-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

DE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

German

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Behavior
Bau Microdrive Arrays für chronische Neural Recordings in Awake benimmt Mäuse
Bau Microdrive Arrays für chronische Neural Recordings in Awake benimmt Mäuse
JoVE Journal
Behavior
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Behavior
Construction of Microdrive Arrays for Chronic Neural Recordings in Awake Behaving Mice

Bau Microdrive Arrays für chronische Neural Recordings in Awake benimmt Mäuse

Full Text
21,440 Views
10:44 min
July 5, 2013

DOI: 10.3791/50470-v

Eric H. Chang1, Stephen A. Frattini1, Sergio Robbiati1, Patricio T. Huerta1,2

1Lab of Immune and Neural Networks, Feinstein Institute for Medical Research,North Shore LIJ Health System, 2Department of Molecular Medicine,Hofstra North Shore LIJ School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Die Konstruktion und Montage von Mikroantriebe für in vivo elektrophysiologischen Aufnahmen von Gehirn Signale von der Maus beschrieben. Durch das Anbringen Mikroelektroden Bundles robust fahrbare Träger erlauben diese Techniken für die langfristige und stabile neuronale Aufnahmen. Das leichte Design ermöglicht uneingeschränkte Verhaltensleistung durch das Tier folgende Laufwerk Implantation.

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, einen Mikroantrieb zu bauen, der für Gehirnaufzeichnungen bei Mäusen verwendet werden kann, während sie sich frei in einer Experimentierkammer bewegen. Dies wird erreicht, indem zunächst ein Bündel von vier Mikroelektroden zu einem Teig präpariert wird. Der zweite Schritt besteht darin, die Basis des Mikroantriebs zu konstruieren und die Antriebskomponenten zu montieren.

Als nächstes werden die Tetros an den Antrieb angehängt und mit goldenen Stiften verbunden. Der letzte Schritt besteht darin, die Spitze des Tetros zu vergolden, um ihre Impedanz zu senken und eine hohe Signal-Rausch-Aufnahme zu gewährleisten. Letztendlich werden chronische Micro-Drive-Arrays verwendet, um die neuronale Aktivität von Neuronenpopulationen sowie von einzelnen Neuronen bei wach verhaltenden Tieren aufzuzeichnen.

Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie eine relativ kostengünstige und leichte Wellenlösung für chronische Gehirnaufzeichnungen bei Mäusen und anderen kleinen Säugetieren bietet. Diese Technologie kann Schlüsselfragen im Bereich der Neurowissenschaften lösen, z. B. wie Neuronen Informationen während der Ausführung von Verhaltensaufgaben kodieren. Wir verwenden diese Technik regelmäßig, um von Neuronen aus dem dorsalen Hippocampus und Ulu aufzunehmen, aber wir haben sie auch verwendet, um tiefere Strukturen wie die Amygdala ins Visier zu nehmen.

Die visuelle Demonstration dieser Methode ist von entscheidender Bedeutung, da die Konstruktion und der Montageteil schwer zu erlernen sind und Sie es auch mit sehr kleinen und empfindlichen Teilen zu tun haben, um mit der Herstellung von Tetro zu beginnen. Schneiden Sie für den Hippocampus 30 Zentimeter isolierten Platin-Iridium-Kerndraht mit einem Durchmesser von 12,5 Mikrometern ab und falten Sie den Draht zweimal, um vier parallele Drähte mit einer Länge von je 7,5 Zentimetern zu bilden. Befestigen Sie als Nächstes einen gummibeschichteten Clip in der Nähe der Unterseite des drapierten Drahtes und befestigen Sie ihn an dem motorisierten Tetro-Spinner, wobei Sie darauf achten, dass der Draht straff, aber nicht zu straff ist oder das Gewicht trägt, was dazu führt, dass er bricht.

Während des Schleudervorgangs ziehen Sie den Tero mit 80 Umdrehungen im Uhrzeigersinn auf, gefolgt von 20 Umdrehungen gegen den Uhrzeigersinn, um die Spannung zu lösen. Die endgültige Anzahl der Umdrehungen pro Drahtlänge sollte acht Umdrehungen pro Mikrometer betragen. Stellen Sie als Nächstes die Heißluftpistole auf 400 Grad Celsius ein und verwenden Sie sie, um die Drähte miteinander zu verschmelzen.

Lassen Sie die Heißluftpistole fünf Sekunden lang über die Drähte auf und ab laufen und halten Sie sie dabei immer etwa zwei Zentimeter vom Draht entfernt. Um die VG-Bondbeschichtung auf den Drähten vorsichtig zu schmelzen, schneiden Sie die Oberseite des Teros in vier separate Drähte und lösen Sie dann das untere Ende vom Clip. Legen Sie den fertigen Tero zur Aufbewahrung in eine staubfreie Aufbewahrungsbox, bis das Laufwerk fertiggestellt ist.

