Name: In situ Quer Bauchmuskel myokutane Flap: Eine Ratte Modell myokutane Ischämie Reperfusion Injury (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 12 s
Description: Lernen Sie das TRAM-Flap-Modell bei Ratten zur Untersuchung von Präkonditionierungsstrategien und myokutaner Ischämie-Reperfusionsschädigung. Diese Methode liefert wertvolle Erkenntnisse für die rekonstruktive Chirurgie.

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Diese Arbeit wurde von der Medical Research Council Zuschuss G1000299 finanziert. Der korrespondierende Autor möchte Gary Borthwick, University of Edinburgh, für die Unterstützung während der Operation danken. Die Autoren möchten die Beratung von Helen Douglas und Iain Mackay anerkennen und es uns ermöglicht, ihre tiefe epigastrica (DIEP) Klappe Verfahren (Canniesburn Plastic Surgery Unit Glasgow Royal Infirmary, 84 Castle Street, Glasgow G4 0SF, UK) zu beobachten. Die Autoren möchte auch Gary Blackie an der Universität von Edinburgh danken für seine Hilfe bei der Produktion des Videos für diesen Artikel.

Jede Operation wird in Übereinstimmung mit den Richtlinien, die von den britischen Home Office und der University of Veterinary Services Edinburgh Abteilung eingestellt durchgeführt. 1. Surgical Procedure Set-up Hinweise <ol><li> Wechseln Sie in sauberen chirurgischen scheuert, kleid, OP-Haube und Maske. Reinigen Sie alle Oberflächen der OP inklusive Ausrüstung mit 2% Chlorhexidin in 70% igem Alkohol. </li><li> Vor der Operation, autoklavieren alle chirurgische Versorgung und Instrumente, die in dem Verfahren verwendet werden. Sterile Verpackungen pro Betrieb sollte beinhalten: 3 Vorhänge, Gaze, Wattestäbchen Applikatoren, Silikon-Folien und die chirurgischen Instrumente finden Sie in der Tabelle der spezifische chirurgische Materialien und Werkzeuge und Abbildung 1. Wiegen Sie die Ratte und messen Sie das entsprechende Volumen von Buprenorphin (0,04 mg / kg) subkutan verabreicht werden 1 Stunde vor dem Abschluss des Verfahrens. Legen Sie; 3 x 1 ml-Spritzen für die subkutane Flüssigkeitszufuhr während surgery, 2 x 6-0 Vicryl Nahtmaterial, 1 x 5-0 Ethilon Nähte, eine sterile Marker mit Lineal und einem 10-Blatt-Einweg-Skalpell, 4 - 5 Paar sterile Handschuhe und eine Hand-held Gerät Kauter. </li><li> Place 4 x 10 ml sterile 0,9% ige Kochsalzlösung Fläschchen in einem Wasserbad erwärmt auf 37 ° C. Dies wird für die subkutane Flüssigkeitszufuhr verwendet werden (1 ml / kg / h) und die Operationsstelle zu spülen. Richten Sie die homöothermen Decke, rektale Sonde, Wärmelampe, Operationsmikroskop und Narkose rig. Schalten Sie den Laser und seine Software, Set-up ein anderes Anästhetikum rig und legen Sie ein Heizkissen unter dem schwarzen Matte, auf der das Tier während des Scans legen wird. </li><li> Verwenden männlich, Lewis-Ratten mit einem Gewicht von 250-300 g. Haus Ratten für 7 Tage mit Futter und Wasser ad libitum mit 12 Stunden Licht-Dunkel-Zyklen vor jeder Operation durchgeführt wird. </li></ol> 2. Anästhesie und Vorbereitung der Haut <ol><li> Legen Sie die Ratte in der Narkose rig die Induktion Kammer und Verwaltung 4% Isofluran mit 1L/min O 2 für2-3 min auf die Anästhesie zu induzieren. Entfernen Sie den narkotisierten Ratten aus der Kammer und legen Sie sie in Rückenlage auf dem sauberen, beheizten Matte. Pflegen bei 1,5% mit einem Nasenkegel Isofluran. Bewerben lacrilube oder ähnliche Mittel zu Hornhautabschürfung während des Verfahrens zu verhindern. Führen Sie eine Fuß-pad Prise Test, um sicherzustellen, das Tier ausreichend betäubt, bevor Sie fortfahren. Wiederholen Sie diesen letzten Test vor jedem wichtigen Schritt in dem Verfahren und stellen Sie die Inhalationsnarkosemittel Konzentration entsprechend. </li><li> Eng Rasur der vorderen Bauchwand mit einem elektrischen Rasierer, so dass die gesamte Bauchdecke ausgesetzt ist. Bewerben depilating Creme für die Dauer vom Lieferanten empfohlen. Entfernen Sie die Sahne und gründlich die Haut mit erwärmten steriler Kochsalzlösung, um alle Spuren der Creme zu entfernen. Tragen Sie 2% Chlorhexidin in 70% igem Alkohol auf die Haut und lassen Sie trocknen, bevor Sie fortfahren. Dies ist die Standard-Vorbereitung der Haut in unserer Einheit zu aktuellen Beweise für chirurgische Wundinfektionen basiert. Bitte 34 discuss mit Ihrem Veterinary Department In ist das übliche Verfahren in Ihr Gerät vor der Wahl eine Vorbereitung der Haut Protokoll. </li><li> Platz 2 Vorhänge auf beiden Seiten der Ratte und kümmern sich um sie steril. Setzen Sie auf sterile Handschuhe und mit Hilfe eines Assistenten öffnen, die steril verpackt. Legen Sie alle Instrumente auf einen Faltenwurf und die Nähte, Gaze, Baumwolle