wie der des unbehandelten Auges und blieb etwa 16 Wochen lang erhöht. Der erhöhte Druck normalisierte sich anschließend nahezu wieder.Bei etwa 20 Wochen trat eine Abnahme der Sehschärfe im behandelten Auge auf. Nach dem Eingriff hielt dies mindestens sechs Monate an und dauerte länger als der Anstieg des Augeninnendrucks.Ebenso wurde eine geringere Kontrastempfindlichkeit des behandelten Auges mit erhöhtem intraokularem Druck beobachtet.

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Forschung

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Medizin

Das Glaukom ist eine der Hauptursachen für Blindheit in der Welt. Erhöhten Augeninnendruck ist ein Hauptrisikofaktor. Laserkoagulation induzierte okulärer Hypertension ist eine der etablierten Tiermodell. Dieses Video zeigt, wie okulärer Hypertension durch Argon Laser-Photokoagulation bei Ratten zu induzieren.

Laser-induzierte chronische Ocular Hypertension Modell auf SD-Ratten

Quelle: Lani-Louzada, R., et al., Full-Circle Cauterization of Limbal Vascular Plexus for Surgically Induced Glaucoma in Nagetiers. J. Vis. Exp. (2022)Dieses Video zeigt die Induktion und Überwachung eines erhöhten Augeninnendrucks (IOD) in einem Rattenmodell. Bei diesem Verfahren werden die limbalen Blutgefäße kauterisiert, was zu einem Gefäßverschluss und einem erhöhten Augeninnendruck führt. Die Ratte kann sich dann erholen, und der Augeninnendruck wird zum Vergleich sowohl in den...

 Induktion eines erhöhten Augeninnendrucks im Rattenmodell

Hier präsentieren wir das Maus-Laser-induzierte choroidale Neovaskularisation (CNV) Protokoll, ein experimentelles Modell, das die vaskulären Kennzeichen der neovaskulären altersbedingten Makuladegeneration (AMD) nachbildet. Einmal gemeistert, kann es zuverlässig und effektiv CNV als Modellsystem induzieren, um verschiedene experimentelle Maßnahmen zu testen.

Ein Mausmodell für Laser-induzierten CNV

Hier stellen wir ein Protokoll okulärer Hypertension im murinen Auge zu induzieren, die in dem Verlust von retinalen Ganglionzellen führt, wie bei Glaukom beobachtet. Magnetische Mikrokügelchen werden in die vordere Kammer injiziert und angezogen, um den Kammerwinkel unter Verwendung eines Magneten den Abfluss von Kammerwasser zu blockieren.

Ein Magnet Microbead Occlusion Modell Ocular Hypertension Abhängige Glaucoma in Mäusen zu induzieren

Hier präsentieren wir Ihnen die Nützlichkeit der längs in-Vivo Bildgebung bei der Nachbereitung der morphologischen Veränderungen der laserinduzierten choroidale Neovaskularisation bei Mäusen.

In Vivo Multimodale Bildgebung und Analyse der laserinduzierten choroidale Neovaskularisation Mausmodell

Chronische okulärer Hypertension wird induziert durch die Anwendung einer Circumlimbal Naht bei Ratten und Mäusen, was zu funktionellen und strukturellen Verschlechterung der retinalen Ganglienzellen, die konsistent mit Glaukom.

Ein Modell des Glaukoms induziert durch Circumlimbal Naht bei Ratten und Mäusen

Hier beschreiben wir die Verwendung der spektralen optischen Kohärenztomographie (SD-OCT) zur Visualisierung von Netzhaut- und Augenstrukturen in vivo in Modellen der Netzhautdegeneration, des Glaukoms, der diabetischen Retinopathie und der Myopie.

In-vivo-Strukturbewertungen von Augenerkrankungen in Nagetiermodellen mittels optischer Kohärenztomographie

Hier beschreiben wir ein optimiertes Protokoll für den retinalen Venenverschluss unter Verwendung von Rose Bengal und einem lasergesteuerten retinalen Bildgebungsmikroskopsystem mit Empfehlungen zur Maximierung der Reproduzierbarkeit in gentechnisch veränderten Stämmen.

Optimierung des Mausmodells mit retinalen Venenverschlüssen zur Begrenzung der Variabilität

Hier beschreiben wir eine in vivo bildgebende Technik mittels optischer Kohärenztomographie, um die Diagnose und quantitative Messung der Retinopathie bei Mäusen zu erleichtern.

Anwendung der optischen Kohärenztomographie auf ein Mausmodell der Retinopathie

Das Ziel dieses Protokolls ist es, ein neuartiges Modell der glaukomatösen Neurodegeneration zu charakterisieren, das auf einer thermischen 360°-Kauterisierung des limbalen Gefäßplexus basiert und eine subakute okuläre Hypertonie induziert.

Vollkreiskauterisierung des limbalen Gefäßplexus bei chirurgisch induziertem Glaukom bei Nagetieren

Lernen Sie die Erzeugung chronischer okulärer Hypertonie durch Laser-Photokoagulation des Trabekelwerks bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Langzeitüberwachung des Augeninnendrucks und die Bewertung visueller Funktionsdefizite.

Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung

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