Konstruieren Sie zunächst die Basis für das Mikrolaufwerk, indem Sie ein 20 Millimeter großes, quadratisches Stück Plexiglasacryl mit einer Dicke von fünf Millimetern in eine Form schleifen, die es der Maus ermöglicht, sich nach der Implantation auf dem Kopf frei mit dem Laufwerk zu bewegen. Als nächstes löten Sie zwei 3,3 x 6,3 Millimeter große Messingführungen senkrecht aneinander. Die vertikale Messingführung hält die Antriebsschraube und die Elektroden, während das horizontale Stück in die Acrylbasis eingeklebt wird.

Beginnen Sie dann mit der Montage des Antriebs selbst, indem Sie eine Einfüllkopf-Brustschraube durch die Oberseite der Führung in einen Delrin-Kunststoffblock führen. Schrauben Sie eine Sechskantbrust erst dann auf die Schraube, wenn die Mutter fast die Unterseite der Führung berührt. Ziehen Sie es jedoch nicht vollständig fest.

Schmelzen Sie stattdessen eine kleine Menge Lot, um die Mutter und die Schraube zu verbinden. Achten Sie aber darauf, dass Sie nichts an die Anleitung löten. Durch Drehen der Schraube sollte der Delrinblock im Uhrzeigersinn und gegen den Uhrzeigersinn vertikal entlang des Gewindes bewegt werden.

Sobald der Antrieb zusammengebaut ist, gehen Sie zurück zur Acrylbasis und schneiden Sie einen drei Millimeter breiten Schlitz aus, wo sich der Elektrodenantrieb befinden wird. Führen Sie dann die horizontale BH-Führung durch den Schlitz und befestigen Sie das Stück dann mit Sano ACRL-Kleber an der Basis. Platzieren Sie als Nächstes eine elektronische Schnittstellenplatine auf dem Sockel und markieren Sie die Positionen der beiden Schraubenlöcher mit einem 1,5-Millimeter-Bohrer, indem Sie vorsichtig Löcher in die Markierungen für Schrauben bohren, die die EIB oben auf dem Sockel halten.

Gewinde dann zwei Brustschrauben in die Löcher ein. Schneiden Sie mit einer Mikro-Präparierschere vier sieben Millimeter lange Stücke Polyamidschlauch ab. Richten Sie diese nebeneinander auf einem Stück gefaltetem Laborband aus und tragen Sie sano ACRL auf, um sie miteinander zu verbinden.

Lassen Sie genügend Zeit, damit die Verbindungsrohre vollständig getrocknet sind. Tupfen Sie anschließend vorsichtig eine kleine Menge Cyanacrylat auf die Delrin-Fläche. Lege dann die vier Fugenrohre auf den Kleber.

Lassen Sie auch hier genügend Zeit, bis der Kleber vollständig ausgehärtet ist, bevor Sie versuchen, das Laufwerk zu bewegen. Prüfen Sie, ob die Polyamidrohre sicher befestigt sind und dass sich die gesamte Baugruppe reibungslos bewegt, ohne die Führung zu berühren oder auf Widerstand zu stoßen. Bereiten Sie als Nächstes die Erdungsschraube vor und verbinden Sie das Erdungskabel mit dem EIB, wie im beigefügten Textprotokoll beschrieben.

Verbinden Sie Tetros und/oder einzelne Elektroden mit der EIB, indem Sie die Drähte zuerst durch das Polyamidrohr führen, so dass sie mindestens zwei Millimeter über das Rohrende hinausragen. Tragen Sie dann einen kleinen Tropfen Cyanacrylat auf, befestigen Sie den Draht an der Tube und verhindern Sie jede Bewegung des Drahtes. Verbinden Sie als Nächstes die losen Enden des Tero oder anderer Drähte mit einem Goldstift mit einem EIB-Kanalloch

.

Schneiden Sie zum Schluss überschüssigen Draht mit einer feinen Schere ab. Hier sind Beispiele für andere Antriebskonfigurationen, die so konstruiert werden können, dass sie auf verschiedene Gehirnregionen abzielen. Um umgekehrt zu beginnen, fahren Sie die Baugruppe.

Schneiden Sie den Polyamidschlauch auf 10 Millimeter ab und führen Sie ihn durch das kleinste Loch an einem Tetro-Träger, bis er 0,5 Millimeter über das Ende hinausragt. Setzen Sie dann das Polyamidrohr mit Epoxidharz auf und wiederholen Sie diese Schritte für die drei anderen Rohre und Träger. Nachdem das Epoxidharz vollständig ausgehärtet ist.