Applikatoren, Silikon-Folien und sterile Filzstift mit Lineal auf der anderen Seite. </li><li> Identifizieren Sie die Mittellinie mit xiphisternum und den Schwanz als Bezugspunkte. Markieren Sie die Mittellinie. Messen 0,8 cm unterhalb der xiphisternum und markieren Sie diesen Punkt. Zeichnen Sie eine Linie, die senkrecht zur Mittellinie von diesem Punkt. Unter der Mittellinie als die Mitte der Klappe Filter aus 1 cm und 2 cm nach links und rechts von der Mittellinie. Zeichnen vertikalen Linien parallel zu der Mittellinie von den Punkten. Maßnahme 4 cm unterhalb der ursprünglichen horizontalen Linie und zeichnen ein anderes parallel dazu. Nach dieser Anleitung ein 4 x 4 cm Klappe in 4 gleich große Streifen unterteilt ist abgegrenzt(Siehe Abbildung 2). </li></ol> 3. Laser-Doppler-Imaging <ol><li> Bringen Sie den rat der Bugspitze des zweiten Narkose rig an der LDI-Scanner. Weiter Anästhesie mit 1,5% Isofluran, 1L/min O 2. Schalten Sie den Laser und folgen Sie den Anweisungen des Herstellers den Scanvorgang zu starten. Nach dem Speichern der gescannten Datei zurückzukehren die Ratte zurück in die erste Anlage und setzen Sie die rektale Sonde des homöothermen Decke mit weichen, weißen Paraffin als Gleitmittel. </li></ol> . 4 In situ TRAM-Lappen - myokutane Modell von IRI <ol><li> Re-Peeling Hände und auf frische sterile Handschuhe anziehen. Heraustrennen eines 5 cm Durchmesser-Kreis in der Mitte des verbleibenden sterilen Tuch und legen diese über dem freigelegten Bauch einen drapierten sterile-Feld zu erzeugen. </li><li> Einen Einschnitt auf der linken seitlichen Rand markiert (Abbildung 3A und B). Blutstillung. Machen Sie ähnliche Einschnitte unten die horizontalen Linienlinks von der Mittellinie. Blutstillung. </li><li> Das Fett, die über der linken inferioren Rektusscheide sollte sichtbar sein. Mit einer Pinzette und feine Iris Schere sorgfältig unter diesem Fett bekommen. Achten Sie darauf, die Perforiervorrichtungen kommen durch die linke, vordere Rektusscheide beschädigen. Das Flugzeug eröffnet durch eine solche Zerlegung ist, dass unmittelbar oberhalb der vorderen Bauchwand Faszie. Weiter Sezieren in dieser Ebene um den abgegrenzten Rändern. In der linken Fossa iliaca liegt die große, oberflächliche circumflex Iliakalgefäße-diese können gebunden oder verödet werden. Dann erstrecken sich die Präparation medial mit Vorsicht und nur bis zum seitlichen Rand des linken geraden Muskel. Es gibt eine offensichtliche Farbveränderung an dieser Stelle in der Nähe von rosa bis weiß (3C). Vorsichtig bewässern das Gebiet mit steriler Kochsalzlösung und prüfen, ob Hämostase bevor feuchte Gaze über das Gebiet erreicht worden ist. </li><li> Wiederholen Sie den Vorgang auf der Gegenseite aber dieses Mal verlängern to die Linea alba (Mittellinie). Achten Sie darauf, zu identifizieren und zu ätzen alle musculocutaneus Perforiervorrichtungen sich in der Mitte der rechten rectus abdominis (3D). Wenn dies nicht getan wird richtig kann es in einer postoperative Hämatome und falschen Ergebnissen führen. Ähnlich Blutstillung, bewässern und zu platzieren feuchte Gaze über der angehobenen Klappe. </li><li> Zurück zum Unterrand der linken vorderen rectus (3E und F). Cauterize die meisten minderwertig perforator gesehen. Gehen Sie, um eine kleine (ca. 0,6 cm x 0,6 cm) Fenster in der vorderen Rektusscheide mit Mikroschere geschnitten und gebogen spitz Graeffe Pinzette. Blunt sezieren langsam den seitlichen Rand des Muskels bis der Muskel lichtet sich, aber bevor der hintere Mantel verletzt wird. Dann drehen Sie die Pinzette und stumpf sezieren medial bis der Bauch des Muskels ist oben auf dem gebogenen Rand der Zange und die Spitzen sind frei am medialen Rand. Füttern ungefährely 6 cm von 5-0 Ethilon in die Backen der Zange und binden Sie die untere Rektusscheide. Nach Abschluss dieses Schritts die myokutane Klappe ist auf einer dominant-Schiff die tiefen überlegen epigastrischen Gefäße isoliert. Deckel mit einem feuchten Gaze. </li><li> Schneiden Sie die Folie in Ovale Silikon mit glatten Kurven (Abbildung 3G). Diese sollten groß genug sein, um die meisten der Fläche unter den fasziokutanen Teile der Klappe ausgesetzt decken. Doch Vorsicht ist darauf zu achten, dass die Haut Rand ohne jede Spannung und der medialen Kurve des Ovals kann geschlossen werden können, um wieder gekoppelt werden, um sie zu beeinträchtigen Durchströmung der verbleibenden Perforiervorrichtungen verhindern. Diese werden dann an Ort und Stelle mit 6-0 Vicryl (3H) vernäht. Deckel mit feuchter Gaze. </li><li> Mit einfachen unterbrochen 5-0 Ethilon Nähte &quot;peg out &#39;der Klappe, um Wärme und Wasser Verlust (3I) zu reduzieren. Deckel mit einem feuchten Gaze. </li><li> Verlängern Sie die Wunde souverän auf der linken Seite derxiphisternum (3I). Naht diese an der oberen linken Quadranten, um das Feld-of-view zu verbessern. </li><li> Schneiden Sie alle darüberliegende Fett, um die überlegene, links, vordere Rektusscheide offenbaren. Schneiden Sie ein kleines (0,6 cm x 0,6 cm) Fenster in dieser Hülle (Abbildung 3J). Verlängern Sie die Wunde medial bis eine Änderung in Muskelfaser Flugbahn von vertikal bis schräg und Konsistenz von fest zu lose verpackt Fibrillen zu sehen ist. </li><li> Legen Sie die gebogenen Pinzette sorgfältig zwischen diesen beiden Muskeln und eröffnen eine Ebene, die durch stumpfe Dissektion. Schneiden Sie vorsichtig nach unten nur so weit wie die überlegene Oberfläche dieser gebogenen Pinzette Schneiden durch den Bauch des linken Rectus abdominis, die zugrunde liegende tiefe, epigastrica superior Arterie und Vene (Abbildung 3K) offenbaren. </li><li> Mit Mikro-Instrumente und hohe Leistung auf dem Operationsmikroskop, vorsichtig die Arterie und Vene und abzustreifen jede Umgebung Fett. </li><li> Bewerben atraumatische Acland Klemmen der einrtery und Vene (B-1, &quot;V&quot;-Typ) und starten Sie den Timer zu zählen die 30 min ischämischen Periode. Spülen Sie das eingeklemmte Stiel und Deckel mit Gaze. Wir haben nicht beschäftigen Gefäßdilatatoren wie Verapamil oder pabavarine sollte aber Gefäßspasmen ein Problem sein, sollten diese Medikamente in Betracht gezogen werden. </li><li> Verwalten des Buprenorphin (0,04 mg / kg) und erwärmte, steriler Kochsalzlösung (1 ml / kg / h). </li><li> Beginnend an der linken oberen Ecke, vernähen die Klappe an Ort und Stelle mit 6-0 Vicryl Nahtmaterial subkutikuläre stoppen und binden Sie an der xiphisternum. </li><li> Wenn die 30 min ischämischen Zeit vorbei ist, vorsichtig die Klemmen und bewässern den Stiel mit warmen Kochsalzlösung. Prüfen Sie, ob Strom wurde wieder hergestellt. Bitte beachten Sie, dass diese ischämischen Zeit von der britischen Home Office Behörde wurde festgelegt. Forscher in anderen Behörden können in der Lage sein, diese zu verlängern. Erweitern des ischämischen Zeit wird wahrscheinlich schlechteren klinischen Ergebnis führen. </li><li> Naht die Schnittkanten des rectus wieder an ihrem Platz mit 6-0 Vicryl.Achten Sie darauf, nicht zu viel Spannung auf, da dies zu Abknicken der Gefäße führen kann. </li><li> Füllen Sie das subkutane Naht darauf achten, dass alle Knoten unter der Haut begraben (Abbildung 3K). </li><li> Reinigen Sie die Wunde an und lassen Sie ihn trocknen. Neu zeichnen die Zonen auf der Klappe. </li><li> Erneut scannen das Tier, um eine postoperative Bild zu erhalten. </li><li> Re-Anwendung lacrilube um die Augen des Tieres und in einen vorgewärmten Inkubator (37 ° C) für 1 Stunde vor der Rückkehr in die Tierhaltung Einheit wiederherzustellen. </li></ol> Kritische Schritte innerhalb des Protokolls Der Kern des Verfahrens ist bei der Ermittlung der tiefen, überlegene epigastrischen Gefäße. Dies zeigt sich deutlich im zugehörigen Film gezeigt. In Kürze wird ein Fenster in der vorderen Rektusscheide geschnitten, um die zugrunde liegenden Muskelfasern, die ausgeführt werden soll längs freizulegen. Durch die Erweiterung der oberflächlichen Dissektion des vorderen Rektusscheide medial eine Änderung in Muskelfaser und Weise beobachtet wird from längs zu schräg. Legen Sie mit stumpfen Enden, gebogen, Graeffe Pinzette (oder ähnlich) an der Kreuzung der beiden Bündel von Muskelfasern. Blunt sezieren seitlich. Reduzieren, mit Mikro Schere auf die Oberseite der gebogenen Pinzette in dieser Ebene zwischen den Muskelfaserbündel gehalten. Beim Abziehen der Graeffe Pinzette die tiefe, epigastrica superior Arterie und Vene wird in der Mitte der gerade Bauchmuskel Körper beobachtet werden. Isolieren Sie die Fett darüberliegenden die Gefäße mit Mikro Instrumente und wenden Sie die Klemmen. Die fasziokutanen Teile der Ratte TRAM-Lappen sind dünn genug, um zu ermöglichen, die Klappe als volle Dicke Hauttransplantation nehmen. Um dies zu verhindern und um sicherzustellen, dass dies eine wahre Modell der IRI eine dünne, flexible Silizium-Platte wird unter den fasziokutanen Teile der Klappe platziert. Dieser Schritt 35 angenommen wurde von anderen Forschern die Durchführung Ratte TRAM-Modelle. 17,21,25 ist Ratten kauen through Knoten so sicherzustellen, dass alle Nähte sind subkutikuläre und alle Knoten begraben sind. Bei der Durchführung sorgfältige Naht autocannabilism von Klappen wie von anderen Forschern berichtet können vermieden werden. 24 Nach der Verabreichung von Buprenorphin zu verringern Aufrechterhaltung der Narkose auf 1% Isofluran (1L/min O 2).