Führen Sie jedes Polyamidrohr durch eines der vier Löcher an der Versa-Antriebsbasis. Schiebe dann einen Insektenstift durch das äußere Loch. Dadurch wird der Tetro-Träger in der Linie gehalten und dient als Schiene, auf der der Träger reisen kann.

Wiederholen Sie diesen Vorgang für die drei anderen Träger. Nehmen Sie dann eine Kappe und richten Sie sie mit den vier Insektenstiften so aus, dass die Kappe den Boden bedeckt und die Tero-Träger in der Kappe sitzen. Fädeln Sie eine ein Millimeter mal fünf Millimeter große Maschinenschraube durch das entsprechende Loch in der Kappe und in den tero Träger.

Wiederholen Sie dies für die anderen drei Schrauben. Drehen Sie alle Schrauben im Uhrzeigersinn, bis sich die Tetro-Träger in ihrer oberen Position befinden und die Polyamidrohre durch die Kappenöffnung sichtbar sind. Schneiden Sie den Schlauch mit einer feinen Mikropräparierschere knapp unterhalb des Bodens so ab, dass alle vier Polyamidschläuche die gleiche Länge haben.

Anschließend fädeln Sie den Tetros mit einem Präpariermikroskop vorsichtig durch die Polyamidröhrchen und fixieren sie mit einem kleinen Tropfen Anoat. Schneiden Sie dann die Tetros so ab, dass sie nur 2,0 Millimeter über die Rohre hinausragen. Bevor Sie die tero Drähte an die Goldhülsen anschließen.

Verbinden Sie zuerst die Erdungskabel mit der Kappe. Führen Sie als Nächstes alle losen Tero-Drähte durch die entsprechenden Buchsenlöcher an der Kappe und installieren Sie die Kappe, indem Sie die Löcher für die Insektenstifte ausrichten und die Passung an der Basis festdrücken. Schneiden Sie abschließend überschüssigen Draht ab, der oben aus der Kappe herausragt.

Drehen Sie zuerst die Mikroantriebsschrauben gegen den Uhrzeigersinn in ihre niedrigste Position. Montieren Sie dann den Mikroantrieb sicher an einer Klemme, die das Absenken der Elektrodenspitzen in die Vergoldungslösung ermöglicht. Füllen Sie einen Delrin-Turm mit CCO-Goldlösung und den anderen Turm mit destilliertem Wasser und senken Sie die Elektrodenspitzen in die Goldlösung ab.

Öffnen Sie anschließend das Nano Z-Programm und klicken Sie auf DC-Galvanik. Stellen Sie den Modus so ein, dass die Impedanzen angepasst werden: der Beschichtungsstrom auf minus 1,0 Mikroampere und der Zielwert auf 350 Kiloohm bei 1004 Hertz. Stellen Sie dann ein, dass es fünfmal in Fünf-Sekunden-Intervallen ausgeführt wird, mit einer Pause von zwei Sekunden zwischen jedem Lauf.

Sobald das Programm eingerichtet ist, klicken Sie auf Auto Plate, das Programm liest zuerst die Impedanz jedes Kanals. Wenden Sie dann den angegebenen Strom an diesen Kanal an, testen Sie die Impedanz erneut und wenden Sie bei Bedarf Strom an, bis die Zielimpedanz oder ein niedrigerer Wert erreicht ist. Wenn die Impedanz unter 100 Kiloohm fällt, kehren Sie die Strompolarität auf positive 1,0 Mikroampere um, um überschüssige Goldpartikel zu entfernen, und wiederholen Sie dann die Galvanisierung. Typische Endimpedanzwerte bei einem Bündel von vier 12,5-Mikrometer-Drähten liegen zwischen 150 und 325 Kiloohm.

Sobald alle Kanäle auf einen akzeptablen Impedanzpegel beschichtet sind, schließen Sie das Nano Z-Programm und trennen Sie das Gerät. Heben Sie dann die Elektroden aus der Beschichtungslösung und senken Sie die Spitzen in den Delrin-Turm mit destilliertem Wasser, um überschüssige Goldpartikel abzuspülen Repräsentative neuronale Aufzeichnungen mit dem Mikrolaufwerk zur Messung lokaler Feldpotentiale von der Maus. Hier sind dorsale Ulu zu sehen.

Die vier Kanäle, die in Teil A gezeigt werden, sind ein Beispiel für ein schlecht geerdetes Signal, das zu gesättigten Werten und extrem verrauschten Signalen führt. Die vier Kanäle, die in Teil B gezeigt werden, sind jedoch ein gutes Beispiel für ein gut geerdetes Signal mit deutlich sichtbaren Netzwerkschwingungen im Theta-Bereich von vier bis 12 Hertz. Links ist ein Beispiel für eine schlechte Tero-Aufnahme.