Wir haben keine Angaben.

Änderungen und Fehlersuche Das Protokoll hier reproduziert die IRI in freier Transfer Gewebe in einem experimentellen System gesehen ermöglicht besseres Verständnis dieses Prozesses und stellt ein Mittel zur Linderung mittels IRI und die Verbesserung der Ergebnisse zu untersuchen. Dies könnte leicht modifiziert werden, um eine schwerere Verletzung zu erzeugen, wenn sie auf der nicht dominanten, tief, epigastrica Stiel oder der ischämischen Mal erhöhten beruhten. Grenze...

Das Ziel dieses Protokolls ist es, ein sicheres und reproduzierbares Modell der Ischämie-Reperfusion im freien Gewebetransfer beobachtet zu ermöglichen interventionelle Strategien untersucht werden demonstrieren. Kostenlose Gewebe Transfer wird als vaskuläre Ablösung eines isolierten Block von Gewebe durch autologe Transplantation von diesem Gewebe mit Anastomose der Klappe die durchtrennten Gefäße nativen Gefäße beim Empfänger Website gefolgt definiert. Das Verfahren wird als FTT bekannt und das Gewebe an als freie Klappe übertragenen Sinne. Kostenloser Transfer Gewebe ist der Gold-Standard-Ansatz zur Korrektur von komplexen, zusammengesetzten Defekte wo lokale Optionen sind nicht geeignet oder nicht verfügbar. 1-4 Ischämie Reperfusionsschaden (IRI) ist im freien Gewebetransfer unvermeidlich, trägt zum Scheitern 5,6 flattern und hat keine eine wirksame Behandlung. Das Wahlfach Natur freien Lappen Operationen ermöglicht Verabreichung von pharmakologischencal Agents Voraussetzung gegen IRI. IRI zu einer Beeinträchtigung der Strömung durch die Mikrozirkulation durch endotheliale Aktivierung und Stoffwechselstörungen, erhöhte sich um 7 Kapillarpermeabilität und anschließende interstitielle Ödem 7, Zustrom von Entzündungszellen, 8 Freisetzung von Entzündungsmediatoren, reaktive Sauerstoffspezies 9 und Ergänzung Abscheidung. 10 Dieser komplexe Prozess der Hypoxie und anschließende Reperfusion letztlich zum Zelltod führt. Ein Modell myokutane IRI ermöglicht die Wirksamkeit der Vorbehandlung Strategien auf die klinischen Ergebnisse zu bewerten. Neuere Arbeiten haben die Verwendung von Tiermodellen der IRI Studien als Ersatz für menschliche IRI durch den Vergleich der molekularen Veränderungen in menschlichen Probanden und bestehende Daten aus Tierversuchen beobachtet validiert. 10,11 Die Ratte quer rectus abdominis myokutane (TRAM) Klappe wurde erstmals 1987 in Deutsch und 12 im Jahr 1993 beschrieben13 in Englisch. Dieses Modell hat große Popularität 13-25 als eine billige, robuste Ausführung, verschiedene Strategien zu untersuchen, um zu reduzieren IRI mit kostenfreiem Transfer Gewebe verbunden. 14,17-22 Die Mehrheit dieser Studien als unipedicled TRAM Klappen auf dem tiefen, inferior Basis entwickelt wurden, . und unterschiedliche Längen der postoperativen Follow-up (2 - 10 Tage) - epigastric Gefäßstiel 15-18,20-22 Vergleich der Daten aus diesen Studien wird durch die Verwendung von unterschiedlich großen Inseln kutane (30 cm 2 10.5) kompliziert. Die durchschnittliche Gesamtanteil Bereich Lappennekrose in der Kontrollgruppe dieser Studien beträgt 69 ± 6,2% (Mittelwert ± SEM). Es sollte angemerkt werden, dass diese sechs Papiere verwenden alle die gerade Bauchmuskel als Träger für die Gefäßstiel aber nicht aussetzen, dividieren und microanastomose oder klemmen Sie die Schiffe werden. Zhang et al. Haben 23 eine echte, freie Ratte TRAM-Lappen auf den überlegenen epigastrischen Gefäße Basis beschrieben, in denen die fRunden wurden angehoben, Gefäße aufgeteilt und die myokutane Klappe übertragen und microanastomosed der Leistengegend Schiffe. Diese schwierige Technik erforderte die microanastomosis von 0,45 bis 0,5 mm Kaliber Schiffe. Nur fünfzehn wurden durchgeführt und von diesen 67% überlebten. 23 Das Modell von Zhang et al. 23 ist ein hervorragendes Modell für den menschlichen freien TRAM-Lappen, wie es spiegelt wirklich die Verletzung während FTT entstehen. Die anderen Modelle veröffentlicht von einer Ratte TRAM-Lappen mehr genau die Verletzungen während eines menschlichen gestielten TRAM entstandenen, aber noch nicht genau reflektieren die IRI, da diese Klappe in nicht durchlaufen einen ischämischen Periode durch Reperfusion als Gefäßstiel nie geklemmt oder geteilt und folgte microanastomosis durchgeführt. Dieses Protokoll und Video beschreiben ein neues Modell der freien Gewebetransplantation mit der Ratte TRAM in dem die IRI repliziert mit microclamps wird. Dies getreu repliziert mehr als die IRI Stiel TRAM Vorgänger, ist aber technisch einfacher als performing der microanastomosis. Microclamps wurden weitgehend durch Transplantation Forschern eingesetzt, um neu IRI mit Organtransplantation verbunden; 26-33 ist dies jedoch das erste Mal in der Ratte TRAM-Lappen beschrieben wurde.

<table><tbody><tr><td>Moor LD12 Laserdoppler-Bildgebungsscanner</td><td></td><td></td><td><a href="http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8" target="_blank">http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8</a></td></tr><tr><td>Komplettes homöothermisches Deckensystem mit flexibler Sonde. Klein. 230 VAC, 50 Hz</td><td></td><td>507221F</td><td><a href="http://www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td></tr><tr><td>Graeffe Pinzette 0,8 mm Spitzen gebogen</td><td></td><td>11052-10</td><td>2, <a href="http://www.finescience.de" target="_blank">http://www.finescience.de</a></td></tr><tr><td>Acland Klemmen</td><td></td><td>00398 V</td><td>B-1 &#8217; V&#8217; Musterklemmen, die sowohl an der Arterie als auch an der Vene verwendet werden. <a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td></tr><tr><td>Clamp-Applikator</td><td></td><td>CAF-4</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf" target="_blank">http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</a></td></tr><tr><td>Gemini Kautereinheit</td><td></td><td>726067</td><td><a href="www.harvardapparatus.com" target="_blank">www.harvardapparatus.com</a></td></tr><tr><td>Mikrogefäßdilatatoren 11 cm 0,3 mm Spitzen 00124</td><td></td><td>D-5a.2</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Mikrojuwelierzange 11cm abgewinkelt 00109</td><td></td><td>JFA-5b</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Mikro-Juwelierzange 11 cm gerade 00108</td><td></td><td>JF-5</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Acland Einzelklemmen B-1V (Paar)</td><td></td><td>396</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Mikroschere Runde Griffe 15 cm Gerade</td><td></td><td>67</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Iris Schere 11,5 cm Kurven EASY-CUT</td><td></td><td>EA7613-11</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Mayo Schere 14 cm Gerade abgeschrägte Klingen EASY-CUT</td><td></td><td>EA7652-14</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Derf Nadelhalter 12 cm TC</td><td></td><td>703DE12</td><td><a href="http://www.merciansurgical.com" target="_blank">http://www.merciansurgical.com</a></td></tr><tr><td>Ethilon 5-0</td><td></td><td>W1618</td><td><a href="http://www.farlamedical.co.uk/" target="_blank">http://www.farlamedical.co.uk/</a></td></tr><tr><td>Vicryl rapide 6-0</td><td></td><td>W9913</td><td><a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td></tr><tr><td>Instrapac - Adson-Zahnzange (extra fein)</td><td></td><td>7973<</td><td>a href="http://www.millermedicalsupplies.com/" target="_blank">http://www.millermedicalsupplies.com/</a></td></tr><tr><td>Castroviejo Nadelhalter</td><td></td><td>12565-14</td><td><a href="http://s-and-t.ne" target="_blank">http://s-and-t.ne</a></td></tr><tr><td>Wärmelampe</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.chicken-house.co.uk" target="_blank">http://www.chicken-house.co.uk</a></td></tr><tr><td>Silikonfolie 0,3 mm lichtdurchlässig</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.silex.co.uk/" target="_blank">http://www.silex.co.uk/</a></td></tr><tr><td>Image J software</td><td></td><td></td><td><a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a></td></tr><tr><td>Zeiss OPMI pico</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.zeiss.co.uk/" target="_blank">http://www.zeiss.co.uk/</a></td></tr><tr><td>Operationsmikroskop</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vet Tech Lösung Isofluoran Rig</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td></tr><tr><td>Vet Tech Solution Isofluoran rig</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.vet-tech.co.uk/" target="_blank">http://www.vet-tech.co.uk/</a></td></tr></tbody></table>

in situ quer bauchmuskel myokutane flap: eine ratte modell myokutane ischämie reperfusion injury

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Kostenloser Transfer Gewebe ist der Goldstandard der rekonstruktiven Chirurgie, um komplexe Defekte nicht zugänglich lokale Optionen oder all diejenigen, die Verbund-Gewebe zu reparieren. Ischämie Reperfusionsschaden (IRI) ist eine bekannte Ursache von partiellen freien Lappen Ausfall und hat keine wirksame Behandlung. Aufbau einer Labor-Modell dieser Verletzung kann sowohl als kostspielig erweisen. Finanziell größeren Säugetieren herkömmlich verwendet werden und in das Know-how erforderlich, durch die technische Schwierigkeit dieser Verfahren erfordert in der Regel den Einsatz eines erfahrenen Mikrochirurgen Diese Publikation und Video zeigen den effektiven Einsatz eines Modells der IRI in Ratten, die nicht erforderlich ist mikrochirurgische Expertise. Dieses Verfahren ist ein in situ Modell einer quer abdominis myokutane (TRAM) Klappe, wo atraumatische Klemmen verwendet werden, um die Ischämie-Reperfusion mit dieser Operation verbunden reproduzieren. Ein Laser-Doppler-Imaging (LDI)-Scanner eingesetzt wird, um die Klappe Perfusion und Bildverarbeitung softwa beurteilenre, Bild J Prozentbereich Haut Überleben als primärer Endpunkt der Verletzung zu beurteilen.

Ratte Modelle sind sparsamer als größere Tiere Modelle sind 36 Krankheiten resistent in der Natur und können genetisch manipuliert werden. Lose Haut Tieren wie Nagetieren wurden gedacht, um eine unterschiedliche Anordnung der kutanen Durchblutung im Vergleich zu festen gehäutet Tiere wie Menschen und Schweine haben. In loser Haut Tieren Haut in erster Linie durch direkten Haut-Blutgefäße durch das subkutane Fett der darüberliegenden Haut (Abbildung 4) Im Gegensatz dazu geliefert, leiten fixie...

Kostenloser Transfer Gewebe ist weit verbreitet in der rekonstruktiven Chirurgie eingesetzt, um Form und Funktion nach onkologischen Resektion und Trauma wiederherzustellen. Vorbehandlung dieses Gewebe vor der Operation verbessern kann Ergebnis. Dieser Artikel beschreibt ein<em&gt; In situ</em&gt; Quer Rektusabdominis myokutane Klappe (TRAM) bei Ratten als Mittel zum Testen Vorkonditionierung Strategien.

In situ Quer Bauchmuskel myokutane Flap: Eine Ratte Modell myokutane Ischämie Reperfusion Injury