Da die vier Elektrodendrähte im Wesentlichen identische Spike-Wellenformen registriert haben, wurden für jeden Kanal des Teros über tausend einzelne Spike-Wellenformen übereinander gelegt. Dieses Muster war wahrscheinlich darauf zurückzuführen, dass die Drähte während des Isolationsschmelzschritts der Tero-Herstellung miteinander verschmolzen wurden, wodurch das Drahtbündel effektiv als eine einzige Aufzeichnungselektrode fungierte. Auf der rechten Seite ist ein Beispiel für eine gute Tetro-Aufnahme, die überlagerte Spike-Wellenformen von einer vermeintlichen Einheit mit unterschiedlichen Amplituden über die vier Tede-Drähte zeigt.

Diese Art von Spike-Aufzeichnungsmuster ermöglicht eine verbesserte Einheitenunterscheidung beim nachfolgenden Offline-Clustering und -Separation. Nachdem Sie diesen Mikrotauchgang konstruiert haben, ist es wichtig, jeden Ihrer Elektrodenkanäle zu testen und sicherzustellen, dass er sich in einem angemessenen Impedanzbereich befindet, bevor Sie zur Implantation übergehen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie sich wohl fühlen, wenn Sie Teros und Mikroelektrodenantriebe für die chronische Implantation in die Maus bauen.

Viel Glück beim Bau Ihrer Laufwerke und viel Spaß bei Ihren Experimenten.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Verhalten Issue 77 Neurowissenschaft Neurobiologie Anatomie Physiologie Biomedizinische Technik Gehirn Amygdala Hippocampus Elektroden implantiert Mikroelektroden Aktionspotentiale Neurowissenschaften Neurophysiologie Neurologie Gehirn Maus In vivo Elektrophysiologie Tetroden Microdrive chronische Aufnahmen lokale Feldpotential Rücken subiculum Tiermodell

Related Videos

Micro-Drive-Array für chronische In vivo Recording: Drive Fabrication

14:03

Micro-Drive-Array für chronische In vivo Recording: Drive Fabrication

Related Videos

25.8K Views

Micro-Drive-Array für chronische In vivo Recording: Tetrode Assembly

14:19

Micro-Drive-Array für chronische In vivo Recording: Tetrode Assembly

Related Videos

34.1K Views

Konstruktion und Montage eines Ultra-light Motorisierte Microdrive für chronische Neural Recordings in Kleintiere

10:29

Konstruktion und Montage eines Ultra-light Motorisierte Microdrive für chronische Neural Recordings in Kleintiere

Related Videos

12.5K Views

Eine Micro-Drive-Array-Methode zur elektrophysiologischen Aufzeichnung von mehreren Hirnregionen

04:49

Eine Micro-Drive-Array-Methode zur elektrophysiologischen Aufzeichnung von mehreren Hirnregionen

Related Videos

673 Views

Design und Fertigung von Ultraleichtgewicht, verstellbare Multi-Elektroden-Sonden für elektrophysiologischen Ableitungen in Mäuse

15:43

Design und Fertigung von Ultraleichtgewicht, verstellbare Multi-Elektroden-Sonden für elektrophysiologischen Ableitungen in Mäuse

Related Videos

18.2K Views

Bau eine verbesserte Multi-Tuberkuloseinfektion Hyperdrive für groß angelegte neuronalen Aufnahme in Ratten Verhalten

10:04

Bau eine verbesserte Multi-Tuberkuloseinfektion Hyperdrive für groß angelegte neuronalen Aufnahme in Ratten Verhalten

Related Videos

11.8K Views

Hybrid Microdrive System mit wiederherstellbarer Opto-Silikon-Sonde und Tetrode für Dual-Site High Density Recording in frei beweglichen Mäusen

08:57

Hybrid Microdrive System mit wiederherstellbarer Opto-Silikon-Sonde und Tetrode für Dual-Site High Density Recording in frei beweglichen Mäusen

Related Videos

11.5K Views

Konstruktion und Implementierung von Kohlefaser-Mikroelektroden-Arrays für chronische und akute In-vivo-Aufnahmen

07:37

Konstruktion und Implementierung von Kohlefaser-Mikroelektroden-Arrays für chronische und akute In-vivo-Aufnahmen

Related Videos

4.3K Views

Ein leichtes Antriebsimplantat für chronische Tetrodenableitungen bei juvenilen Mäusen

06:34

Ein leichtes Antriebsimplantat für chronische Tetrodenableitungen bei juvenilen Mäusen

Related Videos

3.6K Views

Mehrkanalige extrazelluläre Aufzeichnung bei frei beweglichen Mäusen

08:59

Mehrkanalige extrazelluläre Aufzeichnung bei frei beweglichen Mäusen

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code