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

Mein Name ist Marie Claire Edmonds. Ich bin wissenschaftliche Mitarbeiterin an der Universität Edinburgh. Das Ziel dieser Videopräsentation ist es, unseren initiierten transversen Rektus-abdominis-Myokutanlappen als Modell einer myokutanen Ischämie-Reperfusionsschädigung bei der Ratte zu demonstrieren.Dies ist unser chirurgisches Aufbaut. Die Narkosevorrichtung und die rote Induktionsbox sind hinter dem Operationstisch zu sehen. Der Operationstisch ist so eingerichtet, dass das Tier in Rückenlage auf einer homöothermen Decke liegt, die in Verbindung mit einer externen Wärmequelle verwendet wird, wobei die Kerntemperatur über eine rektale Sonde mittels Rückkopplung aufrechterhalten wird.Die chirurgischen Instrumente werden rechts vom Tier und das Mullbindegarn, Silikon sowie der MicroPen links vom Tier, jeweils auf abziehbaren chirurgischen Auflagen, bereitgelegt. Diese Instrumente werden erst ausgelegt, sobald die Entlüftung abgeschlossen ist, und das Tier wird anschließend entsprechend den geltenden Richtlinien für den chirurgischen Eingriff präpariert und abgedeckt. Zunächst wird das Tier mit 4 % ISO-Fluoranästhesie betäubt.Die Anästhesie wird während des gesamten Eingriffs bei 1–1,5 % ISO-Fluoran gehalten. Die vordere Bauchwand wird mit einem elektrischen Rasierer rasiert, anschließend wird eine handelsübliche Rasiercreme aufgetragen. Dies ist wichtig, um genaue Messwerte mit dem Laser-Doppler-Bildgebungsgerät zu erhalten.Die Testcreme wird entfernt und die Stelle mit warmer steriler Kochsalzlösung gespült. Anschließend wird 2 % Chlorhexidin in 70 % Isopropylalkohol auf die Haut aufgetragen. Dieses wird trocknen gelassen.Wir empfehlen, die lokalen Richtlinien zur Hautvorbereitung zu befolgen. Der dargestellte Lappen basiert auf den linken tiefen oberen Epigastricgefäßen und den von SCH Neal im Jahr 1982 beschriebenen nummerierten Zonen. Beim menschlichen T-Tram-Lappen ist es möglich, den Lappen entweder auf den linken oder rechten tiefen, unteren oder oberen Gefäßen zu basieren.Es sei jedoch darauf hingewiesen, dass die oberen Gefäße bei der Ratte die dominierenden Gefäße sind. Im Gegensatz zur entsprechenden menschlichen Anatomie werden die flachen Grenzen identifiziert, indem die Linea alba unter Verwendung des ZA-Sternums und des Schwanzes als Referenzpunkte abgegrenzt wird. Markieren Sie die Mittellinie 0,8 Zentimeter unterhalb des ZA-Sternums und kennzeichnen Sie diesen Punkt; zeichnen Sie eine Linie senkrecht zur Mittellinie vom zuvor unterhalb des ZA-Sternums markierten Punkt aus, wobei die Mittellinie im Zentrum der Klappe liegt.Markieren Sie einen und zwei Zentimeter rechts und links der Mittellinie. Zeichnen Sie von diesen Punkten aus eine vertikale Linie parallel zur Mittellinie. Messen Sie vier Zentimeter unterhalb der ursprünglichen horizontalen Linie und zeichnen Sie eine weitere dazu parallele Linie.Wenn diesen Anweisungen gefolgt wird, wird ein vier mal vier Zentimeter großer Lappen markiert, der aus vier Zonen gleicher Größe besteht. Die Zonen sind gemäß der Beschreibung von Perle et al. nummeriert, wobei Zone eins das integumentäre Areal über dem direkt durch das Gefäßpedikel versorgten Rectus abdominis-Muskel bezeichnet. Zone zwei ist das Integument über dem kontralateralen Rectus-Muskel.Zone drei liegt lateral zu Zone eins und Zone vier zu Zone zwei. Nach Abschluss wird die Ratte aseptisch und unter Narkose auf das Laser-Doppler-Bildgebungsgerät übertragen, wo eine weitere Narkoseeinrichtung vorhanden ist, um die Narkose aufrechtzuerhalten. Die Laser-Doppler-Bildgebung kann eine nicht-invasive Methode zur Beurteilung des Blutflusses im Gewebelappen darstellen. Eine monochromatische Lichtquelle wird vom Scannerkopf ausgesendet.Dieses sofortige Licht, das in dieser Animation blau dargestellt ist, wird von den sich bewegenden Erythrozyten im Gewebe gestreut. Der Grad der Verschiebung hängt mit der Geschwindigkeit der Erythrozyten zusammen. Das verschobene Licht, das in dieser Animation grün dargestellt ist, wird durch den Photodetektor im Scannerkopf gemessen, und die Perfusionsrate wird berechnet.Die so gemessene Durchblutung wird in willkürlichen Einheiten angegeben, die als Perfusions­einheiten bekannt sind, und die Daten werden in einem Bild dargestellt, das einer Wetterkarte ähnelt, wobei die Perfusion von hoch nach niedrig gestuft und jedem Wert eine Farbe zugeordnet wird. Jedes Gerät wird kalibriert, sodass alle Messungen, die mit demselben Scanner und denselben Einstellungen durchgeführt werden, miteinander verglichen werden können. Mithilfe der mit dem Scanner gelieferten Software kann ein interessierender Bereich auf das LDI-Bild gelegt und die durchschnittliche Perfusion dieses Bereichs berechnet werden. Dies ermöglicht es, die gesamte Deckplastik oder einzelne Zonen zu bewerten und zu vergleichen.Nach dem LDI-Scan legen Sie die Ratten in Rückenlage auf die Heizdecke im Heimkäfig auf dem Operationstisch zurück, waschen Sie erneut die Hände und ziehen Sie frische sterile Einmalhandschuhe an, bevor Sie das Tier mit chirurgischen D-Tüchern abdecken. Bitten Sie Ihren Assistenten, einen Fußpfotentest durchzuführen, um eine ausreichende Anästhesie zu überprüfen, bevor Sie fortfahren. Führen Sie einen Einschnitt nach unten durch.Die linke seitliche markierte Kante des Tieres. Führen Sie ähnliche Einschnitte entlang der horizontalen Linien links der Mittellinie durch. Stellen Sie mithilfe eines handgehaltenen Cordy-Geräts die Blutstillung sicher.Suchen Sie das Fettüberzugsgewebe, die linke untere Erregerhülle, unter Verwendung von Pinzette und feinen Iris-Scheren, um eine Ebene unterhalb dieses Fettgewebes freizulegen. Achten Sie darauf, keine Perforanzgefäße zu verletzen, die durch die linke vordere Rektusscheide nach oben ziehen. Die durch diese Präparation freigelegte Ebene liegt unmittelbar oberhalb der Faszie der Bauchwand.Fahren Sie mit der Dissektion in dieser Ebene und entlang der abgegrenzten Ränder fort. Danach dissezieren Sie medial. Bis zur lateralen Begrenzung des linken Musculus rectus zeigt sich an dieser Stelle ein deutlicher Farbwechsel von rosa nach weiß, wie durch diese weiße Linie hervorgehoben. Das chirurgische Feld sollte nun wie auf diesem Bild aussehen. Wiederholen Sie den Eingriff auf der kontralateralen Seite, diesmal jedoch führen Sie die mediale Präparation bis zur linea alba-Mittellinie und koagulieren Sie die Durchbrüche durch die rechte vordere Rektusscheide. Sobald sie sichtbar sind, erreichen Sie die Hämostase, spülen Sie und legen Sie feuchte Gazetücher über die angehobene Lappenplastik. Die faszio-kutanen Anteile des Ratten-TRAM-Lappens sind dünn genug, um dem Lappen eine Vollhauttransplantation zu ermöglichen. Um dies zu verhindern und sicherzustellen, dass es sich hierbei um ein echtes Modell der ischämisch-reperfundierten Verletzung (IRI) handelt, wird unterhalb der faszio-kutanen Anteile des Lappens ein dünnes, flexibles Silikonblatt platziert. Dieser Schritt wurde von anderen Forschern, die TRAM-Lappenmodelle an Ratten etablieren, übernommen, wobei die Silikonfolie in ovale Formen geschnitten wird.Sie sollten groß genug sein, um den größten Teil der Fläche unterhalb der faszial-kutanen Anteile des Lappens abzudecken. Es ist jedoch Vorsicht geboten, um sicherzustellen, dass der Hautrand spannungsfrei verschlossen werden kann und keine Druckbelastung auf die Perforatoren entsteht, die durch die Mitte der linken vorderen Rektusscheide verlaufen. Die Silikonfolien werden dann mit sechs-0-Vicryl vernäht, bedeckt mit feuchtem Mullverband, zurück zur unteren Begrenzung des linken vorderen Rektusmuskels; der am weitesten kaudal gelegene sichtbare Perforator wird kauterisiert, ein kleines Fenster in der vorderen Rektusscheide mit Mikroscheren und einer spitz zulaufenden, gebogenen grauen Pinzette ausgeschnitten.Lösen Sie langsam stumpf entlang des medialen Randes des linken Musculus rectus, bis sich der Muskel verjüngt, jedoch bevor die hintere Rectusscheide durchbrochen wird; wiederholen Sie dies auf der lateralen Seite und führen Sie dann eine stumpfe Dissektion medial durch, bis der Muskelbauch auf der gekrümmten Kante der Pinzette liegt und die Spitzen an der medialen Begrenzung frei sind. Führen Sie sechs Zentimeter Fünf-Etholon in die Backen der Pinzette ein und ligieren Sie den Musculus rectus inferior. Auf diese Weise erhalten wir nun einen myokutanen Lappen, der von einem einzigen vaskulären Pedikel, den tiefen oberen epigastrischen Gefäßen, versorgt wird, und der mit feuchter Gaze abgedeckt ist.Unter Verwendung einfacher unterbrechender Nähte wird die Hautlasche abgeheftet, um den Feuchtigkeitsverlust wie gezeigt zu reduzieren. Die Wunde wird leicht links der Zipp-Sternotomie nach kranial verlängert. Dieses Gewebe wird im linken oberen Quadranten genäht, um die Sicht auf das Operationsfeld zu verbessern.Schneiden Sie ein Fenster in die obere linke vordere Rektusscheide. Verlängern Sie die Wunde nach medial, bis sich eine deutliche Änderung der Muskelfasertrajektorie zeigt – von dicht gepackten vertikalen Fasern des Rektus zu locker gepackten Fasern von OBL. Führen Sie die gebogene Pinzette vorsichtig zwischen diese Muskelebenen ein und erweitern Sie die Öffnung lateral durch stumpfe Dissektion.Schneiden Sie vorsichtig mit einer Mikroschere auf die geschlossene obere Fläche dieser Pinzette. Durchtrennen Sie den Muskelbauch des linken Musculus rectus abdominis, um die darunterliegenden tiefen linken oberen epigastrischen Gefäße mit mikrochirurgischen Instrumenten und hoher Vergrößerung am Operationsmikroskop freizulegen. Trennen Sie die Arterie und Vene vorsichtig voneinander ab und entfernen Sie jegliches umgebende Fettgewebe. Legen Sie eine traumatische LAN-Klemme an die Arterie und Vene an und starten Sie die Zeitschaltung für die 30-minütige ischämische Phase. Spülen Sie den durch die Klemmen gebildeten Bereich, der mit feuchtem Mull abgedeckt ist, laufend aus. Lassen Sie von Ihrer Assistentin Buprenorphin und erwärmte Flüssigkeit im oberen linken Quadranten des Tieres verabreichen.Nähen Sie die Klappe mit fortlaufenden subkutanen Nähten aus sechser Vicryl zu. Setzen Sie die Naht entlang dem unteren Wundrand fort. Fahren Sie entlang dem Rande der Klappe auf der rechten Seite des Tieres und entlang dem oberen Rand fort.Stoppen und abschneiden, wenn Sie den Reißverschluss des Sternums erreichen. Wenn die 30-minütige ischämische Phase abgeschlossen ist, entfernen Sie die Klemmen und spülen die Kammer mit warmer Kochsalzlösung aus. Nähen Sie die Schnittränder der Rectusscheide mit sechs-0-Vicryl wieder an ihren Platz.Unter größter Vorsicht, um den zugrundeliegenden vaskulären Pedikel nicht zu beschädigen. Üben Sie keine zu starke Zugkraft aus, da dies zu einer Knickung der Gefäße führen würde. Schließen Sie anschließend die subkutane Naht ab.Beachten Sie, alle Knoten unter der Haut zu vergraben. Reinigen Sie den Wundbereich und lassen Sie ihn trocknen. Zeichnen Sie die Zonen der Lappenregion erneut auf.Scannen Sie das Tier erneut, um eine postoperative Beurteilung des Perfusionsprozentsatzes zu erhalten; der gesamte flache Nekrosebereich ist in dieser Abbildung dargestellt. N = 10; Mittelwert und SEM sind angegeben. Die absolute Perfusion ist in dieser Abbildung zu den vier Zeitpunkten dargestellt: präoperativ, postoperativ sowie 24 und 48 Stunden danach (n = 10; Mittelwert und SEM angegeben). Die Laser-Doppler-Bilder und entsprechenden Fotografien zu den vier Zeitpunkten für drei Tiere sind hier gezeigt.Die vordere Bauchwand der Ratte weist deutlich weniger subkutanes Fett auf als die vordere Bauchwand der meisten Frauen, die einer T-Tram-Lappen-Operation zur Brustrekonstruktion unterzogen werden. Das in diesem Text beschriebene Modell wurde speziell als Modell der Ischämie und kurzzeitigen Perfusionsverletzung bei myokutanen Lappen entwickelt, um die Wirkung von präkonditionierenden Therapien anhand von Hautnekrose und Perfusion als Endpunkte bewerten zu können. Das in diesem Artikel detaillierte Verfahren bildet spezifische Probleme wie die Fettnekrose nicht ab, die bei menschlichen Tram-Lappen auftreten, wenn Lappen mit erheblichen Fettanteilen gezielt entnommen werden, um eine Projektion für große Brustrekonstruktionen zu erzeugen.Direkte in vivo-Beobachtung der Mikrozirkulation wird in diesem Protokoll nicht gezeigt, wurde jedoch im chma-Muskelmodell und in einem osteomyokutanen Lappen beschrieben. Das T-tram-Modell ist ein myokutanes Lappenmodell.Wenn Forscher sich besonders für einen osteomyokutanen Lappen interessieren, ist dieses Modell nicht geeignet, doch ein alternatives Modell wurde in der Literatur beschrieben. Wir stellen dieses zuverlässige und reproduzierbare Modell einer Ischämie-Reperfusionsschädigung in einem myokutanen Lappen vor.

in-situ-transverse-rectus-abdominis-myocutaneous-flap-rat-model

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Das Fenster des murinen Rückenhautkammer dargestellt visualisiert eine Zone von akuter Ischämie persistent eines muskulokutanen Klappe. Intravital Epifluoreszenzmikroskopie Genehmigungen für direkte und wiederholte Bewertung der Mikrogefäß und Quantifizierung der Hämodynamik. Morphologische und hämodynamische Ergebnisse kann weiter mit histologischen und molekularen Analysen korreliert werden.

Ischämischen Gewebeschädigung des Rückenhautkammer der Maus: Ein Hautlappen Modell zu Akute Persistent Ischämie Untersuchen

Die Ratte, aufgrund seiner Größe, Verfügbarkeit und eher fügsam Verhalten hat als Forschungsmodell für viele Jahre in Anspruch genommen. Das Ziel des Protokolls ist es, die Ratte als ischämische Haut Wundheilung Modell zu verwenden, um einen wertvollen Einblick in die Pathophysiologie von chronischen Wunden bereitzustellen.

Demonstration der Ratte ischämische Hautwunde Modell

Dieser Artikel beschreibt die Schritte, die erforderlich sind, um einen fasziokutanen epigastrischen freien Lappen anzuheben und ihn in den Hals der Ratte zu übertragen.

Ein Modell der freien Gewebetransfer: Die Ratte Epigastrische Freie Flap

Vaskularisierte Verbundlegierung bietet den Transplantationsempfängern lebensverändernde Vorteile, aber die biologischen Ursachen für die Abstoßung von Transplantationen und die Vaskulopathie bleiben schlecht verstanden. Das hier vorgestellte Nagetier bietet ein reproduzierbares, klinisch relevantes Transplantationsmodell, das es Forschern ermöglicht, Abstoßungsereignisse und mögliche therapeutische Strategien zu bewerten, um deren Auftreten zu verhindern.

Modifiziertes Heterotopisches Hindlimb Osteomyoskan Flap Model im Rat für translational Vasculariisierte Composite Allotransplantation Research

Hier beschreiben wir ein präklinisches Tiermodell zur Untersuchung der Pathophysiologie der Ischämie-Reperfusionsverletzung in der rekonstruktiven Mikrochirurgie. Dieses freie Hautklappenmodell, das auf den oberflächlichen kaudalen epigastrischen Gefäßen in der Ratte basiert, kann auch die Bewertung verschiedener Therapien und Verbindungen ermöglichen, um Verletzungsschäden durch Ischämie-Reperfusion entgegenzuwirken.

Ein präklinisches Rattenmodell zur Untersuchung von Ischämie-Reperfusionsverletzungen in der rekonstruktiven Mikrochirurgie

Wir beschreiben, wie ein weit verbreitetes chirurgisches Modell der intestinalen Ischämie-Reperfusionsverletzung (IRI) bei Nagetieren erstellt werden kann. Das Verfahren beinhaltet einen Verschluss der Arteria mesenterica superior, gefolgt von der Wiederherstellung des Blutflusses. Dieses Modell ist nützlich für Studien, die okklusive Ursachen der intestinalen IRI sowohl in der Veterinär- als auch in der Humanmedizin untersuchen.

Nagetiermodell der intestinalen Ischämie-Reperfusionsverletzung durch Verschluss der Arteria mesenterica superior

Dieses Protokoll beschreibt die Entnahme, das Nähen und die Überwachung von fasziokutanen Lappen bei Ratten, die eine gute Visualisierung und Manipulation des Blutflusses durch die oberflächlichen unteren epigastrischen Gefäße durch Klemmen und Ligieren der Oberschenkelgefäße ermöglichen. Dies ist entscheidend für Studien mit ischämischer Präkonditionierung.

Der oberflächliche axiale Lappen der Arteria epigastrica inferior zur Untersuchung ischämischer Präkonditionierungseffekte in einem Rattenmodell

Ein leistungsfähiges Modell für perioperative und Intensivmedizin akute Nierenversagen wird vorgestellt. Mit ganzen Körper Hypoperfusion durch Herzstillstand ist es möglich, fast replizieren die histologische und funktionelle Veränderungen der klinischen AKI induziert.

Normothermen Herzstillstand und Herz-Lungen: Ein Maus-Modell der Ischämie-Reperfusionsschaden

Wir beschreiben Modelle der mittelschweren und schweren Ischämie-Reperfusion-induzierte Nierenschädigung, in denen die Mäuse unterziehen einseitige renale Stiel Klemm gefolgt durch gleichzeitige oder verzögerte kontralaterale Nephrektomie sind. Diese Modelle konsequent führen zu Nierenfunktionsstörungen und posttraumatische Fibrose, aber Verletzungsschwere und Überleben sind abhängig von Maus Hintergrund, Alter und chirurgischen Einrichtungen.

Ischämie-Reperfusion-Modell des akuten Nierenschädigung und nach der Verletzung Fibrose bei Mäusen

Das isolierte Rattenherz ist ein dauerhaftes Modell für Ischämie-Reperfusionsschäden. Hier beschreiben wir den Prozess der Entnahme des schlagenden Herzens von einer Ratte mittels in situ Aortenkanüle, der Langendorff-Perfusion des Herzens, der simulierten Ischämie-Reperfusionsverletzung und der Infarktfärbung, um das Ausmaß des ischämischen Insults zu bestätigen.

Induktion und Beurteilung der Ischämie-Reperfusion Injury in Langendorff-perfundierten Rattenherzen

Lernen Sie das TRAM-Flap-Modell bei Ratten zur Untersuchung von Präkonditionierungsstrategien und myokutaner Ischämie-Reperfusionsschädigung. Diese Methode liefert wertvolle Erkenntnisse für die rekonstruktive Chirurgie.

In situ Quer Bauchmuskel myokutane Flap: Eine Ratte Modell myokutane Ischämie Reperfusion Injury

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